CN1323159A - 保存血红蛋白血液替代品的方法 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及一种保存脱氧血红蛋白血液替代品的方法,涉及保存的脱氧血液替代品。本发明涉及一种保存脱氧血红蛋白血液替代品的方法,包括将脱氧血红蛋白血液替代品保存在包括透明层压物料的氧屏障膜初级包装中,所说的膜在约25℃及外界相对湿度约50%的条件下每24小时单位大气压氧渗透量少于约1.0cc每100平方英寸(或约0.155cc每100平方厘米)。本发明还涉及保存的脱氧血红蛋白血液替代品。所说的保存的血液替代品包括脱氧血红蛋白血液替代品和氧屏障膜初级包装。所说的氧屏障膜初级包装包括透明层压物料,在约25℃及外界相对湿度约50%的条件下每24小时单位大气压氧渗透量少于约1.0cc每100平方英寸(或约0.155cc每100平方厘米),初级包装内脱氧血红蛋白血液替代品是密封的,从而将脱氧血红蛋白血液替代品保存在基本上不含氧的环境中。

Description

保存血红蛋白血液替代品的方法
相关申请
本申请是1998年10月14日提交的共同待审美国专利申请序列No.09/173,189的继续，美国专利申请序列No.09/173,189是1997年11月19日提交的现在放弃的共同待审美国专利申请序列No.08/974,658的部分继续申请，美国专利申请序列No.08/974,658是1995年6月7日提交的美国专利申请序列No.08/471,583，目前已颁布的专利5,691,452的继续，美国专利申请序列No.08/471,583是1995年6月2日提交的美国专利申请序列No.08/458,916，目前已颁布的专利5,840,852的部分继续申请，美国专利申请序列No.08/458,916是是1995年3月23日提交的美国专利申请序列No.08/409,337，目前已颁布的专利5,854,209的继续，这些申请的全部内容都通过在此引述而合并于本篇。
本发明的背景
存在一种用于治疗或预防由血液损失(如急性出血或在外科手术期间)引起的，由贫血症(如恶性贫血症或镰状细胞性贫血症)引起的，由休克(如容量缺损休克，过敏性休克，脓毒性休克或变态反应休克)引起的组织缺氧的血液替代品的需要。使用血液和血液组成作为血液替代品作这些用途充满着风险。如使用全血常常伴随着传播能使患者恢复复杂化的或导致患者致命的造成肝炎的病毒和造成AIDS的病毒的风险。此外，使用全血需要进行血液选型和交叉配血以避免免疫血液学上的麻烦和供体间的不相容性。
人类血红蛋白，作为血液替代品，具有渗透活性及运输和传递氧的能力，但它也具有快速从循环系统排除的不利之处，通过肾途径及通过血管壁，致使半衰期非常短，因此通常具有不满意的半衰期。并且，人类血红蛋白还常常被中毒量的内毒素，细菌和/或病毒污染。
非人类血红蛋白具有与人类血红蛋白相同的不足。此外，非人类源的血红蛋白还常常被蛋白质，如抗体的污染，这样会在受体内产生免疫系统反应。
以前，已经使用了至少四种其他种类的血液替代品，包括全氟化合物，合成血红蛋白类似物，脂质体-包裹的血红蛋白，和化学修饰的血红蛋白。然而，许多这些血液替代品一般具有短血管内停留时间，被循环系统作为外源物质排除，或滞留在肝脏，脾脏和其他组织中。并且，许多这些血液替代品与生命系统没有生物相容性。
因此，尽管制备血红蛋白-基血液替代品目前已很先进，但仍存在需要含有足够低量的污染物如内毒素，细菌，病毒，磷脂和非血红蛋白蛋白质以预防免疫系统反应及任何由于血液替代品输入引起的毒性作用的血液替代品。此外，血液替代品必须还能在环境条件下给组织运输和传递充分量的氧，并必须具有良好的血管内停留时间。
并且，较好地，血液替代品1)具有通常与全血的肿胀活性等同的肿胀活性，2)在没有交叉配血或敏感性测试的情况下，能被输入到大多数受体中，3)可使用最小的冷藏量长时间保存。
本发明的概述
本发明涉及保存脱氧血红蛋白血液替代品的方法，并涉及保存的脱氧血液替代品。
本发明涉及保存脱氧血红蛋白血液替代品的方法，包括将脱氧血红蛋白血液替代品保存在包括透明层压物料的氧屏障膜初级包装中，所说的膜在25℃及外界相对湿度约为50％条件下，单位大气压每24小时氧渗透量小于约1.0cc每100平方英寸(或约0.155cc每100平方厘米)。
本发明还涉及保存的脱氧血红蛋白血液替代品。所说的保存的血液替代品包括脱氧血红蛋白血液替代品和氧屏障膜初级包装。所说的氧屏障膜初级包装包括透明的层压物料，在25℃及外界相对湿度约为50％时，单位大气压每24小时氧渗透量小于约1.0cc每100平方英寸(或约0.155cc每100平方厘米)，脱氧血红蛋白血液替代品在其中密封，从而在基本上不含氧的环境中保存脱氧血红蛋白血液替代品。
本发明的一个优势是依据本发明的方法制备并储存的血红蛋白具有较高纯度及较长存放期。具有高氧屏障的初级包装使得初级包装在使用高屏障透明外包装前和除去透明外包装后能保护产品的稳定性。此外，透明初级包装可允许视觉检测产品状况。并且，本发明通过消除对保存血红蛋白血液替代品的其他屏障膜的需要而降低塑料和医疗上的浪费，其他屏障膜如透明外包装。
在室温下血液替代品能保存多达两年或更长时间，这是超过先有方法的显著改善。并且，含有本发明的提纯血红蛋白的一种血红蛋白可成功地在不同种受体中用作血液替代品，并且受体种类不会遭受显著的副作用。本发明的详细描述
本发明方法的性质和其他细节现在进行更具体的描述并在权利要求书中列出。可以理解认为本发明的具体实施方案通过实施例方式演示，并且不作为对本发明的限制。本发明的主要性质可在不背离本发明范围的不同实施方案中使用。
在一个实施方案中，本发明涉及一种保存脱氧血红蛋白血液替代品稳定性的方法。这种方法包括将脱氧血红蛋白血液替代品保存在氧屏障膜初级包装中。在一个实施方案中，氧屏障膜初级包装包括在25℃及外界相对湿度约为50％条件下，单位大气压每24小时氧渗透量小于约1.0cc每100平方英寸(或约0.155cc每100平方厘米)的透明聚合物膜。较好地，初级包装具有在25℃单位大气压每24小时氧渗透量小于约0.6cc每100平方英寸(或约0.093cc每100平方厘米)。在另一个实施方案中，聚合物膜是层压的。
在另一个实施方案中，本发明涉及保存的脱氧血红蛋白血液替代品，包括脱氧血液替代品和氧屏障膜初级包装。在一个实施方案中，氧屏障膜初级包装包括透明聚合物膜。初级包装具有在25℃及外界相对湿度约为50％条件下，单位大气压每24小时氧渗透量小于约1.0cc每100平方英寸(或约0.155cc每100平方厘米)，脱氧血红蛋白血液替代品在其中密封，从而在基本上不含氧的环境中保存脱氧血红蛋白血液替代品。在另一个实施方案中，聚合物膜是层压的。
氧屏障膜包括适当的氧屏障物料，这样物料在25℃和环境湿度条件下，如50％湿度下具有适当的氧屏障特性。在本发明的一个实施方案中，氧屏障物料包括具有至少一层的透明聚合物膜。在更具体的实施方案中，膜包括外部聚烯烃层(如聚乙烯或聚丙烯)，氧屏障层和内部聚烯烃层的层压物。其中内层与包装的内容物接触。本发明的聚烯烃可包括两种或多种单体的共聚物，其中单体可以是，如，聚丙烯，聚乙烯，或聚丁烯。在另一个实施方案中，其他单体如乙烯乙酸乙烯酯可包括在共聚物中。根据氧屏障层的种类，层压物可任意地包括支持层。当不受理论约束时，支持层便于使用自动装置制备袋。在一个较好的实施方案中，支持层是双轴取向物料如尼龙。在一个实施方案中，使用此领域中已知的方法，可将透明物料制成预防光降解的。
在一个实施方案中，外部聚烯烃层和氧屏障层是共同挤压的。在一个较好的实施方案中，外部聚烯烃层是中密度聚乙烯，氧屏障层是乙烯乙烯基醇。
在本发明的另一个实施方案中，氧屏障膜包括共同挤压的中密度聚乙烯/乙烯乙烯基醇层，厚度约为0.002英寸[或约56微米(μm)]；尼龙层厚度约为0.00048英寸(或约12.2微米)；低密度聚乙烯层厚度约为0.0020英寸(或约50.8微米)。
当不受理论约束时，内部和外部聚烯烃层是汽屏障层。每层的汽屏障属性可通过增加层的厚度来增加。然而，在包装的外边没有必要有汽屏障层，然而，为了自动制备无菌袋，需要具有外部聚烯烃层，如中密度聚乙烯层，因为这一层在灭菌过程中保护了氧屏障层的稳定性。如，这一层通过过氧化氢浴在拉膜过程中保护氧屏障层。其他适合的外层包括，如，线性低密度聚乙烯，低密度聚乙烯，高密度聚乙烯，或聚丙烯。可理解认为，如果不需要灭菌过程，外部聚烯烃层将不需要。此外，如果使用其他的灭菌技术，其中氧屏障层不受到影响，或其中使用经受住灭菌过程的氧屏障层，那么外部聚烯烃层也不需要。
在本发明的另一个实施方案中，氧屏障层包括基本上不渗透氧的聚合物，包括包膜支持物料。在一个实施方案中，支持物料可以是如聚酯或聚酰胺(如尼龙)，包膜可以是氧化硅(SiOx)或能沉积在支持物料上以使其不渗透氧的其他物料，如金属氧化物。
任意地，可使用透明外包装。透明外包装可由适当的物料制备，如聚合物膜(如基本上不渗透氧的聚酯，聚丙烯，乙烯乙烯基醇(EVOH)，或尼龙)或层压物，如金属箔层压物(如银或铝金属箔层压物)或其他氧屏障层压物。其中透明外包装是膜，如聚酯膜，通过多种适当的方法膜可使得膜不渗透氧。在一个实施方案中，制备的膜基本上不渗透氧。可替换地，其中聚合物物料的不渗透氧性不足以满足所要求的规格，膜可进行层压，或作其他处理与降低或消除氧渗透性。在一个较好的实施方案中，使用金属箔层压物，其中金属箔是率，银，金或其他金属。较好地，金属箔的厚度在约0.0001到0.001英寸之间(或在约2.54到25.4微米之间)，更好地，为约0.0003英寸(或为约7.62微米)。通常层压物包括一个或多个聚合物层。聚合物可以是多种聚合物料，包括如聚酯层(如48规格聚酯，或约12.2微米)，尼龙，乙烯乙烯基醇，聚氯乙烯等。
如果存在，初级包装和透明外包装，可以是多种结构的，包括瓶，圆筒，盒等。在一个较好的实施方案中，初级包装是袋状的。制备适当的袋可通过如以薄片的周长粘结一个或多个(如两个)薄片以形成牢固封闭的，不渗透氧的，具有可填充中心的结构。粘结可使用任何适合的物料实施。其中线性低密度，低密度，中密度或高密度聚乙烯用作物料的内层，在适当条件下通过加热可密封薄片。此领域中众所周知的是，在适当的条件下，加热可使聚乙烯自身密封。此领域中众所周知的是，变化参数可获得膜聚烯烃表面的适当粘结，这些参数包括温度，压力和“停留时间”。其中停留时间是薄片置于压力和温度下的持续时间。一般，线性低密度聚乙烯需要较少的热量，而逐渐增高密度的聚乙烯需要逐渐增多的热量。如，将在两片薄片的内表面上的含有1.5千分之一英寸(0.0015英寸或38.1微米)线性低密度聚乙烯的层压物在50psi(34047牛顿/平方厘米)，300(149℃)下处理1秒，可产生适用在本发明的方法中的密封。此外，高密度聚烯烃一般在粘结过程中耐受较高的压力。通常，如果压力过高，加热的物料可能会从接触的区域压走，产生较弱的密封。在聚酯/金属箔层压物的情况中，可使用聚酯粘合剂作为实施例。
在一个较好的实施方案中，血液替代品在基本上不含氧的氛围中包装。适当的氛围包括氮，氩和氦氛围。
如本文中所描述的，血液替代品是使用在人类，哺乳动物和其他脊椎动物中的血红蛋白基携氧组合物，其能运输并传递氧到重要的器官和组织，至少能保持足够的血管内肿胀压。脊椎动物是传统定义的脊椎动物，包括人类，或在循环系统中使用血液传递氧到组织中的任何其他脊椎动物。此外，循环系统的定义是传统上的定义，包括心脏，动脉，静脉和包括较小脉管结构如毛细血管的微循环。
本发明的血液替代品较好地含有内毒素，磷脂，外源蛋白质和其他污染物的量不会产生显著的免疫系统反应，并且对受体是非-毒性的。较好地，血液替代品是超纯的。如本文所定义的超纯的，意指含有少于0.5EU/毫升的内毒素，少于3.3毫微摩尔/毫升的磷脂，和少到不可检测量的非-血红蛋白蛋白质，如血清清蛋白或抗体。
“内毒素”是指细胞结合脂多糖，产生作为革兰氏阴性细菌细胞壁外层的一部分，其在许多条件下是有毒的。当注射到动物中时，内毒素可引起发热，腹泻，出血性休克和其他组织损伤。内毒素单位(EU)已由1983年的美国药典协定(3014页)定义为包含在0.1毫微克美国参考标准批EC-5中的活性。一管形瓶EC-5含有10,000EU。适合在血液替代品中确定内毒素浓度的方法实施例包括由Associates of Cape Cod,WoodsHole,Massachusetts研制的“动力学/比浊 Limuus amebocyticlystate(LAL)5000法”。
稳定的聚合血红蛋白，如本文所定义的，是血红蛋白基携氧组合物，其在适当的储存温度下在两年或更长时间的储存期间，基本上不增加或减少分子量分布和/或高铁血红蛋白的量，当储存在低氧环境中时，较好地是两年或更长的时间。适于储存一年或更长时间的储存温度在约0℃到约40℃之间。较好的储存温度范围在约0℃到约25℃之间。
适当的低氧环境，或基本上不含氧的环境，定义为在至少约两个月的储存期间，较好地在至少约1年的储存期间，或更好地在至少约两年的储存期间，产生高铁血红蛋白浓度少于约15％重量百分比血液替代品的与血液替代品接触的氧累积量。氧累积量包括渗入到血液替代品包装中的氧和血液替代品和包装的原始氧量。
贯穿这种方法，从红血细胞(RBC)收集到血红蛋白聚合，血液溶液，RBC和血红蛋白都保持在足以最小化微生物生长，或生物负担的情况下，如保持温度为低于约20℃并高于0℃。较好地，温度保持在约15℃或更低。更好地，温度保持在10±2℃。
在这种方法中，用于制备稳定聚合血红蛋白血液替代品过程中的部分组成是基本上清洁的以产生无菌的产品。无菌如此领域中所定义的，具体地，溶液满足在USP ⅩⅫ第71部分，1483-1488页中提供的美国药典对无菌的要求。并且，暴露在过程物流中的部分组成通常用不与过程物流反应或污染过程物流的物料制备或覆盖。这样的物料包括不锈钢和其他钢合金，如因科镍合金。
适当的RBC源包括人类血液，牛血液，绵羊血液，猪血液，从其他脊椎动物获取的血液和转基因制备血红蛋白，如在生物技术，12:55-59(1994)中描述的转基因Hb。
血液可从肝脏或新鲜宰杀的供体获取。一种收集牛全血的方法在颁布给Rausch等人的美国专利No.5,084,558和5,296,465中描述。较好的是以清洁方式收集血液。
在收集时或其后不久，将血液与至少一种抗凝血剂混合以预防血液的显著凝结。血液适当的抗凝血剂是此领域中传统上已知的，包括如柠檬酸钠，乙二胺四乙酸和肝磷脂。当与血液混合时，抗凝血剂可以是固态的，如粉末，或是水溶液。
可以理解认为，血液溶液源可来自新鲜收集的样品或来自老样品，如从血库获取的期满人类血液。并且，血液溶液可以预先已被保持在冷冻状态和/或液体状态。较好地，使用在这种方法中的血液溶液不是冷冻的。
在另一个实施方案中，在将血液溶液引入到抗凝血剂中以前，测定血液溶液中的抗生素量，如青霉素的量。通过检验血液样品的供体没有进行抗生素治疗，确定抗生素的量以提供血液样品没有负担感染性生物体的确信程度。适当的测定抗生素的方法包括青霉素测定试剂盒(Difco,Detroit,MI)，使用名为“快速检测奶中青霉素”的方法。较好地，血液溶液含有青霉素的量少于或等于约0.008单位/毫升。或者，可使用牧群管理程序来监测牲畜中的疾病或抗生素治疗。
较好地，在抗凝血剂步骤期间或之前，将血液溶液粗滤，如通过粗滤除去大聚集体和颗粒。600目筛是适当的粗滤器实例。
然后用适当的方式冲洗血液溶液中的RBC，如通过透滤法或使用至少一种溶液，如等张溶液通过间断稀释和浓缩步骤的组合来从胞外血浆蛋白质，如血清清蛋白或抗体(免疫球蛋白(IgG))中分离RBC。可以理解认为，RBC可以间歇或连续进料方式冲洗。
可接受的等张溶液是此领域中已知的，包括溶液，如柠檬酸/盐溶液，具有不会裂解RBC细胞膜的及取代全血血浆部分的pH和等渗容摩。较好的等张溶液具有中性pH及等渗容摩在约285-315mOsm之间。在一个较好的实施方案中，等张溶液由柠檬酸钠二水合物(6.0克/升)和氯化钠(8.0克/升)的水溶液组成。
可使用在本发明中的水包括蒸馏水，去离子水，注射用水(WFI)和/或低热原水(LPW)。WFI是较好的，其是去离子蒸馏水，满足注射用水的美国药典规格。WFI进一步在药学工程，11,15-23(1991)中描述。LPW是较好的，其是含有少于0.002EU/毫升的去离子水。
较好地，在加入到血液溶液中以前，将等张溶液过滤。适当的过滤器实例包括Millipore10,000道尔顿超过滤膜，如Millipore Cat#CDUF 050 G1过滤器或A/G技术空心过滤器，10,000道尔顿(Cat#UFP-10-C-85)。
在一个较好的实施方案中，通过透析过滤法冲洗血液溶液中的RBC。适当的透析过滤器包括孔大小能将RBC从显著小的血液溶液组成中分离出的微孔膜，如0.1微米到0.5微米的过滤器(如0.2微米空心纤维过滤器，Microgon Krosflo Ⅱ微过滤药液筒)。同时，过滤的等张溶液以与滤出液流出透析过滤器的速度(或体积)相同的速度连续地(或间歇地)作为补充加入。在RBC冲洗期间，直径显著小于RBC的血液溶液组成，或流体如血浆，在滤出液中穿过透析过滤器的壁。RBC，血小板和稀释血液溶液的较大组成，如白细胞，保留在并与等张溶液混合，其连续地或间歇地进入以形成透析血液溶液。
在一个更好的实施方案中，在透析过滤容器中血液溶液的体积初始通过在透析过滤容器中加入一定体积的过滤的等张溶液来稀释。较好地，加入等张溶液的体积约等于初始血液溶液的体积。
在可替换的实施方案中，RBC通过一系列连续(或逆向连续)稀释和浓缩步骤冲洗，其中血液溶液通过加入至少一种等张溶液稀释，通过流过过滤器，从而形成透析血液溶液来浓缩。
当污染RBC血浆蛋白质的量已被显著地减少(通常至少约90％)，RBC冲洗就完成了。一般，当从透析过滤器34排出的滤出液的体积等于约300％的，或更多的，在用过滤的等张溶液稀释前包含在透析过滤容器中的血液溶液的体积时，RBC冲洗就完成了。另外的RBC冲洗可进一步从RBC中分离细胞外血浆蛋白质。如，用6倍体积的等张溶液透析过滤可从血液溶液中除去至少约99％的IgG。
然后将透析的血液溶液用将透析血液溶液中的RBC从白细胞和血小板中分离的装置处理，如通过离心作用。
可以理解认为，也可使用此领域中通常已知的其他方法将RBC从其他血液组成中分离出来。如，沉降法，其中在将RBC从其他血液组成中分离之前，分离方法不裂解显著量的RBC的细胞膜，如少于约30％的RBC。
分离RBC后，接着通过将RBC溶胞从RBC中释放血红蛋白以形成含血红蛋白溶液的装置将RBC溶胞。溶胞装置可使用不同的溶胞方法，如机械溶胞，化学溶胞，低渗溶胞或其他已知的释放血红蛋白但不显著损伤Hb运输和释放氧能力的溶胞方法。
在另一个实施方案中，重组制备的血红蛋白，如在自然，356:258-260(1992)中描述的重组制备的血红蛋白，可使用在本发明的方法中替换RBC。如上所述冲洗含有血红蛋白的细菌细胞，并从污染物中分离。然后使用此领域中已知的方法，将这些细菌细胞机械溶胞，如球磨，以从细胞中释放血红蛋白并形成溶胞细胞相。然后将这个溶胞细胞相进行如溶胞RBC相一样的处理。
溶胞后，对溶胞的RBC相进行超过滤以除去较大的细胞碎片，如分子量超过约100,000道尔顿的蛋白质。通常，细胞碎片包括所有全过部分细胞组成，除了Hb，较小细胞蛋白质，电解质，辅酶和有机代谢中间产物。可接受的超过滤器包括，如由Millipore(Cat#CDUF 050 H1)制备的100,000道尔顿的过滤器和由A/G技术(Needham,MA；型号No.UFP100E55)制备的过滤器。
较好地，连续超过滤，直到溶胞的RBC相中的Hb浓度小于8克/升(g/l)以最大化可用来聚合的血红蛋白的产量。可以使用从裂解RBC相中分离Hb的其他方法，包括沉降法，离心分离或微过滤。
Hb超滤出液可进行超过滤以从Hb超滤出液中除去较小细胞碎片，如电解质，辅酶，新陈代谢中间产物和分子量小于约30,000道尔顿的蛋白质，和水。适当的超过滤器包括30,000道尔顿超过滤器(Millipore Cat#CDUF 050 T1和/或Armicon,#540430)。
然后，浓缩的Hb溶液可直接倒入一个或多个并联的层析柱中以通过高效液相层析进一步从其他组成中如抗体，内毒素，磷脂和酶和病毒中分离血红蛋白。适当的介质实例包括阴离子交换介质，阳离子交换介质，疏水作用介质和亲和介质。在一个较好的实施方案中，层析柱包括适于从非-血红蛋白蛋白质中分离血红蛋白的阴离子交换介质。适当的阴离子交换介质包括，如硅胶，氧化铝凝胶，二氧化钛凝胶，交联右旋糖苷，琼脂糖或衍生组成，如聚丙烯酰胺，聚甲基丙烯酸羟乙酯和苯乙烯二乙烯基苯，已被阳离子化学官能团，如二乙基氨乙基或季氨乙基基团。适当的阴离子交换介质和与可能存在于溶胞的RBC相中的其他蛋白质和污染物相比选择性吸附和解吸附Hb的相应洗脱液，可方便地由此领域中的合理技术确定。
在一个更好的实施方案中，一种方法用来从硅胶制备阴离子交换介质，其进行热液处理以增加孔大小，用γ-glycidoxy丙基硅烷处理以形成活性环氧化物基团，然后用C3H7(CH3)NCl处理以形成季铵阴离子交换介质。这种方法在层析法期刊，120:321-333(1976)中作了描述。
首先层析柱用促进Hb结合的第一洗脱液冲洗进行预处理。然后将浓缩的Hb溶液注入到柱中介质中。注入浓缩Hb溶液后，然后用不同的洗脱液连续地冲洗层析柱以产生分离的，提纯的Hb洗脱物。
在一个较好的实施方案中，在层析柱中使用pH梯度以从Hb中分离蛋白质污染物，如酶碳酸酐酶，磷脂，抗体和内毒素。具有不同pH值的系列缓冲液中的每一种，顺序地倒入以在层析柱中的介质内产生pH梯度。较好地，缓冲液进行了过滤，如用10,000道尔顿除热原膜。用来分离Hb的缓冲液应具有小的离子强度，这样Hb和非-血红蛋白污染物的洗脱通常取决于pH并不显著地取决于离子强度。一般，离子浓度约为50mM，或更低的缓冲液具有适当的小离子强度。
第一缓冲液将浓缩的Hb运输到层析柱的介质中并促进Hb与介质的结合。然后用第二缓冲液调节柱内的PH以洗脱污染的非-血红蛋白组成而保持Hb与介质结合。然后用第三缓冲液洗脱Hb。收集Hb洗脱物。较好地，Hb洗脱物流过灭菌过滤器。适当的灭菌过滤器包括0.22毫微米过滤器，如Sartorius SartobranCat#5232507 G1PH过滤器。
在一个较好的实施方案中，Hb洗脱物开始的3％-4％和Hb洗脱物最后的3％-4％倒入废料中以保证Hb洗脱物的纯度。
其中层析柱可重新使用，保留在柱中的污染的非-血红蛋白蛋白质和内毒素，可通过第四缓冲液洗脱。
使用pH梯度从非-血红蛋白污染物中分离Hb进一步在1995年6月7目的美国专利5,691，452中描述。在一个较好的实施方案中，第一缓冲液是三羟甲基甲胺(Tris)溶液(浓度约为20 mM；pH约为8.4到约9.4)。第二缓冲液是第一缓冲液和第三缓冲液的混合物，第二缓冲液的pH约为8.2到8.6。第三缓冲液是Tris溶液(浓度约为50mM；pH约为6.5到约7.5)。第四缓冲液是氯化钠/Tris溶液(浓度约为1.0M氯化钠和约20mMTris；pH约为8.4到约9.4，较好的约为8.9-9.1)。特别推荐的是第二缓冲液的pH在约8.2到约8.4之间。
一般，使用的缓冲液温度在约0℃到约50℃之间。较好的，使用期间缓冲液的温度在约12.4±1.0℃。此外，缓冲液一般保存在温度约9℃到约11℃之间。
在聚合形成脱氧Hb溶液(本文后称脱氧-Hb)之前，较好地Hb洗脱物进行脱氧，通过基本上对Hb脱氧但不显著降低Hb在Hb洗脱物中运输和释放氧能力的方式，如会由于形成氧化血红蛋白(metHb)变性而产生。
在一个实施方案中，Hb洗脱物通过惰性气体流过相膜的气体输送来脱氧。这样的惰性气体包括，如氮气，氩和氦。可以理解认为，其他此领域中已知的脱氧血红蛋白溶液的方式，也可用来脱氧Hb洗脱物。这样的其他方式可包括，如氮气喷射Hb洗脱物，用还原试剂如N-乙酰基-L-半胱氨酸(NAC)，半胱氨酸，连二亚硫酸钠或抗坏血酸钠化学吹扫，或通过光来光解。
从层析柱洗脱后，较好地浓缩Hb洗脱物以改善过程的效率。Hb洗脱物重新循环流过超过滤器以浓缩Hb洗脱物形成浓缩的Hb溶液。适当的超过滤器包括，如，30,000或更小道尔顿超过滤器(如Millipore Helicon,Cat#CDUF 050 G1或Amicon Cat#540430)。一般，当Hb的浓度在约100到约120克/升之间时，Hb洗脱物的浓缩完成。当浓缩Hb洗脱物时，Hb洗脱物温度较好地保持在约8-12℃。
然后将缓冲液倒入Hb溶液，Hb溶液较好地是浓缩的，调节Hb溶液的离子强度以增强Hb的脱氧作用。较好地，将离子强度调节到约150meq/升到约200meq/升之间以减小Hb溶液总Hb的氧的亲和力。适当的缓冲液包括具有不会对Hb蛋白质产生显著的变性但有足够高的离子强度以促进Hb脱氧的pH值的缓冲液。适当的缓冲液实例包括pH值范围在约6.5到约8.9之间的盐溶液。较好的缓冲液是水溶1.0M氯化钠，20mM Tris溶液，pH约为8.9。
较好地，产生的缓冲Hb溶液重新循环流过超过滤器，再次浓缩Hb溶液以改善过程效率。在一个较好的实施方案中，当Hb的浓度约为100克/升到约120克/升之间时，浓缩完成。
在脱氧作用期间，Hb溶液循环流过适当的相转移膜。适当的相转移膜包括，如，0.05毫微米聚丙烯中空纤维微过滤器(如Hoechst-Celanese Cat# 5 PCM-107)。同时，惰性气体逆向流过相转移膜。适当的惰性气体包括，如，氮气，氩和氦。穿过相转移膜的气体交换，从而将氧从Hb溶液中剥离。
脱氧作用持续直到Hb溶液的pO2减少到其中在Hb溶液中氧化Hb(氧基血红蛋白或HbO2)的量约为20％或更少的量。在一个较好的实施方案中，在Hb溶液中HbO2的量约为10％或更少。
在脱氧作用期间，Hb溶液的温度通常保持在平衡脱氧速度和形成高铁血红蛋白速度的量上。保持温度以抑制高铁血红蛋白的量少于约20％。当仍然在脱氧Hb溶液时，最优的温度会产生高体血红蛋白量少于约5％，较好的高铁血红蛋白量少于约2.5％。通常，在脱氧期间，Hb溶液的温度保持在约19℃到约31℃之间。
在脱氧期间，和随后的本发明的方法的剩余步骤中，Hb保持在低氧环境中以最少化Hb吸附氧并保持HbO2的量少于约20％，较好地少于约10％。
然后较好地用含有巯基化合物的低氧含量储存缓冲液平衡脱氧-Hb，以形成氧化作用稳定性脱氧-Hb。适当的巯基化合物包括无-毒性还原试剂，如N-乙酰基-L-半胱氨酸(NAC)D,L-半胱氨酸，γ-谷氨酰基-半胱氨酸，谷胱甘肽，2,3-二巯基-1-丙醇，1,4-丁二硫醇，硫代乙醇酸酯，和其他生物学上相容的巯基化合物。低氧含量储存缓冲液的氧含量必须足够低以不显著地降低巯基化合物在缓冲液中的浓度，抑制在氧化作用稳定性脱氧-Hb中氧基血红蛋白的含量到约20％或更少，较好地少于约10％。一般，储存缓冲液含有pO2少于约50托。
在一个较好的实施方案中，储存缓冲液应具有适于平衡Hb聚合和高铁血红蛋白形成的pH值，一般在约7.6到约7.9之间。
与脱氧-Hb混合的巯基化合物的量是足够高以在聚合期间增加Hb分子间交联并足够低以不显著降低Hb分子的分子间交联的量，由于高离子强度会降低分子间交连。一般，需要约1摩尔巯基官能基团(-SH)氧化稳定约0.25摩尔到约5摩尔的脱氧-Hb。
在一个较好的实施方案中，储存缓冲液含有约25-35mM磷酸钠缓冲液(pH7.7-7.8)并含有在氧化作用稳定性脱氧Hb中NAC浓度在约0.003％到约0.3％重量比之间的一定量的NAC。更好地，在氧化作用稳定性脱氧Hb中NAC浓度在约0.05％到约0.2％重量比之间。
较好地，在与脱氧-Hb混合之前，过滤储存缓冲液，如通过10,000道尔顿超过滤膜(Millipore Helicon Cat#CDUF 050 G1或A/G技术Maxcell Cat#UFP-10-C-75)。
在一个实施方案中，氧化作用稳定性脱氧-Hb流过任选过滤器。适当的过滤器包括0.2毫微米聚丙烯预滤器和0.5毫微米灭菌微过滤器(Pall Profile Ⅱ,Cat#ABIY005Z7或GelmanSupor)。脱氧-Hb保持在基本上不含氧的环境中。这可以通过在用氧化作用稳定性脱氧-Hb填充前或后，用惰性气体如氮气吹扫和覆盖过程装置来实施。
任意地，在将氧化作用稳定性脱氧-Hb转移到聚合过程前，可在聚合反应器中加入适当量的水。在一个实施方案中，适当量的水是当氧化作用稳定性脱氧-Hb加入到聚合反应器中时产生的溶液浓度约为10到约100克/升的水量。较好地，水是贫氧的。
在聚合步骤中水的pO2减少到足以抑制HbO2含量到约20％后，通常少于约50托，聚合反应器用惰性气体覆盖，如氮气。然后将氧化作用稳定性脱氧-Hb转移到聚合反应器中，同时用适当流量的惰性气体覆盖。
当与交联试剂接触时，将在聚合反应器中的氧化作用稳定性脱氧-Hb溶液的温度升高到最优化氧化作用稳定性脱氧-Hb聚合的温度。通常，在聚合作用中，氧化作用稳定性脱氧-Hb的温度在约25℃到约45℃，较好地约41℃到约43℃。可接受的加热聚合反应器的热传递装置实例夹套加热系统，其通过在夹套中直接加入热1,2-亚乙基二醇加热。
然后，在足以聚合氧化作用稳定性脱氧-Hb形成聚合血红蛋白(聚(Hb))的温度下，将氧化作用稳定性脱氧-Hb用适当的交联试剂处理约2小时到约6小时的一段时间。
适当的交联试剂的实例包括可交联Hb蛋白质的多官能试剂，如戊二醛，琥珀醛，激活形式的聚氧化乙烯和右旋糖苷，α-羟基醛，如羟乙醛，N-马来酰亚胺基-6-氨基己酰基-(2’-硝基，4’-磺酸)-苯基酯，m-马来酰亚胺安息香酸-N-羟基琥珀酰亚胺酯，琥珀酰亚胺基4-(N-马来酰亚胺甲基)环己烷-1-羧酸酯，磺基琥珀酰亚胺基4-(N-马来酰亚胺甲基)环己烷-1-羧酸酯，m-马来酰亚胺苯甲酰-N-羟基琥珀酰亚胺酯，m-马来酰亚胺苯甲酰-N-羟基磺基琥珀酰亚胺酯，N-琥珀酰亚胺基(4-碘代乙酰基)氨基安息香酸酯，磺基琥珀酰亚胺基4-碘代乙酰基)氨基安息香酸酯，琥珀酰亚胺基4(p-马来酰亚胺苯基)丁酸酯，磺基琥珀酰亚胺基4(p-马来酰亚胺苯基)丁酸酯，盐酸1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)碳化二亚胺，N,N’-亚苯基二马来酰亚胺，和属于bis-imidate类，酰基二嗪农类或酰基二卤化物的化合物，亦在其中。
适当量的交联试剂是允许分子间交联以稳定Hb并允许分子间交联以形成Hb聚合物，从而增加血管内停留时间的量。通常，适当量的交联试剂是其中交联试剂与Hb的摩尔比率超过2∶1的量。较好地，交联试剂与Hb的摩尔比率在约20∶1到约40∶1之间。
较好地，聚合作用在pH在约7.6到约7.9之间，氯浓度少于或等于约35毫摩尔的缓冲液中实施。
在一个较好的实施方案中，适当量的交联试剂加入到氧化作用稳定性脱氧-Hb中并通过低剪切混合装置来混合。适当的低剪切装置包括静态混合器。适当的静态混合器是如，Chemineer有限公司的“Kenics”静态混合器。
在一个实施方案中，将氧化作用稳定性脱氧-Hb和交联试剂重新循环流过静态混合器产生湍流状况，均匀混合交联试剂和氧化作用稳定性脱氧-Hb，从而减少形成含高浓度交联试剂的脱氧-Hb窝的可能性。均匀混合交联试剂和氧化作用稳定性脱氧-Hb可减少形成大分子量Hb聚合物，即聚合物重超过500,000道尔顿，并可允许聚合期间交联试剂和脱氧-Hb的快速混合。并且，在Hb聚合期间由于存在巯基化合物，较好地是NAC，会产生显著的Hb分子间交联。虽然巯基化合物与戊二醛和/或Hb间相互作用的确切机理尚不了解，但可以推定，巯基化合物以至少部分抑制高分子量Hb聚合物形成并择优地形成稳定四聚体Hb的方式影响Hb/交联试剂的化学键合。
聚(Hb)定义为具有显著的分子间交联的，如果Hb分子的主要部分(如至少约50％)化学键合在聚(Hb)中，并只有小部分Hb分子，如少于约15％保留在高分子量聚合血红蛋白链中。高分子量聚(Hb)分子是，如分子量超过约500,000道尔顿的分子。
在一个较好的实施方案中，戊二醛用作交联试剂。通常每公斤氧化作用稳定性脱氧-Hb使用约10到约70克戊二醛。更好地，戊二醛经5小时加入直到每公斤氧化作用稳定性脱氧-Hb有约29-31克戊二醛加入。
聚合作用后，聚合反应器中的聚(Hb)溶液的温度一般降低到约15℃到约25℃。
使用的交联试剂不是醛的情况中，形成的聚(Hb)通常是稳定的聚(Hb)。使用的交联试剂是醛的情况中，形成的聚(Hb)通常是不稳定的，直到与适当的还原试剂混合以减少聚(Hb)中稳定性差的键形成更稳定的键。适当的还原试剂实例包括硼氢化钠，氰基硼氢化钠，连二亚硫酸钠，三甲基胺，t-丁基胺，吗啉硼烷，嘧啶硼烷。在加入还原试剂之前，聚(Hb)溶液任意地通过超过滤作用浓缩，直到聚(Hb)溶液的浓度增加到约75到约85克/升之间。适当的超过滤器的一个实例是30,000道尔顿过滤器(如Millipore Helicon,Car#CDUF 050 LT和Amicon,Cat#540430)。
然后将聚(Hb)溶液的pH到碱性pH范围以保存还原试剂并预防氢气形成。其在随后的还原反应中能使Hb变性。在一个实施方案中，pH调节到大于10。pH可以通过在聚合期间或之后在聚(Hb)溶液中加入缓冲溶液调节。通常除去非-聚合血红蛋白提纯聚(Hb)。这个过程可通过透析过滤或羟磷灰石层析来实施(参看如，美国专利5,691,453)。
调节pH之后，至少一种还原试剂，较好的是硼氢化钠溶液，一般通过脱氧作用循环加入到聚合步骤中。一般，每摩尔Hb四聚体(每64,000道尔顿Hb)加入约5到约8摩尔的还原试剂。在一个较好的实施方案中，对于在聚合亚系统98中的每九升聚(Hb)溶液，以0.1到0.12lpm的速度加入1升0.25mM硼氢化钠溶液。
然后可将稳定聚(Hb)的pH和电解质恢复到生理量，通过使用具有适当pH和生理量的电解质的透析过滤溶液透析过滤稳定聚(Hb)，以形成稳定的聚合血红蛋白血液溶液。较好地，透析过滤溶液是缓冲溶液。
在聚(Hb)被还原试剂还原的情况中，透析过滤溶液具有酸性pH，较好地在约4到约6之间。
无毒性巯基化合物也可加入到稳定聚(Hb)溶液中作为氧清除剂，以增强最终聚合血红蛋白血液溶液的稳定性。巯基化合物可作为部分透析过滤溶液加入，和/或独立加入。加入一定量的巯基化合物，确立一个清除氧在储存期间保持高铁血红蛋白含量少于约15％的巯基浓度。较好地，巯基化合物是NAC。一般，加入巯基化合物的量是足以确立巯基浓度在约0.05％到约0.2％重量比之间的量。
在一个较好的实施方案中，当用惰性气体维持压力，在基本上不含氧的环境中，在聚合反应器和保持运输装置中时，血液溶液在无菌操作状况下包装。
通过本发明的方法制备的适当的稳定聚合血红蛋白血液替代品的规格在表Ⅰ中提供。
                表Ⅰ
    参数       结果
  PH(18-22℃)    生理可接受的
    内毒素    生理可接受的
   无菌测试      满足测试
    磷脂a    生理可接受的
  总血红蛋白高铁血红蛋白氧基血红蛋白     10-250克/升＜15％＜10％
    钠Na+钾K+氯Cl-钙Ca++硼    生理可接受的
    戊二醛    生理可接受的
N-乙酰基-L-半胱氨酸    生理可接受的
    M.W.＞500,000       ≤15％
    M.W.≤65,000       ＜10％
    M.W.＜32,000       ＜5％
    微粒含量＞10μ       ＜12/毫升
    微粒含量＞25μ       ＜2/毫升
a-聚合前在Hb中测定的
然后将血液替代品储存在短期储存容器中或储存在无菌容器中，如上面详细描述的，每种容器具有低氧环境。储存容器还应充分地不可渗透水汽以预防通过储存期间的蒸发显著浓缩血液替代品。显著浓缩血液替代品是导致血液替代品的一种或多种参数高于规格的浓缩。
依据本发明的方法制备的，稳定聚合血红蛋白血液替代品的合成在美国专利5,296,465中进一步描述。
能接受依据本发明的方法制备的血液替代品的脊椎动物包括，哺乳动物，如人类，非人类灵长类，狗，猫，田鼠，马或绵羊。并且，能接受所说的血液替代品的脊椎动物，包括胎儿(出生前脊椎动物)，出生后脊椎动物，或出生时的脊椎动物。
本发明的血液替代品可通过直接和/或非直接注射血液替代品到脊椎动物的循环系统中给循环系统服用，通过一种或导致注射方法。直接注射方法实例包括血管内注射，如静脉内注射和动脉内注射，和心脏内注射。非直接注射方法实例包括腹腔内注射，皮下注射，这样血液替代品通过淋巴系统运输到循环系统中，或通过套管针或导管注射到骨髓中。较好地，血液替代品静脉内服用。
在注入血液替代品前，期间，和/或后，要治疗的脊椎动物可以是正常血量，血量过高或血量过低的。通过如局部装载法或通过交换法，血液替代品可直接进入到循环系统中。
血液替代品可治疗服用，治疗由于多种不同病因导致的脊椎动物体内组织低氧，不同病因包括部分，或整个循环系统中RBC流动的减少，贫血症和休克。并且，血液替代品可预防服用，以预防脊椎动物体内组织氧-耗竭，其可能是由于脊椎动物整个循环系统或组织的RBC流动可能的或预期的减少。进一步讨论服用血红蛋白治疗上或预防上治疗低氧症，特别是由于局部动脉阻塞和由于局部微循环阻塞引起的，以及其服用剂量，在1995年3月23日提交的共同待审的美国专利申请系列No.08/409,337，现在美国专利5,854,209中提供。
通常，血液替代品的适当剂量或剂量组合是，当包含在血液血浆中时，会在脊椎动物血液中产生血红蛋白浓度在约0.1到约10克Hb/dl之间，或更高浓度的血红蛋白浓度的量，如果需要补充大量的血液损失。
本发明通过下列实施例进行进一步具体地描述。
                   实施例1
           合成稳定聚合Hb血液替代品
如在美国专利No.5,296,465中所描述的，收集牛全血样品，与柠檬酸钠抗凝血剂混合形成血液溶液。
收集后每种血液溶液样品保持在温度约2℃下，然后用600目筛粗滤除去大聚集体和颗粒。
集中前，使用命为“快速检测奶中的青霉素”的方法，使用从Difco,Detroit,Michigan购得的测试试剂盒测定每种血液溶液样品中青霉素的量，以确保在血液溶液样品中的青霉素的量＜0.008单位/毫升。
然后将血液溶液样品集中并与除热原的水溶柠檬酸钠溶液混合形成牛全血的0.2％重量比的柠檬酸钠溶液(本文后称“0.25柠檬酸钠血液溶液”)。
然后将0.2％柠檬酸钠血液溶液顺序流过800毫微米和50毫微米的聚变性过滤器，除去直径约为50毫微米或更大的大型血液溶液碎片。
然后冲洗RBC以从RBC中分离细胞外血浆蛋白质，如BSA或IgG。为了冲洗血液溶液中的RBC，透析过滤容器中的血液溶液体积初始通过在透析过滤容器中加入等体积的过滤的等张溶液来稀释。等张溶液用Millipore(Cat#CDUF 050 G1)10,000道尔顿超过滤膜来过滤。等张溶液由6.0克/升柠檬酸钠二水化物和8.0克/升的氯化钠的注射用水(WFI)溶液组成。
然后通过0.2毫微米中空纤维(Microgon Krosflo Ⅱ微过滤药液筒)透析过滤器的透析过滤，将稀释的血液溶液浓缩到其原来体积。同时，过滤的等张溶液以与滤出液流出0.2毫微米透析过滤器的速度相同的速度连续地作为补充加入。在透析过滤期间，直径显著小于RBC的稀释血液溶液组成，或流体如血浆，随滤出液穿过0.2毫微米透析过滤器的壁。RBC，血小板和稀释血液溶液的较大组成，如白细胞，与连续加入的等张溶液一起保留，形成透析血液溶液。
在RBC冲洗期间，稀释的血液溶液保持在温度在约10到25℃之间，透析过滤器的入口处的液体压力在约25psi到约30psi之间以改善过程效率。
当从透析过滤器排出的滤出液的体积等于约600％用过滤的等张溶液稀释前血液溶液体积时，RBC冲洗完成。
然后将透析的血液溶液连续地以约4lpm的速度泵送到型号#AS-16，装有#28 ringdam的Sharples Super离心分离器中。离心分离器操作同时加料透析血液溶液，以从白细胞和血小板中分离RBC。操作期间，离心分离器以足够将RBC分离到重RBC相中，并将相当大部分的白细胞(WBC)和血小板分离到轻WBC相中的速度旋转，具体约为15,000rpm。在操作期间，RBC相部分和WBC相部分分别地并连续地从离心分离器中流出。
分离RBC后，溶胞RBC形成含血红蛋白溶液。当从离心分离器中流出时相当大部分的RBC被机械溶胞。由于流出离心分离器的RBC相流体以一定角度撞击RBC相流出管壁，RBC的细胞膜破裂，从而将血红蛋白(Hb)从RBC中释放到RBC相中。
溶胞的RBC相流经RBC相流出管进入到静态混合器(Kenics1/2英寸带有6个部件，Chemineer有限公司)中。与转移RBC相到静态混合器中同时，等量WFI也注入到静态混合器中，其中WFI与RBC相混合。RBC相和WFI流入到静态混合器中的流速每种在约0.25lpm。
在静态混合器中混合RBC相和WFI产生溶胞的RBC胶体。将溶胞的RBC胶体从静态混合器中转移到Sharples Super离心分离器(型号#AS-16,Sharples Division of Alfa-Laval Separation有限公司)中，其适于从非-血红蛋白RBC组成中分离Hb。离心分离器以足以将溶胞的RBC胶体分离成轻Hb相和重相的速度旋转。轻相含有Hb并含有密度约等于或小于Hb密度的非-血红蛋白组成。
Hb相连续地从连续分离器中排出，通过0.45毫微米MilliporePellicon Cassette,Cat#HVLP 000 C5微过滤器，进入到储存容器中以备Hb提纯。然后细胞基质和滞留物从微过滤器返回到储存容器中。在微过滤期间，储存容器内的温度保持在约10℃或更低。为了改善效率，当微过滤器入口出液体压力从初始压力约10psi增加到约25psi时，微过滤完成。Hb微滤出液从微过滤器转移微滤出液容器中。
随后，Hb微滤出液泵送流过100,000Millipore Cat#CDUF 050H1超过滤器。包含在Hb微滤出液中的相当大部分Hb和水，渗透过100,000道尔顿超过滤器形成Hb超滤出液，而大型细胞碎片，如分子量超过约100,000道尔顿的蛋白质被保留并重新循环返回到微滤出液容器中。同时，WFI连续地加入到为滤出液容器中补充留在超滤出液中的水。通常，细胞碎片包括所有完整的和片段的细胞组成，除了Hb，较小的细胞蛋白质，电解质，辅酶和有机代谢中间产物。持续超过滤直到在微滤出液中的Hb浓度少于8克/升(g/l)。当超过滤Hb时，微滤出液容器内的温度保持在约10℃。
将超滤出液转移到超滤出液容器中，其中Hb超滤出液重新循环流过30,000道尔顿Millipore Cat#CDUF 050 T1超过滤器，以从Hb超滤出液中除去较小的分子蛋白质，如电解质，辅酶，代谢中间产物和分子量小于约30,000道尔顿的蛋白质，和水，从而形成含量约100克Hb/升的浓缩Hb溶液。
然后将浓缩的Hb溶液直接从超滤出液容器中倒入到并联层析柱(2英尺长8英寸内径)中的介质中，通过高效液相层析法分离Hb。层析柱含有适于从非血红蛋白蛋白质中分离Hb的阴离子交换介质。阴离子交换介质从硅胶制备。将硅胶用γ-glycidoxy丙基硅烷处理以形成活性环氧化物基团，然后用C3H7(CH3)NCl处理以形成季铵阴离子交换介质。这种方法在层析法期刊，120:321-333(1976)中作了描述。
用促进Hb结合的第一洗脱液冲洗层析柱对每个柱进行预处理。然后将4.52升浓缩的Hb溶液注入到每个层析柱中。注入浓缩Hb溶液后，通过在柱内制备pH梯度，然后用三种不同的洗脱液连续地冲洗流经层析柱以产生Hb洗脱物。在使用期间每种缓冲液的温度约为12.4℃。在注入到层析柱前，将缓冲液流过10,000道尔顿超过滤膜预过滤。
第一缓冲液，20mM Tris-羟甲基甲胺(Tris)(pH约8.4到约9.4)，将浓缩的Hb运输到层析柱的介质中并结合Hb。用第二缓冲液，第一缓冲液和第三缓冲液的混合物，第二缓冲液pH约为8.3，调节层析柱内的pH以从层析柱上洗脱污染的非-血红蛋白组成，而保留Hb。用第二缓冲液以约3.56lpm每个柱的流速平衡持续约30分钟。将第二缓冲液的洗脱液排到废料中。然后用第三缓冲液，50mM Tris(pH约为6.5到约7.5)，从层析柱上洗脱Hb。
Hb洗脱物流经灭菌Sartobran Cat#5232507 G1PH过滤器流到收集Hb洗脱物的容器中。Hb洗脱物开始的3％-4％和Hb洗脱物最后的3％-4％倒入废料中。
如果洗脱物含有少于0.05EU/毫升的内毒素并含有少于3.3毫微摩尔/毫升磷脂，Hb可作进一步使用。在六升超纯洗脱物中，其具有100克Hb/升浓度，加入9升1.0M氯化钠，20mM Tris(pH8.9)，从而形成离子强度为160mM的Hb溶液，以降低Hb溶液中Hb对氧的亲和力。然后将Hb溶液在10℃浓缩，通过重新循环流过超过滤器，具体地是10,000道尔顿MilliporeHelicon,Cat#CDUF 050 G1过滤器，直到Hb的浓度为110克/升。
然后，通过以12lpm重新循环Hb溶液流过0.05毫微米Hoechst-Celanese公司Cat#G-240/40聚丙烯微过滤器相转移膜，以形成脱氧Hb溶液(本文后面称“脱氧-Hb”)，将Hb溶液脱氧，直到Hb溶液的PO2减少到其中在Hb溶液中HbO2的量约为10％。同时，用60lpm氮气流过相转移膜的反面。在脱氧期间，Hb溶液的温度保持在约19℃到约31℃之间。
同样在脱氧期间，和随后的整个过程中，Hb保持在低氧环境中以最少化Hb对氧的吸附并保持在脱氧-Hb中氧化Hb(氧基血红蛋白或HbO2)的量少于约10％。
然后，将60升脱氧-Hb和180升储存缓冲液透析过滤流过超过滤器，储存缓冲液是含有0.2％重量比的N-乙酰基半胱氨酸的33mM磷酸钠缓冲液(pH7.8)，含有pO2少于约50托，以制备氧化作用稳定性脱氧-Hb。在与脱氧-Hb混合之前，储存缓冲液用10,000道尔顿Millipore Helicon,Cat#CDUF 050 G1除热原过滤器除热原。
储存缓冲液以与从超过滤器流出液体的速度近似相同的速度连续加入。透析过滤持续直到流出超过滤器的透析过滤液体的体积约为三倍的脱氧-Hb初始体积。
在将氧化作用稳定性脱氧-Hb转移到聚合装置中前，将贫氧WFI加入到聚合反应器中以吹扫聚合装置中的氧，预防氧化作用稳定性脱氧-Hb氧化。加入到聚合反应器中WFI的量是，当氧化作用稳定性脱氧-Hb加入到聚合反应器中时能形成浓度为约40克Hb/升的Hb溶液的量。然后将WFI重新循环流过聚合装置，通过流过有逆流加压氮气的0.05毫微米聚丙烯微过滤器相转移膜(Hoechst-Celanese公司Cat#5PCM-108,80平方英尺)来脱氧。流过相转移膜的WFI和氮气的流速分别为约18到20lpm和40到60lpm。
在聚合反应器中的WFI的pO2降低到少于约2脱pO2后，通过流速约为20lpm的氮气加入到聚合反应器的顶部空间，用氮气覆盖聚合反应器。然后将氧化作用稳定性脱氧-Hb转移到聚合反应器中。
聚合反应在12 M磷酸缓冲液中实施，缓冲液pH为7.8，氯浓度少于或等于约35毫摩尔。
当在40℃加热并将Hb溶液重新循环流过有六个部件的Kenicsl-1/英寸静态混合器(Chemineer有限公司)时，氧化作用稳定性脱氧-Hb和N-乙酰基半胱氨酸随后缓慢地与交联试剂戊二醛混合，具体地每公斤Hb用29.4克戊二醛，混合5个小时，形成聚合Hb(聚(Hb))溶液。
将氧化作用稳定性脱氧-Hb和戊二醛重新循环流过静态混合器产生湍流状况，均匀混合戊二醛和氧化作用稳定性脱氧-Hb，从而减少形成含高浓度戊二醛的脱氧-Hb凹陷的可能性。均匀混合戊二醛和氧化作用稳定性脱氧-Hb可减少形成大分子量聚(Hb)(即聚合物重超过500,000道尔顿)，并可允许聚合期间戊二醛和脱氧-Hb的快速混合。
此外，在聚合期间，产生显著的Hb分子间交联，这是作为存在N-乙酰基半胱氨酸对Hb聚合的影响。
聚合后，在聚合反应器中聚合(Hb)溶液的温度降低到约15℃到约25℃中间的温度。
然后，浓缩聚(Hb)溶液，通过重新循环聚(Hb)溶液流过超过滤器直到聚(Hb)增加到约85克/升。适当的超过滤器是30,000道尔顿过滤器(如Millipore Helicon,Cat#CDUF 050 LT)。
随后，将聚(Hb)溶液与66.75克硼氢化钠混合并重新循环流过静态混合器。具体地，对于每9升聚(Hb)溶液，以0.1到0.12lpm速度加入1升0.25M硼氢化钠。
在将硼氢化钠加入到聚(Hb)溶液中前，碱性化聚(Hb)溶液的pH，通过调节pH到约10来保存硼氢化钠和预防氢气形成。通过用约215升的除热原，脱氧12mM的pH约为10.4到约10.6的硼酸钠缓冲液透析过滤聚(Hb)溶液来调节聚(Hb)溶液的pH。通过重新循环聚(Hb)溶液从聚合反应器流过30,000道尔顿超过滤器进行透析过滤聚(Hb)溶液。硼酸钠缓冲液以与从超过滤器透析过滤中流出的液体的速度相同的速度加入到聚(Hb)溶液中。透析过滤持续直到从超过滤器透析过滤中流出的液体体积是约三倍的聚合反应器中聚(Hb)溶液的初始体积。
在pH调节后，将硼氢化钠加入到聚合反应器中以还原聚(Hb)溶液中的键并在溶液中键合和形成稳定的聚(Hb)。在硼氢化钠加料期间，在聚合反应器中的聚(Hb)溶液连续地重新循环流过静态混合器和0.05毫微米的聚丙烯微过滤器相转移膜，以除去溶解的氧和氢。流过静态混合器还提供湍流硼氢化钠流动状态，快速并有效地混合硼氢化钠和聚(Hb)溶液。流过0.05毫微米相转移膜的聚(Hb)溶液和氮气的速度分别约为2.0到4.0lpm和约12到18lpm。完成硼氢化钠加料后，当聚合反应器中的搅拌器以约75转每分钟的速度旋转时，聚合反应器中还原反应在继续。
在硼氢化钠加料后约1小时，稳定聚(Hb)溶液从聚合反应器流过30,000道尔顿超过滤器，直到稳定聚(Hb)溶液浓度为110克/升。浓缩后，通过流过30,000道尔顿超过滤器使用含有27mM乳酸钠，12mM NAC,115mM氯化钠，4mM氯化钾和1.36mM氯化钙和WFI(pH5.0)的过滤脱氧的低pH缓冲液透析过滤稳定聚(Hb)溶液，稳定聚(Hb)溶液的pH和电解质恢复到生理水平以形成稳定聚合Hb血液替代品。透析过滤持续直到从超过滤器透析过滤流出的液体的体积约为6倍的浓度Hb产品的透析过滤前体积。
在pH和电解质恢复到生理水平后，通过在聚合反应器中加入过滤脱氧的低pH缓冲液，将聚合Hb血液替代品稀释到浓度为5.0克/升。通过从聚合反应器重新循环流过静态混合器和100,000道尔顿提纯过滤器，逆向流过含有27mM乳酸钠，12mMNAC,115mM氯化钠，4mM氯化钾和1.36mM氯化钙和WFI(pH 7.8)的过滤脱氧的缓冲液透析过滤稀释的血液替代品。透析过滤持续，直到通过凝胶渗透层析在解离条件下操作时，血液替代品含有少于或等于约10％修饰的四聚体和未修饰的四聚体种类。
提纯过滤器在低跨膜压条件下使用限制性渗透管操作。除去大量修饰四聚体Hb和未修饰四聚体Hb后，持续流过30,000道尔顿超过滤器重新循环血液替代品，直到血液替代品的浓度为约130克/升。
然后将稳定血液替代品储存在适当的具有低氧环境及低氧渗入的容器中。
                    实施例3
        血红蛋白血液替代品的储存：初级包装
血红蛋白血液替代品，如实施例1中所制备的包装在氧屏障初级包装(E-13135和E-13242，美国国家罐装)中。初级包装的结构已在上面详细描述。初级包装是厚度为约0.005英寸(或约127毫微米)的层压物质，包括中密度聚乙烯/乙烯乙烯基醇层，尼龙层，和线性低密度聚乙烯密封剂层。层压物的氧渗透量为0.0084cc/atm-天(25℃,100％/50％相对湿度)或1.3×10-3cc/平方厘米/atm-天(25℃,100％/50％相对湿度)。水汽渗透量为25.0毫克/100平方英寸/atm-天(25℃,100％/50％相对湿度)或3.87毫克/100平方厘米/atm-天(25℃,100％/50％相对湿度)。
将包装的血液替代品在没有透明包装加速稳定性的条件下保持90天，接着取样分析N-乙酰基-L-半胱氨酸(NAC)，双-N-乙酰基-L-半胱氨酸(NAC2)，总量Hb(THb)，氧化血红蛋白(HbO2)和高铁血红蛋白(metHb)的浓度和/或量。加速稳定性条件是40℃和75％的相对湿度(RH)。因为在较高温度和相对湿度下包装物料的屏障性质会降低，这些加速稳定性条件与在环境条件(25℃,50％相对湿度)下测定的稳定性比较至少1年。结果在表Ⅱ中列出。
                   表Ⅱ
              加速稳定性数据
 月数     NAC    NAC2        THb    HbO2    metHb
  0     0.18    0.01        12.4     3     1
  3     0.03    0.21        12.0     3     6
 规格   ≤0.24  ≤0.24     12.0-14.0   ≤10   ≤15
                   实施例4
               分析聚合血红蛋白
血红蛋白产品中的内毒素浓度可通过由Associations of CapeCod,Woods Hole,Massachusetts,J.Levin等人，实验室临床医学期刊，75:903-911(1970)研究的方法“动力学/比浊LAL5000法”确定。对于此领域中的技术人员已知的具体细胞膜蛋白质或糖酯类，多种方法可用来检测基质的任何微量，如沉淀测定法，免疫印迹法，酶-结合免疫吸附测定法(ELISA)。
微粒计数可通过美国药典22:1596,1990年“注射物中的微粒物质：单一剂量注入用的大体积注射物”法来确定。
为了确定戊二醛的浓度，将400毫微升代表性血红蛋白产品样品用二硝基苯肼衍生，然后，在27℃，以1毫升/分钟与梯度缓冲液一起将100毫微升等分衍生溶液注射到YMC AQ-303ODS柱中。梯度缓冲液包括两个移动相，0.1％三氟乙酸(TFA)水溶液和0.08％TFA甲基氰溶液。梯度缓冲液流动包括均匀的60％0.08％TFA甲基氰溶液流动60分钟，85％0.08％TFA甲基氰溶液线性梯度12分钟，100％0.08％TFA甲基氰溶液线性梯度4分钟，保持在100％0.08％TFA甲基氰中2分钟，并在45％0.01％TFA水溶液中重新平衡。在@360纳米测定紫外线探测。
为了确定NAC浓度，将血红蛋白产品的等分份用除气的磷酸钠水溶液稀释，并将50微升与梯度缓冲液一起注射到YMC AQ-303 ODS柱中。梯度缓冲液包括磷酸钠水溶液和80％甲基氰水溶液和0.05％TFA的混合物。梯度缓冲液流动包括100％磷酸钠水溶液流动15分钟，100％80％甲基氰和0.05％TFA混合物线性梯度5分钟，保持5分钟。然后系统在100％磷酸钠中重新平衡20分钟。
通过以在下列两篇论文中的方法为依据的方法，实施对磷脂的分析：Kolarovic等人的“从生物源分离磷脂的提取方法比较”，Anal.Biochem.156:244-250,1986和Duck-Chong,C.G.的“使用硝酸镁确定涉及消化作用的磷脂磷的快速灵敏方法”，脂质，14:492-497,1979。
通过在Advanced Cryomatic渗压计上分析确定等渗容摩，渗压计型号#3C2，先进仪器有限公司，Needham,Massachusetts。
总量血红蛋白，高铁血红蛋白和氧基血红蛋白浓度在Co-血氧定量计上确定，血氧定量计型号#484，来自MassachusettsLexington，仪器实验室。
Na+,K+,Cl-,Ca++,pO2浓度可通过Novastat Profile 4确定，来自Massachusetts Waltham,Nova生物医学公司。
氧结合系数，P500通过Hemox-分析仪确定，来自Pennsylvania Southhampton,TCS公司。
温度和pH可通过此领域中技术人员已知的方法确定。
分子量(M.W)可通过在解离条件下对血红蛋白产品实施凝胶渗透层析(GPC)来确定。对血红蛋白产品的代表性样品分析分子量分布。在50mM Bis-Tris(pH6.5),750mM氯化镁，和0.1mM EDTA的移动相中将血红蛋白产品稀释到4毫克/毫升。这种缓冲液用作将Hb四聚体从聚(Hb)解离成二聚体，Hb二聚体没有通过分子内或分子间交联与其他Hb二聚体交量。将稀释的样品注射到TosoHaas G3000SW柱中。流速为0.5毫升/分钟。在280纳米记录紫外线探测。
对依据本发明的方法制备的脊椎动物(OXYGLOBINTM)和人类Hb血液替代品进行上述测定，结果分别在表Ⅲ,Ⅳ中列出。
                     表Ⅲ
        参数            结果
     PH(18-22℃)        生理可接受的
       内毒素        ＜0.5EU/毫升
      无菌测试         满足测试
      磷脂    a        ＜0.3nm/毫升
     总血红蛋白高铁血红蛋白氧基血红蛋白       12.0-14.0克/dl＜15％＜10％
        钠Na+钾K+氯Cl-钙Ca++硼        146-160mM3.5-5.5mM105-120mM0.5-1.5mM＜10ppm
       等渗容摩        290-310mOsm
        戊二醛       ＜3.5毫微克/毫升
  N-乙酰基-L-半胱氨酸           ＜0.2％
    M.W.＞500,000           ＜15％
    未修饰四聚体           ＜5％
    微粒含量＞10μ          ＜12/毫升
    微粒含量＞25μ          ＜2/毫升
a-聚合前在Hb中测定的
                     表Ⅵ
            参数            结果
    PH(18-22℃)     生理可接受的
     内毒素     ＜0.5EU/毫升
    无菌测试       满足测试
    磷脂    a     ＜0.3nm/毫升
    总血红蛋白高铁血红蛋白氧基血红蛋白    12.0-14.0克/dl＜15％＜10％
      钠Na+钾K+氯Cl-钙Ca++硼     146-160mM3.5-5.5mM105-120mM0.5-1.5mM＜10ppm
     等渗容摩     290-310mOsm
      戊二醛    ＜3.5毫微克/毫升
N-乙酰基-L-半胱氨酸        ≤0.2％
    M.W.＞500,000        ≤15％
    M.W.≤65,000        ＜10％
    M.W.＞32,000        ＜5％
    微粒含量＞10μ        ＜12/毫升
    微粒含量＞25μ        ＜2/毫升
a-聚合前在Hb中测定的
此领域中的技术人员仅使用常规试验会认识到，或能确定本文所描述发明的具体实施方案的许多等同物。这些和所有其他这样的等同物包括在下列权利要求书的范围内。

Claims (20)

1．一种保存脱氧血红蛋白血液替代品的方法，包括将脱氧血红蛋白血液替代品保存在包括有至少一层透明聚合物物料的氧屏障膜初级包装中，所说的初级包装在约25℃和外界相对湿度约50％条件下每24小时氧渗透量少于1.0cc每100平方英寸。
2．依据权利要求1的方法，其中透明聚合物物料包括氧屏障层。
3．依据权利要求2的方法，其中氧屏障层包括乙烯乙烯基醇。
4．依据权利要求2的方法，其中聚合物物料包括含有聚烯烃的外层。
5．依据权利要求4的方法，其中所说的外层包括中密度聚乙烯。
6．依据权利要求5的方法，其中外层和氧屏障层是共同挤压的。
7．依据权利要求2的方法，其中氧屏障层包括硅氧化物包膜的聚酯层。
8．依据权利要求1的方法，其中聚合物物料包括含有聚烯烃的内层。
9．依据权利要求8的方法，其中内层包括线性低密度聚乙烯。
10．依据权利要求1的方法，其中血红蛋白血液替代品是保存在氮，氩或氦氛围下的。
11．一种保存的脱氧血红蛋白血液替代品，包括：
a)脱氧血红蛋白血液替代品；
b)包括有至少一层透明聚合物物料的氧屏障膜初级包装，所说的初级包装在约25℃和外界相对湿度约50％条件下每24小时氧渗透量少于1.0cc每100平方英寸，包装内脱氧血红蛋白血液替代品是密封的，从而将脱氧血红蛋白血液替代品保存在基本上不含氧的环境中。
12．依据权利要求11的保存的脱氧血液替代品，其中其中透明聚合物物料包括氧屏障层。
13．依据权利要求12的保存的脱氧血液替代品，其中氧屏障层包括乙烯乙烯基醇。
14．依据权利要求12的保存的脱氧血液替代品，其中聚合物物料包括含有聚烯烃的外层。
15．依据权利要求14的保存的脱氧血液替代品，其中所说的外层包括中密度聚乙烯。
16．依据权利要求15的保存的脱氧血液替代品，其中中密度聚乙烯层和氧屏障层是共同挤压的。
17．依据权利要求11的保存的脱氧血液替代品，其中氧屏障层包括硅氧化物包膜的聚酯层。
18．依据权利要求11的保存的脱氧血液替代品，其中聚合物物料包括含有聚烯烃的内层。
19．依据权利要求18的保存的脱氧血液替代品，其中内层包括线性低密度聚乙烯。
20．依据权利要求11的保存的脱氧血液替代品，其中血红蛋白血液替代品是保存在氮，氩或氦氛围下的。
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