DE19816550A1 - Universell verwendbarer Aufbau eines Analysenelements und dessen Einsatz zur Analytbestimmung - Google Patents

Universell verwendbarer Aufbau eines Analysenelements und dessen Einsatz zur Analytbestimmung

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Description

Die Erfindung betrifft ein Analysenelement zur Bestimmung eines Analyts enthaltend in oder auf Material, das einen Flüssigkeitstransport zwischen Zonen ermöglicht, eine Probenauftrags­ zone und eine hierzu flußabwärts gelegene Nachweiszone, wobei die Nachweiszone einen Partner 1 eines spezifischen Bindungspaares 1 so immobilisiert enthält, daß er in der Lage ist, mit Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1, der nicht der Analyt ist, eine Bindung einzu­ gehen, wenn dieser ihn kontaktiert sowie ein Verfahren zur Bestimmung eines Analyts mittels spezifischer Bindungspaare. Die Erfindung betrifft außerdem einen Kit zur Bestimmung eines Analyts enthaltend ein Analyseelement.
Aus dem Stand der Technik sind Analysenelemente bekannt, die die zur Bestimmung eines Analyts erforderlichen Reagenzien in oder auf Trägermaterialien vorliegen haben. Als Beispiele seien hier genannt: US-Patent 4,861,711, US-Patent 5,591,645 und EP-A-0 291194. Den in diesen Schriften beschriebenen Analysenelementen ist gemeinsam, daß sie speziell für die Durchführung immunologischer Nachweisverfahren geeignet sind. Sie beinhalten eine Proben­ auftragszone und eine hierzu flußabwärts gelegene Nachweiszone. Eine flüssige Probe durch­ wandert aufgrund von Kapillarkräften innerhalb eines porösen Trägermaterials verschiedene Zonen zwischen Probenaufgabe- und Nachweiszone und nimmt dabei die für den Nachweis des Analyts erforderlichen Reagenzien auf und bringt sie mit dem Analyt in der Probe zur Reak­ tion.
In der Nachweiszone ist ein Bindungspartner immobilisiert, der in der Lage ist, spezifisch den zu bestimmenden Analyt zu binden. Dies erfordert, daß bei unterschiedlichen Analyten unter­ schiedliche Bindungspartner für den Analyt auf einer Festphase immobilisiert werden müssen.
Aus US-Patent 4,861,711 ist aus Fig. 1 in Verbindung mit der Beschreibung, beispielsweise in Spalte 5, Zeile 57 bis Spalte 6, Zeile 48 auch bekannt, in der Nachweiszone einen Partner 1 eines spezifischen Bindungspaares 1 zu immobilisieren, der nicht den Analyt bindet, sondern dort universell einsetzbar ist, weil er ein Epitop als Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 bindet, das auf einer Substanz vorhanden ist, die den Analyt spezifisch bindet. So wird der bewegliche Komplex aus Analyt und diesen bindender Substanz im Verlauf der Nachweis­ reaktion in der Nachweiszone fixiert und von unkomplexierten beweglichen Reaktions­ komponenten abgetrennt.
Eine markierte, für den Analyt spezifische Substanz spielt eine sehr wesentliche Rolle, weil nur deren Bindung an den Analyt und die spätere Immobilisierung des gebildeten Komplexes aus Analyt und gegen den Analyt gerichtete markierte Substanz in der Nachweiszone sowie das Entfernen der beweglichen unreagierten Reaktionskomponenten aus der Nachweiszone das Vorliegen von Analyt in der flüssigen Probe zu zeigen vermag. Die aus dem Stand der Technik bekannten markierten Substanzen sind für den Analyt spezifisch, das heißt, im Falle von Sandwich-Assays handelt es sich um markierte Substanzen, wie Antikörper oder Antigene, die spezifisch mit dem zu bestimmenden Analyt (Antigen oder Antikörper) reagieren. Dies erfor­ dert jedoch, daß je nach Analyt unterschiedliche markierte, spezifische Bindungspartner für den Analyt hergestellt werden müssen.
Als Markierung ist eine Vielzahl von Substanzen aus dem Stand der Technik bekannt. Während früher radioaktive Markierungen mit allen ihren Nachteilen benutzt wurden, wurden diese Markierungen später vor allem durch Enzymmarkierungen abgelöst. Heute werden in Analysenelementen, wie sie in den zuvor beschriebenen Schriften des Standes der Technik be­ schrieben sind, vor allem partikuläre Markierungen, insbesondere Gold- oder Latexpartikel eingesetzt. Die Herstellung von Konjugat aus Markierung und spezifisch an den Analyt bin­ dender Substanz ist aufwendig und muß, wenn unterschiedliche Analyten bestimmt werden sollen, für jeden einzelnen analytspezifischen Bindungspartner optimiert werden. Außerdem muß bei Analysenelementen das Material, auf dem dieses Konjugat vorliegt und transportiert wird, optimal den Erfordernissen von Fall zu Fall angepaßt werden. Vor allem Stabilitäts­ probleme sind hierbei oft zu lösen.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung war es deshalb, einen universell verwendbaren Aufbau eines Analysenelementes zur Verfügung zu stellen, der unabhängig von dem zu bestimmenden Analyt immer verwendet werden kann, sofern dieser Analyt oder eine vom Analyt abgeleitete und diesen repräsentierende Substanz durch spezifische Paarbindung nachweisbar ist.
Diese Aufgabe wird durch den Gegenstand der Erfindung gelöst, wie er in den Ansprüchen dargestellt ist.
Gegenstand der Erfindung ist insbesondere ein Analyseelement zur Bestimmung eines Analyts enthaltend in oder auf Material, das einen Flüssigkeitstransport zwischen Zonen ermöglicht, eine Probenauftragszone und eine hierzu flußabwärts gelegene Nachweiszone, wobei die Nachweiszone Partner 1 eines spezifischen Bindungspaares 1 so immobilisiert enthält, daß er in der Lage ist, mit Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1, der nicht Analyt ist, eine Bin­ dung einzugehen, wenn er ihn kontaktiert, dadurch gekennzeichnet, daß flußaufwärts der Nachweiszone ein markierter Partner 1 eines spezifischen Bindungspaares 2 auf einem Material durch Flüssigkeit ablösbar imprägniert vorliegt und in der Lage ist, mit Partner 2 des spezi­ fischen Bindungspaares 2, der nicht der Analyt ist, eine Bindung einzugehen, wenn dieser ihn kontaktiert, wobei Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 und Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 spezifisch an den zu bestimmenden Analyt gebunden oder durch Reaktion unter Beteiligung des zu bestimmenden Analyts Teile einer von vom Analyt abgeleiteten und diesen repräsentierenden Substanz sind.
Gegenstand der Erfindung ist auch ein Kit zur Bestimmung eines Analyts enthaltend ein Analyseelement, wie es vorstehend charakterisiert worden ist, sowie weiter enthaltend mindes­ tens einen Partner aus der Gruppe Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 und Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2.
Schließlich ist Gegenstand der Erfindung auch ein Verfahren zur Bestimmung eines Analyts mittels spezifischer Bindungspaare dadurch gekennzeichnet, daß eine von Analyt abgeleitete und diesen repräsentierende Substanz, die Partner 2 eines spezifischen Bindungspaares 1 und Partner 2 eines spezifischen Bindungspaares 2 beinhaltet in einem erfindungsgemäßen Analyseelement zur Bestimmung eines Analyts mit markiertem Partner des spezifischen Bin­ dungspaares 2 in Kontakt gebracht, durch Flüssigkeitstransport in dem Analysenelement in Richtung der flußabwärts der Probenauftragszone gelegenen Nachweiszone bewegt, in der Nachweiszone an Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 1 gebunden und anhand der Markierung des Partners 1 des spezifischen Bindungspaares 2 bestimmt wird.
Wesentlich für das erfindungsgemäße Analysenelement ist, daß sich Flüssigkeit innerhalb des Analysenelementes in Richtung auf die Nachweiszone bewegen kann. Ein solcher Flüssigkeits­ fluß ist beispielsweise in einem entsprechend hergerichteten Hohlkörper durch Schwerkraft möglich. Vorrichtungen, die einen Flüssigkeitstransport durch Zentrifugalkraft als einer Form der Schwerkraft ermöglichen, sind beispielsweise aus EP-B 0 052 769 bekannt. Bevorzugt enthalten erfindungsgemäße Analysenelemente jedoch saugfähige Materialien, die Flüssigkeit durch Kapillarkraft zu bewegen vermögen. Die Materialien der einzelnen Zonen des erfin­ dungsgemäßen Analysenelementes können hierbei gleich oder auch verschieden sein. Häufig wird es so sein, daß unterschiedliche Zonen aus unterschiedlichen Materialien bestehen, wenn diese optimal ihre Aufgabe erfüllen sollen.
Als mögliche saugfähige, kapillaraktive Materialien kommen grundsätzlich alle solche in Frage, die generell in sogenannten "Trockentesten", wie sie beispielsweise in US-A 4,861,711, US-A 5,591,645 oder EP-A-0 291194 beschrieben sind, zur Flüssigkeitsaufnahme eingesetzt werden können. Als vorteilhaft haben sich hierfür beispielsweise poröse Materialien, wie Membranen, beispielsweise Nitrocellulosemembranen erwiesen. Es können jedoch auch faserige, saugfähige Matrixmaterialien wie Vliese, Gewebe oder Gewirke eingesetzt werden. Vliese sind besonders bevorzugt. Faserige Matrixmaterialien können Glas, Cellulose, Cellulosederivate, Polyester, Polyamid, aber auch Viskose, Zellwolle und Polyvinylalkohol enthalten. Vliese aus Fasern auf der Basis von Cellulose, Polymerisatfasern auf Basis von Polyester und/oder Polyamid und einem organischen Bindemittel, das OH- und/oder Estergruppen aufweist, wie sie aus EP-B-0 326 135 bekannt sind, sind beispielsweise erfindungsgemäß einsetzbar. Vliesmaterialien, ent­ haltend schmelzbare Copolyesterfasern neben Glasfasern, Polyesterfasern, Polyamidfasern, Cellulosefasern oder Cellulosederivatefasern, wie sie in der europäischen Patentanmeldung 0 571 941 beschrieben sind, können auch in dem erfindungsgemäßen Analysenelement eingesetzt werden. Papiere, wie beispielsweise Teebeutelpapier, sind ebenfalls gut einsetzbar.
Zur Verbesserung der Handhabung des erfindungsgemäßen Analysenelementes kann sich das saugfähige kapillaraktive Material oder können sich unterschiedliche saugfähige, kapillaraktive Materialien auf einem steifen Trägermaterial angeordnet befinden, welches seinerseits für Flüssigkeit nicht durchlässig ist, den Flüssigkeitsfluß im Matrixmaterial nicht negativ beeinflußt und sich in Bezug auf die im Analysenelement ablaufenden Reaktionen inert verhält. Bevor­ zugtes Trägermaterial kann beispielsweise Polyester-Folie sein, auf der das den Flüssigkeits­ transport ermöglichende Matrixmaterial befestigt ist.
In dem erfindungsgemäßen Analysenelement können die einzelnen Zonen übereinander, neben­ einander oder teils übereinander und teils nebeneinander auf dem Trägermaterial angeordnet sein. Besonders bevorzugt ist ein erfindungsgemäßes Analysenelement, bei dem sich Proben­ auftrags- und Nachweiszone nebeneinander auf dem Trägermaterial angeordnet befinden. Nebeneinander bedeutet in diesem Zusammenhang, daß sich diese Zonen nebeneinander in direktem Kontakt miteinander befinden oder aber durch andere Zonen getrennt im wesent­ lichen in einer Ebene angeordnet sind.
Die Probenauftragszone ist der Bereich des erfindungsgemäßen Analysenelementes, auf den die Probe aufgegeben wird, in der bestimmt werden soll, ob ein bestimmter Analyt oder eine vom Analyt abgeleitete und diesen repräsentierende Substanz anwesend, gegebenenfalls in welcher Menge er bzw. sie anwesend ist.
Die Nachweiszone ist der Bereich des erfindungsgemäßen Analysenelementes, in dem die Be­ stimmung erfolgt, ob der untersuchte Analyt bzw. die vom Analyt abgeleitete und diesen repräsentierende Substanz in der auf das Analysenelement gegebenen Probe vorhanden war. Diese Bestimmung kann qualitativ, halb quantitativ oder quantitativ sein. Halb quantitativ be­ deutet hierbei, daß für den Analyt bzw. die vom Analyt abgeleitete und diesen repräsentierende Substanz kein konkreter Konzentrationswert, sondern ein Konzentrationsbereich ermittelt wird, in dem sich die Analytkonzentration befindet.
In der Nachweiszone befindet sich Partner 1 eines spezifischen Bindungspaares 1 so immobili­ siert, daß er in der Lage ist, mit Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1, der nicht der Analyt ist, eine Bindung einzugehen, wenn dieser ihn kontaktiert. Die Immobilisierung kann durch chemische Reaktion, das heißt, durch Ausbildung einer kovalenten Bindung, erzeugt worden sein. Sie kann aber auch durch adsorptive Kräfte erfolgen, welche alle Möglichkeiten außer der Ausbildung kovalenter Bindungen einschließt. Häufig wird für die Nachweiszone eine Nitrocellulosemembran verwendet, an die Proteine, aber auch Nukleinsäuren bei Impräg­ nieren fest binden, ohne jedoch eine kovalente Bindung einzugehen.
Erfindungsgemäß muß sich außer Partner 1 eines spezifischen Bindungspaares 1 auch ein markierter Partner 1 eines spezifischen Bindungspaares 2 in dem Analysenelement befinden. Dieser Partner darf nicht immobilisiert sein, sondern muß durch Flüssigkeit ablösbar imprägniert vorliegen, das heißt, dieser markierte Partner muß in Richtung der Nachweiszone durch Flüssigkeit transportabel sein. Vorteilhafterweise muß dieser markierte Partner durch möglichst wenig Flüssigkeit von dem Matrixmaterial, auf dem er imprägniert vorliegt, voll­ ständig, das heißt, quantitativ, abgelöst werden können. Als Matrixmaterial haben sich hierfür Vliese als besonders geeignet erwiesen, wie sie beispielsweise in EP-B-0 326 135 beschrieben sind.
Spezifische Bindungspaare sind aus dem Stand der Technik bekannt und umfassen beispiels­ weise Paare wie Hapten und Antikörper, Antigen und Antikörper, Lectin und Zucker oder Saccharid, Avidin oder Streptavidin und Biotin sowie Nukleinsäure und Nukleinsäure, Ligand und Rezeptor. Ein Antigen kann hierbei jedes Molekül sein, gegen das man experimentell in der Lage ist, Antikörper zu erzeugen. Auch ein Antikörper oder eine bestimmte Stelle eines Antikörpers, die als Epitop bezeichnet wird, kann ein Antigen sein und von einem Antikörper spezifisch erkannt und gebunden werden. Unter Nukleinsäuren sollen alle möglichen Formen von Nukleinsäuren verstanden werden, die in der Lage sind, Bindungen über komplementäre Basen einzugehen. Speziell, aber nicht als abschließende Liste seien DNA, RNA, aber auch Nukleinsäureanaloga, wie Peptidnukleinsäuren (PNA, siehe beispielsweise in WO 92/20702), genannt. Ligand und Rezeptor bezeichnen ganz allgemein eine spezifische Bindungswechsel­ wirkung zwischen zwei Partnern, wie beispielsweise zwischen Hormon und Hormonrezeptor.
In einer bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Analysenelementes ist Partner 1 eines spezifischen Bindungspaares 1 ein Antikörper, der ein Epitop auf einem anderen Anti­ körper, der gegen den Analyt gerichtet ist, erkennt. Das Epitop, gegen das der Antikörper ge­ richtet ist, entspricht dann Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1. Ganz besonders be­ vorzugt wird als Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 1 jedoch Avidin oder Streptavidin verwendet, welches eine spezifische Bindung mit Biotin einzugehen in der Lage ist. Biotin bildet dann Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1.
In einer bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Analysenelementes ist Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 ein Antikörper gegen Partner 2 des spezifischen Bin­ dungspaares 2. Dieser Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 ist erfindungsgemäß bevor­ zugt ein Hapten, vorteilhafterweise ein in der zu untersuchenden Probe nicht vorhandenes Hapten. Ganz besonders bevorzugt wird Digitoxigenin, Digitoxin, Digoxigenin oder Digoxin als Hapten eingesetzt.
Als Markierung des Partners 1 des spezifischen Bindungspaares 2 sind grundsätzlich alle Mar­ kierungen möglich, die für Immunoassays aus dem Stand der Technik bekannt sind. Dies sind insbesondere radioaktive Markierungen oder Enzymlabel wie beispielsweise Peroxidase, alka­ lische Phosphatase oder Galaktosidase oder Fluorophore. Besonders bevorzugt werden jedoch sogenannte Direktlabel eingesetzt, das heißt, Markierungen, die ohne weitere Handhabungs­ schritte mit dem Auge durch ihre Farbe erkennbar sind. Vorteilhafte Markierungen dieser Art sind beispielsweise in Wasser unlösliche Partikel wie Metall- oder Latexpartikel, aber auch Pigmente wie Silicat, Ruß oder Selen. Insbesondere Metallpartikel werden erfindungsgemäß bevorzugt als Markierung eingesetzt. Kolloidales Gold ist als Markierung besonders bevor­ zugt. Die Markierung kann an Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 kovalent oder auch adsorptiv gebunden sein, wobei adsorptiv alle Möglichkeiten außer kovalenter Bindung ein­ schließt. Im Falle farbiger Latexpartikel als Direktmarkierung liegt bevorzugt eine kovalente Bindung vor. Bei kolloidalen Metallen als Direktmarkierungen, insbesondere bei kolloidalem Gold werden vorzugsweise adsorptive Bindungen genutzt.
Die Herstellung von Antikörper-Gold-Konjugaten ist beispielsweise aus Roth, J. "The colloidal gold marker system for light and electron microscopic cytochemistry", in Bullock, G.R. and Petrusz, P. eds, "Techniques in Immunocytochemistry", Vol. 2., New York, Academic Press, 1983, S. 216-284 bekannt.
Der markierte Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 kann sich an unterschiedlichen Stellen des erfindungsgemäßen Analysenelementes befinden. Dies ist abhängig beispielsweise von der beabsichtigten Reaktionsführung, von der Menge an zur Verfügung stehender Probe bzw. abhängig von der Analytkonzentration, wenn das Analysenelement zur Bestimmung flüssiger Proben bestimmt ist.
So kann sich der markierte Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 in der Probenauftrags­ zone befinden, er kann stromabwärts der Probenauftragszone zwischen Probenauftragszone und Nachweiszone angeordnet sein oder er kann sich auch stromaufwärts der Probenauftrags­ zone befinden. Zumindest der letzte Fall setzt voraus, daß das erfindungsgemäße Analysen­ element außer der Probenauftragszone auch noch eine Elutionsmittelauftragszone besitzt. Eine solche Elutionsmittelauftragszone befindet sich dann entweder stromaufwärts des Bereiches, an dem sich der markierte Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 befindet oder dieser Be­ reich, wo der markierte Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 vorliegt, ist identisch mit der Elutionsmittelauftragszone. Insofern kann eine Elutionsmittelauftragszone stromaufwärts der Probenauftragszone oder an der Stelle der Probenauftragszone auf dem erfindungs­ gemäßen Analyseelement vorliegen. Eine solche Elutionsmittelauftragszone wird unabhängig davon, wo sich der markierte Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 befindet, bevorzugt immer dann vorgesehen sein, wenn die zu untersuchende Probe nicht flüssig ist oder nicht so viel Flüssigkeit darstellt, daß sie für die Bestimmung des Analyten, das heißt, für den Transport des Analyten und der benötigten Reagenzien bis in die Nachweiszone, ausreicht.
Ein wie vorstehend beschriebener Aufbau eines erfindungsgemäßen Analyseelements ist uni­ versell für die Bestimmung jedes Analyt geeignet, der durch spezifische Paarbindung nach­ weisbar ist. Hierfür muß lediglich eine von Analyt abgeleitete und diesen repräsentierende Sub­ stanz, die Partner 2 eines spezifischen Bindungspaares 1 und Partner 2 eines spezifischen Bin­ dungspaares 2 beinhaltet in einem erfindungsgemäßen Analysenelement mit markiertem Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 in Kontakt gebracht werden, durch Flüssigkeitstransport in dem Analysenelement in Richtung der flußabwärts der Probenauftragszone gelegenen Nachweiszone bewegt, in der Nachweiszone an Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 1 gebunden und anhand der Markierung des Partners 1 des spezifischen Bindungspaares 2 be­ stimmt werden. Für diese Bestimmung ist es besonders vorteilhaft, wenn bewegliche, nicht in der Nachweiszone immobilisierte Reaktionskomponenten durch Flüssigkeit aus der Nachweis­ zone entfernt werden. Wenn im Falle einer flüssigen Probe die Probenflüssigkeit zur Ent­ fernung der beweglichen, nicht immobilisierten Reaktionskomponenten aus der Nachweiszone nicht ausreicht, kann zusätzliche Flüssigkeit auf das Analysenelement aufgegeben werden, wobei diese Aufgabe auf die Probenaufgabezone oder eine spezifische Elutionsmittelaufgabe­ zone erfolgen kann.
Die den Analyt repräsentierende Substanz kann auf unterschiedliche Art und Weise erzeugt werden. Im Falle eines Antigens als Analyt ist es beispielsweise möglich, daß der Analyt mit zwei Antikörpern umgesetzt wird, die an den Analyt binden. Einer der beiden Antikörper trägt hierbei Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1, der andere Antikörper trägt Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2. Wenn der Analyt beispielsweise ein bestimmtes Epitop mehr­ fach enthält, ist es möglich, daß die beiden Antikörper identisch sind. Erfindungsgemäß ist es nicht unbedingt notwendig, daß die Mischung aus Analyt, Antikörper mit Partner 2 des spezifi­ schen Bindungspaares 1 und Antikörper mit Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 erst dann mit Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 auf dem erfindungsgemäßen Analysen­ element in Kontakt gebracht wird, wenn der Sandwich-Komplex zwischen den beiden Anti­ körpern und Analyt vollständig ausgebildet ist. Wichtig ist letztendlich, daß in der Nachweis­ zone im Zeitpunkt der Bestimmung des Analysenergebnisses ein Sandwich-Komplex an Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 1 gebunden vorliegt. Diese Sandwich-Bildung kann bereits bei Aufgabe der Mischung aus Analyt und den beiden Sandwich bildenden Antikörpern auf das erfindungsgemäße Analysenelement abgeschlossen sein, sie kann sich aber auch noch während des Flüssigkeitstransportes der Reagenzien zwischen Progenauftragszone und Nach­ weiszone vollziehen. Im äußersten Fall findet die Vervollständigung der Sandwich-Reaktion in der Nachweiszone statt. Der Begriff "von Analyt abgeleitete und diesen repräsentierende Sub­ stanz" umfaßt deshalb auch eine Mischung der eine solche Substanz erzeugenden Komponen­ ten, sofern diese Komponenten zumindest in der Nachweiszone die von Analyt abgeleitete und diesen repräsentierende Substanz ergeben.
Im Falle der Bestimmung eines Antikörpers als Analyt können in Analogie zu der vorbeschrie­ benen Reaktion statt der beiden Antikörper Antigene oder das Antigenepitop repräsentierende Oligopeptide verwendet werden, wobei ein Teil der Antigenmoleküle Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 trägt und der andere Teil der Antigenmoleküle Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2. Zur Bestimmung wird ein Doppelantigen-Sandwich-Komplex aus zu bestimmenden Antikörper und je einem Antigen mit Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 und einem Antigen mit Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 gebildet, für den das zuvor für die Antigenbestimmung ausgeführte analog gilt.
Der Aufbau des erfindungsgemäß universell einsetzbaren Analysenelementes ist auch für die Bestimmung von Nukleinsäuren hervorragend geeignet. Hierzu muß die zu bestimmende Nukleinsäure oft vervielfältigt werden, um ausreichende Mengen für einen Nachweis zur Ver­ fügung zu haben. Dies kann beispielsweise mittels der dem Fachmann bekannten Polymerase Chain Reaction (PCR) oder Ligase Chain Reaction (LCR) erfolgen. Bei einer Vervielfältigung mittels PCR, bei der ausgehend von einem als Primer eingesetzten Oligonukleotid Nukleotide zu einer zu der zu bestimmenden Nukleinsäure komplementären Nukleinsäure verknüpft und an den Primer angeknüpft werden, kann beispielsweise Partner 2 des spezifischen Bindungs­ paares 1 oder Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 gebunden an ein solches Nukleotid oder einen Primer in die Kopie der Nukleinsäure eingebaut werden. Wird das so erhaltene Amplifikationsprodukt mit Nukleinsäure hybridisiert, die Partner 2 desjenigen Bindungspaares trägt, den die komplementäre vervielfältigte Nukleinsäure nicht aufweist, steht eine vom Analyt abgeleitete und diesen repräsentierende Substanz zur Verfügung, die auf dem erfindungs­ gemäßen Analysenelement an den in der Nachweiszone immobilisierten Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 1 fixiert und mit dem markierten Partner des spezifischen Bin­ dungspaares 2 bestimmbar gemacht worden ist.
Desweiteren ist es möglich bei ausreichenden Nukleinsäuremengen auf eine Vervielfältigung zu verzichten oder die Vervielfältigung der Nukleinsäure ohne Partner 2 der spezifischen Bin­ dungspaare 1 oder 2 durchzuführen. Anschließend wird die den Analyt repräsentierende Sub­ stanz durch Hybridisierung zweier Sonden, die jeweils Partner 2 des spezifischen Bindungs­ paares 1 und Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 tragen, erzeugt.
Besonders bevorzugt wird für eine Vervielfältigung von zu bestimmender Nukleinsäure ein Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 oder Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 tragendes Nukleotid gemischt mit unmarkierten Nukleotiden verwendet und die vervielfältigte Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 oder Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 tragende Nukleinsäure mit einer Nukleinsäure hybridisiert, die Partner 2 desjenigen spezifischen Bindungspaares trägt, das nicht in der für die Vervielfältigung benutzten Nukleo­ tidmischung vorhanden war. So wird ein Nukleinsäuredoppelstrang erhalten, in dem jeder Strang unterschiedliche Partner von spezifischen Bindungspaaren trägt. Statt eines Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 oder Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 tragende Nukleotids kann auch ein eben diesen Partner tragendes Oligonukleotid als Primer zusammen mit unmarkierten Nukleotiden verwendet werden. Als Partner 2 des spezifischen Bindungs­ paares 1 wird besonders bevorzugt Biotin und als Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 ein Hapten, wie beispielsweise Fluorescein, Rhodamin, Digoxin oder ganz bevorzugt Digoxi­ genin verwendet. Als besonders vorteilhaft bei der Verwendung von Primern haben sich solche erwiesen, die biotinyliert sind.
Dadurch, daß biotinylierte Nukleotide und Primer kommerziell erhältlich sind oder Kits erhält­ lich sind, mit denen solche Substanzen wie Hapten, beispielsweise Fluorescein, Rhodamin, Digoxin oder besonders Digoxigenin tragende Nukleinsäuren oder Nukleinsäurefragmente her­ zustellen sind, ist es für den Fachmann sehr leicht möglich, insbesondere für Forschungs­ zwecke, von zu bestimmenden Nukleinsäuren abgeleitete und diese repräsentierende Sub­ stanzen zu erhalten und mittels des erfindungsgemäßen Analysenelementes schnell und einfach nachzuweisen.
Für die Bestimmung von Analyten ist es natürlich auch möglich, einen Kit zur Verfügung zu stellen, der nicht nur das erfindungsgemäße, universell einsetzbare Analysenelement aufweist, sondern auch Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 oder Partner 2 des spezifischen Bin­ dungspaares 2 oder beide Partner. Diese Partner sind beispielsweise an ein Nukleotid, Oligo­ nukieotid, eine Nukleinsäure, einen Antikörper, ein Hapten oder ein Antigen bzw. ein Epitop oder an ein Lectin oder an einen Rezeptor für einen Liganden konjugiert. Diese Substanzen haben die bereits früher erläuterte Bedeutung. So ist es möglich, dem Interessierten neben dem universell einsetzbaren Analysenelement Teile oder auch alle benötigten weiteren Reagenzien für die Bestimmung eines speziellen Analyts zur Verfügung zu stellen. Hierbei ist es im wesentlichen unerheblich, ob sich die Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 und Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 in getrennten Behältnissen oder zusammen in einem Be­ hältnis befinden. Dies trifft insbesondere für solche Systeme zu, bei denen der zu bestimmende Analyt mittels zwei Antikörpern oder mittels Antigenen über einen Sandwich-Komplex nach­ gewiesen wird. Soll ein Kit zur Bestimmung einer Nukieinsäure zusammengestellt werden, ist es vorteilhaft, daß Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 oder Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 tragende Nukleotide oder Primer getrennt aufbewahrt werden von einer der zu bestimmenden Nukleinsäure komplementären Nukleinsäure die Partner 2 desjenigen spezifischen Bindungspaares trägt, der von dem Partner, der mit dem Nukleotid bzw. dem Primer konjugiert ist, verschieden ist.
Das beschriebene erfindungsgemäße, universell einsetzbare Analysenelement bietet vor allem Vorteile bei Analytbestimmungen in Forschung und Entwicklung, wo der Analyt sehr unter­ schiedlich sein kann. Besonders vorteilhaft ist das erfindungsgemäße Analysenelement insbe­ sondere für die Bestimmung von Nukleinsäuren einsetzbar. Nukleotide und Oligonukleotide, die mit Partnern 2 eines spezifischen Bindungspaares 1 bzw. Partner 2 eines spezifischen Bin­ dungspaares 2 konjugiert sind, sind in einer breiten Vielfalt kommerziell erhältlich. Das gleiche trifft auch für Partner 2 eines spezifischen Bindungspaares 1 oder Partner 2 eines spezifischen Bindungspaares 2 tragende Nukleinsäuresonden zu, die leicht mit kommerziell erhältlichen Kits hergestellt werden können. Insbesondere Biotin und/oder Digoxin bzw. Digoxigenin tragende Nukleinsäuresonden sind so leicht erhältlich.
Der universell einsetzbare Aufbau des erfindungsgemäßen Analysenelementes ist auch deshalb vorteilhaft, weil üblicherweise bei Immunoassays mit markierten Bindungspartnern des Analyts der markierte Bindungspartner eine kritische Komponente darstellt. Bisher war es üblich, je nach Analyt einen entsprechenden markierten Bindungspartner herzustellen, für den dann auf dem Analysenelement optimale Bedingungen für Reaktion und Lagerung geschaffen werden mußten. Dies erforderte in der Vergangenheit einen hohen Aufwand. Mit dem erfindungs­ gemäßen Analysenelement wird jetzt ein Element zur Verfügung gestellt, das universell an­ wendbar ist. Die spezifischen Reagenzien können kurzfristig und zu niedrigen Kosten als Flüssigreagenzien hergestellt werden. Optimierungsarbeit insbesondere in Bezug auf die Lager­ fähigkeit solcher Reagenzien auf Analysenelementen entfällt.
Darüberhinaus ist es aber auch möglich, falls dies gewünscht wird, das erfindungsgemäße Analysenelement nicht nur als universelles Analysenelement zusammen mit den spezifischen Reagenzien als Flüssigreagenzien zu verwenden, sondern, ausgehend von dem erfindungs­ gemäßen Analysenelement ein Analyseelement zu erzeugen, das die für den spezifischen Nachweis eines Analyts erforderliche Gesamtheit aller Reagenzien enthält. Für einen Antigen­ nachweis mittels Sandwichkomplexbildung können so beispielsweise die erforderlichen Anti­ körper, sofern der eine mit Partner 2 eines spezifischen Bindungspaares 1, der andere mit Partner 2 eines spezifischen Bindungspaares 2 konjugiert ist, auf einem erfindungsgemäßen Analysenelement integriert vorliegen. Gleiches gilt auch für ein erfindungsgemäßes Analysenelement, das für den Nachweis eines Antikörpers mittels Sandwichkomplexbildung bestimmt ist. Hier liegt ein Teil des erforderlichen Antigens konjugiert mit Partner 2 eines spezifischen Bindungspaares 1 und der andere Teil des Antigens konjugiert mit Partner 2 eines spezifischen Bindungspaares 2 auf dem Analysenelement integriert vor. Solche Konjugate können in einer gemeinsamen Zone oder in benachbarten, übereinander oder nebeneinander angeordneten Zonen des erfindungsgemäßen Analysenelements angeordnet sein. Hierbei können dann beide Konjugate in der Probenauftragszone oder eines der Konjugate in der Probenauftragszone und das andere in einer Zone zwischen Probenauftrags- und Nachweis­ zone oder beide Konjugate getrennt oder zusammen in einer Zone zwischen Probenauftrags- und Nachweiszone untergebracht sein. Im Falle einer stromaufwärts der Probenauftragszone angeordneten Elutionsmittelzone gibt es außer den zuvor aufgeführten Möglichkeiten auch noch die, daß die die Partner 2 der spezifischen Bindungspaare 1 und 2 tragenden Antigene oder Antikörper zwischen Elutionsmittel- und Probenauftragszone getrennt oder zusammen angeordnet sind. Solche, alle erforderlichen Reagenzien zur Bestimmung eines Analyts ent­ haltenden Analysenelemente beinhalten die Vorteile des erfindungsgemäßen einfachen und uni­ versellen Aufbaus und sind für den Benutzer enorm einfach zu handhaben, da nur eine Probe aufgegeben werden muß, ansonsten aber keine Handhabungsschritte mehr erforderlich sind, bevor in der Nachweiszone das Ergebnis abgelesen wird.
Ein erfindungsgemäßes Analysenelement ist auch zur Bestimmung mindestens eines von mehreren Analyten einsetzbar. Beispielsweise gilt es heute bei der Untersuchung von Proben auf eine HIV-Infektion festzustellen, ob einer von mehreren möglichen Antikörpertypen, nämlich Antikörper gegen HIV 1, gegen HIV 2 oder gegen HIV 1 Subtyp O vorhanden ist. Die Anwesenheit von Antikörpern gegen einen Typus reichen aus, eine Probe als positiv zu bewerten. Gegen welchen Typus die gefundenen Antikörper genau gerichtet sind, ist zumindest bei Screeningverfahren, erst von nachgeordneter Bedeutung. Ein erfindungsgemäßes Analysenelement, das für eine solche Bestimmung geeignet ist, enthält jeweils ein Paar von Antigenkonjugaten gegen jeden Antikörper, auf den hin eine Probe untersucht werden soll. Jedes Paar enthält Antigen konjuguert mit Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 und Antigen konjugiert mit Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2, wobei das Antigen spezi­ fisch an einen bestimmten Antikörpertypus bindet. Die Antigenkonjugate können jeweils ge­ trennt vorliegen. Es ist aber auch möglich, daß alle Antigenkonjugate gemischt sind und zu­ sammen in einer Zone untergebracht sind. Für die Lokalisierung solcher Konjugate in einem erfindungsgemäßen Analysenelement gelten die zuvor ganz allgemein für Konjugate von Antigenen oder Antikörpern mit Partnern 2 von spezifischen Bindungspaaren 1 und 2 ge­ machten Ausführungen.
Ein analoges Analysenelement für die Bestimmung von Influenza kann das Vorliegen von Influenzaviren A und/oder Influenzaviren B nachweisen. Hierzu werden Konjugate von Anti­ körpern gegen Influenza A-Viren mit Partnern 2 von spezifischen Bindungspaaren 1 und 2 sowie Konjugate von Antikörpern gegen Influenza-Viren B mit Partnern 2 der spezifischen Bindungspaare 1 und 2 eingesetzt. Bei Vorliegen mindestens eines der beiden Virentypen zeigt das erfindungsgemäße Analysenelement in der Nachweiszone einen positiven Befund an.
Darüberhinaus ist es möglich, daß ein erfindungsgemäßes Analysenelement auch noch weitere funktionelle Zonen enthält. Beispielsweise hat es sich als vorteilhaft erwiesen für die Unter­ suchung von Vollblut in dem erfindungsgemäßen Analysenelement eine Zone vorzusehen, in der Plasma bzw. Serum als klare Flüssigkeit von Vollblut abgetrennt wird und Blutzellen zu­ rückgehalten werden. Nur die klare Flüssigkeit wird dann bis in die Nachweiszone transpor­ tiert. Für die Trennung von Plasma bzw. Serum aus Vollblut sind beispielsweise Glasfaservliese geeignet, wie sie in EP-A-0 045 476 beschrieben sind. Ein solches für die Abtrennung von Plasma bzw. Serum aus Vollblut geeignetes Medium kann beispielsweise in der Probenauf­ tragszone oder zwischen Probenauftragszone und Nachweiszone angeordnet sein.
Ausgehend von dem universell einsetzbaren Aufbau des erfindungsgemäßen Analysen­ elementes ist die Entwicklung von Analysenelementen, die alle Reagenzien zum Nachweis eines oder mehrerer Analyte tragen, im Hinblick auf den bisherigen Entwicklungsaufwand wesentlich vereinfacht und Entwicklungszeiten können so verkürzt werden.
Zwei besonders bevorzugte erfindungsgemäße Analysenelemente sind in Fig. 1 und 2 abgebil­ det.
Fig. 1 zeigt ein erfindungsgemäßes universell einsetzbares Analysenelement, das auf einer Trägerfolie (6),
eine Elutionsmittelaufgabezone (4),
eine Zone mit markiertem Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 (3),
eine Probenaufgabezone (1),
eine Nachweiszone (2) mit einem farblosen Nachweisstrich (7), enthaltend immobilisierten Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 1 und einem farblosen Kontrollstrich (8), der einen Antikörper gegen Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 enthält,
sowie eine Flüssigkeitssammelzone (5) besitzt. Die Zonen sind nebeneinander, im wesentlichen in einer Ebene, auf der Trägerfolie (6) angeordnet, wobei "nebeneinander" hier jeweils eine leichte Überlappung der in Flüssigkeitstransportrichtung vorhergehenden mit der nachfolgen­ den Zone mit einschließt, damit der Flüssigkeitsübergang von einer Zone in die andere gewähr­ leistet ist.
Das erfindungsgemäße Analyseelement, das in Fig. 2 dargestellt ist, ist ein vollintegriertes Analysenelement, das heißt, es besitzt alle für die Durchführung einer Analytbestimmung not­ wendigen Reagenzien. Es ist außerdem für die Untersuchung von Vollblut geeignet. Auf einer Trägerfolie (6) sind
eine Probenaufgabezone (1),
eine Zone mit den Partnern 2 der spezifischen Bindungspaare 1 und 2 (9),
eine Zone mit markiertem Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 (3),
eine Plasma- bzw. Serumabtrennzone (10),
eine Nachweiszone (2) mit einem farblosen Nachweisstrich (7), enthaltend immobilisierten Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 1, und einem farblosen Kontrollstrich (8), der einen Antikörper gegen Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 enthält sowie eine Flüssigkeitssammelzone (5) nebeneinander angeordnet.
Die Erfindung wird durch die nachfolgenden Beispiele näher erläutert.
Beispiel 1 Bestimmung von Nukleinsäure a) Analysenelement
Es wurde ein Teststreifen gemäß Fig. 1 hergestellt. Auf einer 5 mm breiten und 10 cm langen Trägerfolie (6) aus Polyester (Melinex®, 350 µm dick von Imperial Chemistry Industries, Großbritannien) wurden mit Schmelzkleber (Dynapol® S 1358 von Hüls AG, Deutschland)
  • - ein 1,5 mm dickes und 1,5 cm langes Vlies aus 100 Teilen Glasfasern (Durchmesser 0,49 bis 0,58 µm, Länge 1000 µm) und 5 Teilen Polyvinylalkoholfasern (Kuralon ®VPB 105-2 von Kuraray) mit einem Flächengewicht von 180 g/m2 als Flüssigkeitsammelzone (5),
  • - eine 1,5 cm lange Cellulosenitrat-Membran (Typ CN 11301 von Sartorius, Deutschland) als Nachweiszone (2),
  • - ein 8 mm langes Vlies enthaltend 80 Teile Polyesterfasern, 20 Teile Zellwolle und 20 Teile Polyvinylalkohol mit einer Dicke von 0,32 mm und einem Flächengewicht von 80 g/m2, dessen Herstellung in Beispiel 1 der europäischen Patentschrift 0 326 135 beschrieben ist als Probenaufgabezone (1),
  • - ein 8 mm langes Vlies aus 80 Teilen Polyesterfasern, 20 Teilen Zellwolle und 20 Teilen Polyvinylalkoholfasern, einer Dicke von 0,32 mm und einem Flächengewicht von 80 g/m2, dessen Herstellung in der europäischen Patentschrift 0 326 135, Beispiel 1 beschrieben ist, enthaltend Goldkonjugat als Zone mit markiertem Partner des spezifischen Bindungspaares 2 (3) und
  • - ein 30 mm langes Vlies (Typ Binzer TI 05 von Binzer, Deutschland) als Elutionsmittel­ aufgabezone (4) leicht überlappend nebeneinander befestigt.
Zur Nachweiszone (2)
Auf die zuvor beschriebene Zellulosenitratmembran wurden durch Strichdosierung eine wässrige StreptavidinIösung (7 mg/ml) aufgebracht. Hierzu wurde die Dosierung so gewählt, daß ein Strich mit einer Breite von ca. 0,5 mm entsteht. Dieser Strich (7) dient zum Nachweis des zu bestimmenden Analyts. Die Membran wurde anschließend luftgetrocknet.
In einem Abstand von etwa 4 mm von dem Streptavidinstrich wurde durch Strichdosierung eine wässrige Lösung eines polyklonalen Antikörpers aus Kaninchen-IgG gegen Maus IgG (Bezugsquelle: DAKO Diagnostica GmbH, Hamburg, Deutschland) (0,5 mg/ml) aufgebracht. Auch hier wurde die Dosierung so gewählt, daß ein Strich mit einer Breite von ca. 0,5 mm entsteht. Dieser Strich (8) dient zur Funktionskontrolle des Teststreifens. Die Membran wurde anschließend luftgetrocknet.
Zum Goldkonjugatvlies (3):
  • - Goldsol mit einem mittleren Partikeldurchmesser von ca. 40 nm wurde nach der Methode von Frens (Frens, G., "Preparation of gold dispersions of varying particle size: controlled nucleation for the regulation of the particle size in monodisperse gold suspensions" in Nature: Physical Science 241(1973), 20-22) durch Reduktion einer 0,01 Gewichtsprozentigen Tetrachlorgoldsäurelösung unter Kochen mittels Trinatriumcitrat hergestellt.
  • - Die Antikörper-Goldkonjugat-Herstellung erfolgte in Anlehnung an die Methode von Roth, J. "The colloidal gold marker system for light and electron microscopic cytochemistry" in Bullock, G.R. and Petrusz, P., eds., "Techniques in Immunocytochemistry", Vol. 2, New York, Academic Press, 1983, 216-284.
Nach dem Abkühlen der wie zuvor beschriebenen Goldsollösung auf Raumtemperatur wurde der pH-Wert des Goldsols mit 0,2 M K2CO3 so eingestellt, daß er um 0,5 bis 1,0 pH-Einheiten über dem isoelektrischen Punkt des Antikörpers lag. Die optische Dichte (OD) des Goldsols (Extinktion bei 525 nm und 1 cm Lichtweg) betrug typischerweise 1,0. Zum Goldsol wurde eine dialysierte Lösung eines monoklonalen IgG-Antikörpers gegen Digoxygenin (MAK <Digoxygenin< IgG) (Bezugsquelle Boehringer Mannheim GmbH, Deutschland) zugegeben. Die Menge an Antikörperlösung wurde so gewählt, daß dessen Konzentration in der Goldsol­ lösung typischerweise bei 2 µg/ml lag. Nach 30 Minuten Rühren bei Raumtemperatur wurde das Goldkonjugat durch Zugabe einer hochkonzentrierten Rinderserumalbumin-Lösung (End­ konzentration in der Konjugatlösung: 1 mg/ml) abgesättigt.
Das Goldkonjugat wurde durch Ultrafiltration gegen einen 20 mM Tris-Puffer pH 8,0 auf eine optische Dichte von typischerweise 20 aufkonzentriert. Die Konjugatlösung wurde ab­ schließend auf 100 µM Brij® und 0,05 Gew.-% NaN3 aufgestockt.
  • - Das so hergestellte Goldkonjugat (optische Dichte, OD = 20) wurde mit einem Tränkpuffer in einem Volumenverhältnis 1 : 1 auf eine optische Dichte, OD = 10 eingestellt. Der Tränkpuffer enthielt die nachfolgenden Komponenten:
    1 Gew.-% Sacharose
    200 mM HEPES
    100 mM NaCl
    140 mM Harnstoff
    6 mM N-Acetylcystein
    2 mM EDTA
    0,1 Gew.-% Tween® 20.
Das Polyester-Zellwoll-Polyvinylalkohol-Mischvlies wurde mit einer konstanten Geschwindig­ keit zunächst durch eine die Tränklösung enthaltende Wanne gezogen, anschließend durch zwei in einem Abstand von 250 µm angeordnete Edelstahlwalzen abgequetscht und an­ schließend mittels eines Umluftrockners getrocknet. Unter den beschriebenen Bedingungen be­ trägt die Tränkaufnahme des Vlieses typischerweise etwa 270 ml/m2.
b) Bestimmung eines Amplifikationsproduktes von Chlamydia trachomatis
Ein Fragment des kryptischen Plasmides (7,5 Kb) von Chlamydia trachomatis mit 143 Basen­ paaren wurde amplifiziert. Hierzu wurden die Primer des Chlamydia trachomatis Primer and Capture Probe Set (Boehringer Mannheim, Deutschland) verwendet (Primer 1 : 20-mer, Posi­ tion 274-295; Primer 2 : 24-mer, Position 393-416 rev.).
  • - Markierung erfolgte mit DIG-11-dUTP (DIG steht für Digoxygenin) und einer 5'-biotin­ markierten Fangsonde (Boehringer Mannheim GmbH, Deutschland)
  • - Der PCR-Mastermix enthielt 2,5 U Taq-Polymerase, 10 µl 10-fachen PCR-Puffer einschließ­ lich 25 mmolar Magnesiumchlorid, 0,2 µ molar beide Primer, 0,1 mmolar jedes Desoxynucleotid und 0,02 mmolar DIG-11-dUTP. Hieraus ergibt sich eine Markierungs­ stöchiometrie von 1 : 5 DIG-11-dUTP zu Desoxynnukleotide. Der Mastermix wurde durch Hinzupipettieren von 10 µl einer Lösung, die ca. 100 Kopien/µl des kryptischen Plasmid­ fragmentes enthielt und destilliertem Wasser auf 100 µl aufgefüllt. Der Mastermix wurde 10 min. bei 94°C geschmolzen und durchlief 35 mal einen Zyklus, bei dem er jeweils 40 Sekunden bei 94°C gehalten wurde, 30 Sekunden bei 52°C und 45 Sekunden bei 720°C. Das PCR-Pro­ dukt wurde in einem 2,5% Agarose-Gel kontrolliert, welches mit Ethidiumbromid gefärbt wurde.
  • - Zur Hybridisierung wurde 1 µl einer 5'-biotinmarkierten Fangsonde (Position 354-374) in einer Konzentration von 30 µmolar zu 50 µl des Amplifikationsproduktes gegeben. Die mar­ kierte Fangsonde lag so in einer Konzentration von 0,6 µ molar vor. Die Probe wurde danach für 5 Minuten bei 95°C aufgeschmolzen und anschließend für 15 Minuten bei 37°C hybridi­ siert.
  • - Zur Bestimmung der Nukleinsäure auf dem zuvor beschriebenen Teststreifen gemäß Fig. 1 wurden 5 µl des Hybridisierungsproduktes auf die Probenaufgabezone (1) gegeben. Danach wurde der Teststreifen mit der Elutionsmittelaufgabezone (4) für 5 Sekunden in einen Chroma­ tographiepuffer getaucht, wobei darauf geachtet wurde, daß die Zone (3) mit dem Gold­ konjugat nicht in die Flüssigkeit getaucht wurde. Der Chromatographiepuffer hatte die folgende Zusammensetzung: 0,9 Gew.-% Kochsalz, 50 mM Kaliumphosphat, 0,09 Gew.-% Natriumazid, 2 Gew.-% Rinderplasmaalbumin und 0,25 Gew.-% Tween® 20.
Nach 10 Minuten war der Chromatographiepuffer aus der Elutionsmittelaufgabezone (4) bis in die Flüssigkeitssammelzone (5) gewandert. In der Nachweiszone (2) waren 2 rote Striche deutlich sichtbar, wobei der rote Nachweisstrich (enthaltend Streptavidin) einen positiven Befund signalisiert und der rote Kontrollstrich (enthaltend PAK <MAUS Fcγ<) die ordnungs­ genmäße Funktion des Analysenelementes.
Beispiel 2 Nachweis von Influenza A/B-Viren a) Analysenelement
Es wurde ein Teststreifen gemäß Fig. 1 hergestellt. Die Bestandteile des Analysenelementes waren bis auf den Kontrollstrich in der Nachweiszone (2) identisch mit den in Beispiel 1 be­ schriebenen. Für den Kontrollstrich war hier eine Lösung eines polyklonalen Antikörpers aus Kaninchen-IgG gegen Maus-IgG verwendet worden (Bezugsquelle: DAKO Diagnostica GmbH, Hamburg, Deutschland).
b) Influenza-spezifische Immunoreagenzien
Antikörper zum Nachweis des Nukleoproteins von Influenza A- und Influenza B-Viren wurden erhalten von Fitzgerald Industries Int., Concord, Massachusetts, USA.
  • - Zur Herstellung eines biotinmarkierten monoklonalen Antikörpers aus Maus-IgG gegen das Nukleoprotein von Influenza A wurde zu einer Lösung von 20 mg/ml Antikörper in 0,1 M Kaliumphosphat pH 8,5 ein Succinimidesterderivat des Biotins in einem 6-fachen molaren Überschuß zugegeben. Der Ansatz wurde für 90 Minuten bei 25°C unter Rühren inkubiert. Die Reaktion wurde durch Aufstockung der Lösung mit Lysin auf eine Endkonzentration von 10 mM abgestoppt. Das überschüssige Biotinylierungsreagenz wurde durch Dialyse entfernt und die Lösung eingefroren.
  • - Für die Herstellung eines biotinylierten monoklonalen Antikörpers gegen das Nukleoprotein von Influenza B wurde analog vorgegangen.
  • - Zur Herstellung eines digoxigenylierten monoklonalen Antikörpers gegen das Nukleoprotein von Influenza A wurde zu einer Lösung von 10 mg/ml des monoklonalen Antikörpers in 0,1 M Kaliumphosphat ein in Dimethylsulfoxid (DMSO) gelöstes Succinimidester-Derivat des Digoxigenins in einem 4-fachen molaren Überschuß so zugegeben, daß die Endkonzentration an DMSO in der Lösung 5 Vol.% betrug. Der Ansatz wurde für 60 Minuten bei 25°C unter Rühren inkubiert. Die Reaktion wurde danach durch Zugabe einer 1 molaren wässrigen Lysin­ lösung abgestoppt, so daß die Endkonzentration an Lysin 10 mM war. Das überschüssige Digoxigenylierungsreagenz wurde mittels Dialyse gegen einen 20 mM Kaliumphosphatpuffer pH 8,0 entfernt und die Lösung bis zur Benutzung eingefroren.
  • - Die Herstellung eines digoxigenylierten monoklonalen Antikörpers gegen das Nukleoprotein von Influenza B erfolgte analog zu der vorbeschriebenen Digoxigenylierung des monoklonalen Antikörpers gegen das Nukleoprotein von Influenza A.
Die verwendeten Influenza A- und Influenza B-Antikörper sind typspezifisch, das heißt, der Influenza A-Antikörper erkennt lediglich das Nukleoprotein aus Influenza A-Viren, während der monoklonale Influenza B-Antikörper lediglich das Nukleoprotein aus Influenza B-Viren erkennt. Die Antikörper sind jedoch nicht Subtyp-spezifisch, das heißt, der monoklonale Anti­ körper gegen Influenza A erkennt alle Influenza A-Subtypen.
c) Bestimmung von Influenza A- und/oder Influenza B-Viren
Als Probenmaterial zum Beleg der Sensitivität des erfindungsgemäßen Analysenelements wurden verdünnte Viruskulturüberstände verwendet. Die Viruskultivierung erfolgte auf MDCK-Zellen, einem permanenten Hundenierenzellstamm. Die Bebrühtung erfolgte im üblichen Kulturmedium für etwa 7 Tage bei 33°C. Als Vertreter für Influenza A wurde der Subtpy H3N2 (Stamm Beijing 32/92), als Vertreter für Influenza B der Stamm B/Harbin7/94 kultiviert. Die Kulturüberstände wurden mit Kulturmedium in Zweierschritten verdünnt.
Von jeder unterschiedlichen Verdünnung wurden 65 µl Kulturüberstand, 15 µl Lysepuffer (6% Zwittergent® 3-10 in Rinderserumalbumin enthaltender physiologischer Kochsalzlösung) und jeweils 5 µl einer Lösung von biotinyliertem monoklonalen Antikörper gegen Influenza A und digoxigenylierten monoklonalen Antikörper gegen Influenza A zum Nachweis von Influenza A bzw. je 5 µl einer Lösung von biotinyliertem monoklonalen Antikörper gegen Influenza B und digoxigenyliertem monoklonalen Antikörper gegen Influenza B in ein Eppendorf-Gefäß pipettiert (die Konzentration der Antikörperkonjugatstammlösungen betrug jeweils 20 µg/ml). Die lysierte Probe wurde kurz durch Schütteln homogenisiert und anschließend 80 µl auf das Goldkonjugatvlies (3) des Teststreifens gemäß Fig. 1 pipettiert. Anschließend wurden die Teststreifen für ca. 5 Sekunden mit der Elutionsmittelaufgabezone (4) in den Chromato­ graphiepuffer (0,9 Gew.-% Kochsalz, 50 mM Kaliumphosphat, 0,09 Gew.-% Natriumazid, 2 Gew.-% Rinderplasmaalbumin und 0,25 Gew.-% Tween® 20) getaucht. Das Testergebnis wurde nach 10 Minuten in der Nachweiszone (2) abgelesen.
Beim Influenza A-Kulturüberstand konnte bis zu einer Kulturverdünnung von 1 : 64 ein roter Nachweisstrich zum Zeichen eines positiven Befundes erkannt werden. Beim Influenza B-Kultur­ überstand wurden die Verdünnungen bis zur Stufe 1 : 128 positiv erkannt. Der Kontroll­ strich zeigte durch seine rote Farbe in allen Fällen die ordnungsgemäße Funktion des Test­ streifens an.
Beispiel 3 Nachweis von HIV-Antikörpern a) Analysenelement
Es wurde ein Teststreifen gemäß Fig. 2 hergestellt. Auf einer 4 mm breiten und 10 cm langen Trägerfolie (6) aus Polyester (Melinex®, 350 µm dick von Imperial Chemistry Industries, Großbritannien) wurden mit Schmelzkleber (Dynapol® S 1358 von Hüls AG, Deutschland)
  • - ein 0,9 mm dickes und 1,4 cm langes Vlies aus 100 Teilen Glasfasern (Durchmesser 0,49 bis 0,58 µm, Länge 1000 µm) und 5 Teilen Polyvinylalkoholfasern (Kuralon ®VPB 105-2 von Kuraray) mit einem Flächengewicht von 100 g/m2 als Flüssigkeitsammelzone (5),
  • - eine 1,5 cm lange Cellulosenitrat-Membran (Typ CN 11301 von Sartorius, Deutschland) als Nachweiszone (2),
  • - ein 1,2 cm langes Vlies aus 100 Teilen Glasfasern (Durchmesser 0,49 bis 0,58 µm, Länge 100 µm) und 5 Teilen Polyvinylalkoholfasern ((Kuralon ®VPB 105-2 von Kuraray) mit einem Flächengewicht von 100 g/m2, das mit Brij® (1 Gew.-%ig) imprägniert ist als Plasma- bzw. Serumtrennzone (10),
  • - ein 12 mm langes Vlies aus 80 Teilen Polyesterfasern, 20 Teilen Zellwolle und 20 Teilen Polyvinylalkoholfasern, einer Dicke von 0,32 mm und einem Flächengewicht von 80 g/m2, dessen Herstellung in der europäischen Patentschrift 0 326 135, Beispiel 1 beschrieben ist, ent­ haltend Goldkonjugat als Zone mit markiertem Partner des spezifischen Bindungspaares 2 (3),
  • - ein 12 mm langes Vlies aus 80 Teilen Polyesterfasern, 20 Teilen Zellwolle und 20 Teilen Poylvinylalkoholfasern, einer Dicke von 0,32 mm und einem Flächengewicht von 80 g/m2, dessen Herstellung in der europäischen Patentschrift 0 326 135, Beispiel 1, beschrieben ist, enthaltend digoxigenylierte und biotinylierte HIV-Antigene als Zone mit den Partnern 2 der spezifischen Bindungspaare 1 und 2 (9) und
  • - ein 8 mm langes Polyestergewebe (PE 280 HC von Seidengaze Thal, Schweiz) mit Netzmittel imprägniert als Probenaufgabezone (1) leicht überlappend nebeneinander befestigt.
Zur Nachweiszone (2):
Auf die zuvor beschriebene Zellulosenitratmembran wurden durch Strichdosierung eine wässrige Streptavidinlösung (4 mg/ml) aufgebracht. Hierzu wurde die Dosierung so gewählt, daß ein Strich mit einer Breite von ca. 0,4 mm entsteht. Dieser Strich dient zum Nachweis von HIV-Antikörpern. Die Membran wurde anschließend luftgetrocknet.
In einem Abstand von etwa 4 mm von dem Streptavidinstrich wurde durch Strichdosierung eine wässrige Lösung eines polyklonalen Antikörpers aus Kaninchen-IgG gegen Maus-IgG (Bezugsquelle: DAKO Diagnostica GmbH, Hamburg, Deutschland) (0,5 mg/ml) aufge­ bracht. Auch hier wurde die Dosierung so gewählt, daß ein Strich mit einer Breite von ca. 0,4 mm entsteht. Dieser Strich (8) dient zur Funktionskontrolle des Teststreifens. Die Membran wurde anschließend luftgetrocknet.
Zum Goldkonjugatvlies (3):
  • - Goldsol mit einem mittleren Partikeldurchmesser von ca. 40 nm wurde, wie in Beispiel 1a beschrieben, hergestellt.
  • - Auch die Antikörper-Goldkonjugat-Herstellung erfolgte wie in Beispiel 1a beschrieben.
Das so hergestellte Goldkonjugat (optische Dichte, OD = 20) wurde mit einem Tränkpuffer auf eine optische Dichte, OD = 3 (Extinktion bis 525 nm und 1 cm Lichtweg) eingestellt. Der Tränkpuffer enthielt die nachfolgenden Komponenten:
100 mM HEPES, pH 7,5
50 mM NaCl
0,5 Gew.-% Saccharose
70 mM Harnstoff
3 mM N-Acetylcystein
1 mM EDTA und
0,1 Gew.-% Tween® 20.
Das Polyester-Zellwoll-Polyvinylalkohol-Mischvlies wurde mit einer konstanten Geschwindig­ keit zunächst durch eine die Tränklösung enthaltende Wanne gezogen, anschließend durch zwei in einem Abstand von 250 µm angeordnete Edelstahlwalzen abgequetscht und an­ schließend mittels eines Umluftrockners getrocknet. Unter den beschriebenen Bedingungen be­ trägt die Tränkaufnahme des Vlieses typischerweise etwa 270 ml/m2.
Zum Vlies (9) enthaltend digoxigenylierte und biotinylierte HIV-Antigene:
Die Herstellung digoxigenylierter Peptide bzw. biotinylierter Peptide aus dem Bereich gp 41 von HIV I sind in der internationalen Patentanmeldung PCT/EP 95/02921 in Beispiel 1 be­ schrieben. Die jeweiligen Peptide kamen jeweils paarweise als Digoxigenin- und Biotinderivate zum Einsatz. Ihre Ansatzkonzentrationen in der Tränklösung lagen zwischen 0,7.10-7 Mol/l und 3.10-7 Mol/l. Die Tränklösung enthielt darüber hinaus
100 mM MES-Puffer, pH 6,0
50 mM NaCl
2 Gew.-% Saccharose
1 Gew.-% Rinderserumalbumin
3 mM N-Acetylcystein
0,06 Gew.-% Tween® 20
1 mM EDTA.
Das Polyester-Zellwoll-Polyvinylalkohol-Mischvlies wurde in dieser Tränklösung imprägniert und anschließend mittels eines Umlufttrockners getrocknet. Die Trankaufnahme beträgt typischerweise etwa 270 ml/m2.
b) Bestimmung einer HIV-Infektion
Auf die Probenaufgabezone (1) des zuvor beschriebenen Teststreifens gemäß Fig. 2 wurden etwa 60 µl Probenvolumen (Plasma bzw. Serum) aufgegeben. Nach 15 minütiger Wartezeit wurde die Nachweiszone (2) visuell ausgewertet. Ein rotvioletter Strich in der Position der Kontrollinie (8) bedeutet nichtreaktive Probe (keine HIV-Infektion nachweisbar). Zwei rot­ violette Striche, einer in der Position der Kontrollinie (8) und einer in der Position der Nach­ weislinie (7) bedeuten reaktive Probe (HIV-Infektion nachweisbar).

Claims (26)

1. Analyseelement zur Bestimmung eines Analyts enthaltend in oder auf Material, das einen Flüssigkeitstransport zwischen Zonen ermöglicht, eine Probenauftragszone und eine hierzu flußabwärts gelegene Nachweiszone, wobei die Nachweiszone Partner 1 eines spezifischen Bindungspaares 1 so immobilisiert enthält, daß er in der Lage ist, mit Partner 2 des spezi­ fischen Bindungspaares 1, der nicht Analyt ist, eine Bindung einzugehen, wenn er ihn kontaktiert, dadurch gekennzeichnet, daß flußaufwärts der Nachweiszone ein markierter Partner 1 eines spezifischen Bindungs­ paares 2 auf einem Material durch Flüssigkeit ablösbar imprägniert vorliegt und in der Lage ist, mit Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2, der nicht der Analyt ist, eine Bindung einzugehen, wenn dieser ihn kontaktiert.
2. Analyseelement gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß zusammengehörige Partner von spezifischen Bindungspaaren ausgewählt sind aus der Gruppe Hapten und Antikörper, Antigen und Antikörper, Lectin und Zucker/Saccharid, Ligand und Rezeptor, Avidin/Streptavidin und Biotin, Nukleinsäure und Nukieinsäure.
3. Analyseelement gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß Partner 1 des spezifi­ schen Bindungspaares 1 Avidin oder Streptavidin ist.
4. Analyseelement gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß Partner 1 des spezifi­ schen Bindungspaares 2 ein Antikörper gegen Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 ist.
5. Analyseelement gemäß Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß Partner 1 des spezifi­ schen Bindungspaares 2 ein Antikörper gegen Digoxigenin oder Digoxin ist.
6. Analyseelement gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß Partner 1 des spezifi­ schen Bindungspaares 2 mit einem Enzym- oder Direktlabel markiert ist.
7. Analyseelement gemäß Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß als Direktlabel Metall- oder Latexpartikel verwendet werden.
8. Analyseelement gemäß einem der Ansprüche 1-7, dadurch gekennzeichnet, daß sich der markierte Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 in der Probenauftragszone ange­ ordnet befindet.
9. Analyseelement gemäß einem der Ansprüche 1-7, dadurch gekennzeichnet, daß der mar­ kierte Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 in einer Zone flußaufwärts der Proben­ auftragszone angeordnet ist, wenn sich flußaufwärts der Zone mit diesem markierten Partner noch eine Elutionsmittelauftragszone befindet oder die Zone mit dem markierten Partner auch eine Elutionsmittelauftragszone ist.
10. Analyseelement gemäß einem der Anspruch 1-7, dadurch gekennzeichnet, daß die Proben­ auftragszone auch eine Elutionsmittelauftragszone ist.
11. Analyseelement gemäß Anspruch 10, dadurch gekennzeichnet, daß sich der markierte Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 stromabwärts der Probenauftrags- und Elu­ tionsmittelauftragszone befindet.
12. Analyseelement gemäß Anspruch 10, dadurch gekennzeichnet, daß sich der markierte Partner 1 des spezifischen Bindungspaares 2 in der Probenauftrags- und Elutionsmittelauf­ tragszone befindet.
13. Analyseelement gemäß einem der Ansprüche 1-12, dadurch gekennzeichnet, daß es zu­ sätzlich Konjugat von Antikörper gegen ein zu bestimmendes Antigen oder Hapten mit Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 und Konjugat von Antikörper gegen das gleiche Antigen oder Hapten mit Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 enthält.
14. Analyseelement gemäß einem der Ansprüche 1-12, dadurch gekennzeichnet, daß es zu­ sätzlich Konjugat von Antigen, Hapten oder Oligopeptid gegen einen zu bestimmenden Antikörper mit Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 und Konjugat von Antigen, Hapten oder Oligopeptid gegen den gleichen zu bestimmenden Antikörper mit Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 enthält.
15. Verfahren zur Bestimmung eines Analyts mittels spezifischer Bindungspaare, dadurch gekennzeichnet, daß eine von Analyt abgeleitete und diesen repräsentierende Substanz, die Partner 2 eines spezifischen Bindungspaares 1 und Partner 2 eines spezifischen Bindungspaares 2 bein­ haltet in einem Analyseelement zur Bestimmung eines Analyts gemäß Patentansprüchen 1-14 mit markiertem Partner des spezifischen Bindungspaares 2 in Kontakt gebracht, durch Flüssigkeitstransport in dem Analysenelement in Richtung der flußabwärts der Probenauf­ tragszone gelegenen Nachweiszone bewegt, in der Nachweiszone an Partner 1 des spezifi­ schen Bindungspaares 1 gebunden und anhand der Markierung des Partners 1 des spezifi­ schen Bindungspaares 2 bestimmt wird.
16. Verfahren gemäß Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, daß für die Herstellung der von Analyt abgeleiteten und diesen repräsentierenden Substanz Analyt mit Antikörpern ver­ setzt wird, die an den Analyt binden, wobei ein Teil der Antikörper Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 und der andere Teil der Antikörper Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 trägt.
17. Verfahren gemäß Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, daß für die Herstellung der von Analyt abgeleiteten und diesen repräsentierenden Substanz Analyt mit Antigenen, Haptenen oder Oligopeptiden versetzt wird, wobei ein Teil der Antigene, Haptene oder Oligopeptide Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 und der andere Teil der Antigene, Haptene oder Oligopeptide Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 trägt.
18. Verfahren gemäß Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, daß der Analyt eine Nuklein­ säure ist, die vervielfältigt wird, hierbei Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 oder Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 gebunden an ein Nukleotid oder ein Oligo­ nukieotid in die Kopie der Nukleinsäure eingebaut und das Amplifikationsprodukt mit Nukleinsäure hybridisiert wird, die Partner 2 desjenigen Bindungspaares trägt, den die komplementäre Nukleinsäure nicht aufweist.
19. Verfahren gemäß Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, daß der Analyt eine Nuklein­ säure ist, die mit 2 Nukleinsäuresonden hybridisiert wird, wobei die eine Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 1 und die andere Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 enthält.
20. Kit zur Bestimmung eines Analyts enthaltend ein Analyseelement gemäß Patentansprüche 1-14 und mindestens einen Partner aus der Gruppe Partner 2 des spezifischen Bindungs­ paares 1 und Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2.
21. Kit gemäß Anspruch 20, dadurch gekennzeichnet, daß sich Partner 2 des spezifischen Bin­ dungspaares 1 und Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 in getrennten Behältnissen befinden.
22. Kit gemäß Anspruch 20, dadurch gekennzeichnet, daß Partner 2 des spezifischen Bin­ dungspaares 1 und Partner 2 des spezifischen Bindungspaares 2 zusammen in einem Be­ hältnis aufbewahrt werden.
23. Kit gemäß einem der Ansprüche 20-22, dadurch gekennzeichnet, daß Partner 2 des spezi­ fischen Bindungspaares 1 an ein Nukleotid, Oligonukleotid, eine Nukleinsäure, einen Anti­ körper, ein Hapten oder Antigen bzw. ein Antigen repräsentierendes Epitop oder ein Lectin oder einen Rezeptor für einen Liganden konjugiert ist.
24. Kit gemäß Anspruch 23, dadurch gekennzeichnet, daß Partner 2 des spezifischen Bin­ dungspaares 1 Biotin ist.
25. Kit gemäß einem der Ansprüche 20-22, dadurch gekennzeichnet, daß Partner 2 des spezi­ fischen Bindungspaares 2 an ein Nukleotid, Oligonukleotid, eine Nukleinsäure, einen Anti­ körper, ein Hapten oder Antigen bzw. ein Antigen repräsentierendes Epitop oder ein Lectin oder einen Rezeptor für einen Liganden konjugiert ist.
26. Kit gemäß Anspruch 25, dadurch gekennzeichnet, daß Partner 2 des spezifischen Bin­ dungspaares 2 ein Hapten, bevorzugt Digoxigenin oder Digoxin ist.
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DE59814295T DE59814295D1 (de) 1997-12-24 1998-12-21 Verfahren zur Analytbestimmung unter Verwendung eines universellen Analysenelementes
ES98124287T ES2314985T3 (es) 1997-12-24 1998-12-21 Procedimiento para la determinacion de un analito mediante el empleo de un elemento de analisis universal.
EP98124287A EP0926498B1 (de) 1997-12-24 1998-12-21 Verfahren zur Analytbestimmung unter Verwendung eines universellen Analysenelementes
JP36817998A JPH11248708A (ja) 1997-12-24 1998-12-24 分析要素の多目的構造体およびアナライト測定のためのその用途
CN98125504A CN1228538A (zh) 1997-12-24 1998-12-24 分析元件的多种功能结构及其用于测定分析物的应用
US10/748,560 US7118875B2 (en) 1997-12-24 2003-12-30 Analyte determination using a general purpose structure of an analytical element

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Families Citing this family (42)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7011940B1 (en) 1999-04-14 2006-03-14 Medical Discovery Partners Llc Quality control for cytochemical assays
US6281004B1 (en) * 1999-04-14 2001-08-28 Cytologix Corporation Quality control for cytochemical assays
DE19927783A1 (de) * 1999-06-18 2000-12-21 Roche Diagnostics Gmbh Element zur Bestimmung eines Analyts in einer Flüssigkeit, entsprechendes Bestimmungsverfahren unter Verwendung des Elementes sowie Kit zur Bestimmugn eines Analyts
DE19956820A1 (de) * 1999-11-25 2001-05-31 Roche Diagnostics Gmbh Spezies-spezifischer Nachweis von Nukleinsäuren mittels eines Analyseelementes
SE0103072D0 (sv) * 2001-09-17 2001-09-17 Pharmacia Diagnostics Ab Multi-analyte assay device with multi-spot detection zone
AU2002343815A1 (en) * 2001-11-22 2003-06-10 Wakunaga Pharmaceutical Co., Ltd. Immunochromatographic test strip for measuring analysis subject in specimen in trace amount
AU2003291250A1 (en) * 2002-11-05 2004-06-07 Therasense, Inc. Assay device, system and method
WO2005075982A2 (en) 2004-02-09 2005-08-18 Rapid Pathogen Screening Inc. Method for the rapid diagnosis of targets in human body fluids
ATE489625T1 (de) * 2004-06-07 2010-12-15 Denka Seiken Kk Chromatographische nachweisvorrichtung
US20060046310A1 (en) * 2004-08-25 2006-03-02 Zong-Li Xia Amplification method for solid phase immunoassays
JP4547272B2 (ja) * 2005-01-12 2010-09-22 シスメックス株式会社 イムノクロマトグラフィー用試験具
US8669052B2 (en) * 2008-06-10 2014-03-11 Rapid Pathogen Screening, Inc. Lateral flow nucleic acid detector
US8445293B2 (en) * 2005-02-09 2013-05-21 Rapid Pathogen Screening, Inc. Method to increase specificity and/or accuracy of lateral flow immunoassays
WO2006098804A2 (en) * 2005-03-11 2006-09-21 Chembio Diagnostic Systems, Inc. Dual path immunoassay device
US7189522B2 (en) 2005-03-11 2007-03-13 Chembio Diagnostic Systems, Inc. Dual path immunoassay device
ES2677555T3 (es) * 2005-11-23 2018-08-03 Ventana Medical Systems, Inc. Conjugado molecular
KR100762825B1 (ko) 2006-01-03 2007-10-04 대한민국(관리부서 : 농림부 국립수의과학검역원) 신속 면역크로마토그라피법에 의한 ｈ5형 고병원성 및 일반조류인플루엔자 바이러스 항원 진단 스트립 및 그 제조방법
GB0604973D0 (en) * 2006-03-11 2006-04-19 Central Science Lab Csl Of San Purification method and kit
AU2007235649A1 (en) * 2006-04-10 2007-10-18 3M Innovative Properties Company Nucleic acid detection using lateral flow methods
WO2009039239A2 (en) * 2007-09-18 2009-03-26 Idexx Laboratories, Inc. Lateral flow assay using centrifugal force
US8163474B2 (en) * 2008-03-15 2012-04-24 Arbor Vita Corporation NS1-NP diagnostics of influenza virus infection
JP2009236685A (ja) * 2008-03-27 2009-10-15 Sysmex Corp クロマトグラフィー用試験具
US9068981B2 (en) 2009-12-04 2015-06-30 Rapid Pathogen Screening, Inc. Lateral flow assays with time delayed components
US8962260B2 (en) 2008-05-20 2015-02-24 Rapid Pathogen Screening, Inc. Method and device for combined detection of viral and bacterial infections
US8815609B2 (en) 2008-05-20 2014-08-26 Rapid Pathogen Screening, Inc. Multiplanar lateral flow assay with diverting zone
US20130196310A1 (en) 2008-05-20 2013-08-01 Rapid Pathogen Screening, Inc. Method and Device for Combined Detection of Viral and Bacterial Infections
US8609433B2 (en) * 2009-12-04 2013-12-17 Rapid Pathogen Screening, Inc. Multiplanar lateral flow assay with sample compressor
US20110086359A1 (en) * 2008-06-10 2011-04-14 Rapid Pathogen Screening, Inc. Lateral flow assays
EP2313775A4 (de) * 2008-07-15 2012-03-14 Rapid Pathogen Screening Inc In-situ-zelllyse bei lateralfluss-immunoassays
US20100022916A1 (en) 2008-07-24 2010-01-28 Javanbakhsh Esfandiari Method and Apparatus for Collecting and Preparing Biological Samples for Testing
RU2564911C2 (ru) * 2009-12-04 2015-10-10 Рэпид Пэтоджен Скрининг, Инк. Многослойный анализ с горизонтальным потоком с прессом для образцов
US8603835B2 (en) 2011-02-10 2013-12-10 Chembio Diagnostic Systems, Inc. Reduced step dual path immunoassay device and method
CN102323422B (zh) * 2011-05-30 2014-03-12 中国科学院上海微系统与信息技术研究所 半定量同时检测cTnI和Myo的免疫层析试纸条及其制备
WO2013105090A1 (en) * 2012-01-11 2013-07-18 Aptateck Bio Ltd. A versatile lateral flow strip device
CN111077309B (zh) 2014-04-02 2023-11-17 生化诊断系统公司 利用俘获缀合物的免疫测定
CN104101706B (zh) * 2014-07-28 2016-05-18 国家纳米科学中心 一种检测甲流抗原的胶体金免疫层析试纸条及检测甲流抗原的方法
US20160116466A1 (en) 2014-10-27 2016-04-28 Chembio Diagnostic Systems, Inc. Rapid Screening Assay for Qualitative Detection of Multiple Febrile Illnesses
US11040892B2 (en) 2015-02-09 2021-06-22 Digital Concepts Of Missouri, Inc. Spa/pool water treatment system and method
US9990560B2 (en) 2015-02-09 2018-06-05 Digital Concepts Of Missouri, Inc. Test strip mobile APP system and method
US10808287B2 (en) 2015-10-23 2020-10-20 Rapid Pathogen Screening, Inc. Methods and devices for accurate diagnosis of infections
USD878624S1 (en) * 2018-06-05 2020-03-17 Digital Concepts Of Missouri, Inc. Test strip
CN110592201A (zh) * 2019-10-30 2019-12-20 上海千履基因科技有限公司 一管式高特异性核酸产物的pcr扩增方法、核酸快速检测方法和核酸检测试纸条

Family Cites Families (23)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4281061A (en) * 1979-07-27 1981-07-28 Syva Company Double antibody for enhanced sensitivity in immunoassay
US4816224A (en) 1980-08-05 1989-03-28 Boehringer Mannheim Gmbh Device for separating plasma or serum from whole blood and analyzing the same
DE3029579C2 (de) 1980-08-05 1985-12-12 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren und Mittel zur Abtrennung von Plasma oder Serum aus Vollblut
DE3044385A1 (de) 1980-11-25 1982-06-24 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren zur durchfuehrung analytischer bestimmungen und hierfuer geeignetes rotoreinsatzelement
US4791056A (en) * 1984-03-27 1988-12-13 Syntex (U.S.A.) Inc. Calibration device for heterogeneous immunoassay
DE3445816C1 (de) * 1984-12-15 1986-06-12 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Flaechenfoermiges diagnostisches Mittel
US4806311A (en) * 1985-08-28 1989-02-21 Miles Inc. Multizone analytical element having labeled reagent concentration zone
CA1303983C (en) 1987-03-27 1992-06-23 Robert W. Rosenstein Solid phase assay
DE3856542T2 (de) 1987-04-27 2003-10-30 Inverness Medical Switzerland Testgerät zur Durchführung von spezifischen Bindungsprüfungen
DE3802366A1 (de) 1988-01-27 1989-08-10 Boehringer Mannheim Gmbh Traegervlies fuer abloesbar impraegnierte reagenzien
EP0328106A3 (de) * 1988-02-09 1990-12-19 Konica Corporation Verfahren zur Bestimmung einer Substanz und Immunoassay-Element
US5141850A (en) 1990-02-07 1992-08-25 Hygeia Sciences, Inc. Porous strip form assay device method
DK51092D0 (da) 1991-05-24 1992-04-15 Ole Buchardt Oligonucleotid-analoge betegnet pna, monomere synthoner og fremgangsmaade til fremstilling deraf samt anvendelser deraf
DE4217732A1 (de) 1992-05-29 1993-12-02 Boehringer Mannheim Gmbh Vliesschicht enthaltender Testträger
US5354692A (en) * 1992-09-08 1994-10-11 Pacific Biotech, Inc. Analyte detection device including a hydrophobic barrier for improved fluid flow
EP0630974A3 (de) * 1993-06-25 1995-11-15 Clinical Diagnostic Syst Verfahren und Testkit zum Nachweis von anorganischen Orthophosphat bei der Amplifizierung von Zielnukleinsäuren.
EP0699906B1 (de) * 1994-07-25 2002-04-24 Roche Diagnostics GmbH Verfahren zum Nachweis der Kontamination einer Oberfläche mit einem Analyten
CA2172144C (en) 1994-07-25 2001-02-06 Eva Hoss Hapten-marked peptides
US5719034A (en) * 1995-03-27 1998-02-17 Lifescan, Inc. Chemical timer for a visual test strip
AU6720096A (en) 1995-08-09 1997-03-05 Quidel Corporation Test strip and method for one step lateral flow assay
DE19609838A1 (de) 1996-03-13 1997-09-18 Boehringer Mannheim Gmbh Verfahren und Teststreifen zur Bestimmung eines Analyten
US5667653A (en) 1996-03-15 1997-09-16 Mine Safety Appliances Company Electrochemical sensor
US5795783A (en) * 1996-03-19 1998-08-18 International Remote Imaging Systems, Inc. Control solutions and a method of use therefor

Also Published As

Publication number Publication date
DE59814295D1 (de) 2008-11-13
EP2037273A1 (de) 2009-03-18
US7118875B2 (en) 2006-10-10
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EP0926498B1 (de) 2008-10-01
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ATE409862T1 (de) 2008-10-15
CA2256943C (en) 2009-09-15
ES2314985T3 (es) 2009-03-16
CA2256943A1 (en) 1999-06-24
JPH11248708A (ja) 1999-09-07
US20040152142A1 (en) 2004-08-05
SG66919A1 (en) 2000-08-22
KR19990063211A (ko) 1999-07-26

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