DE19855890A1 - Poröse Kompositmatrix, deren Herstellung und Verwendung - Google Patents
Poröse Kompositmatrix, deren Herstellung und VerwendungInfo
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Abstract
Die Erfindung betrifft eine poröse Kompositmatrix aus einem Hyaluronsäurederivat und hydrolysiertem Kollagen, die als biokompatible und biodegradable Kompositmatrix Verwendung zum Tissue Engineering von chondralem und ossärem Gewebe und zur Reparatur muskuloskletaler Defekte findet.
Description
Die Erfindung betrifft eine poröse Kompositmatrix aus einem
Hyaluronsäurederivat und hydrolysiertem Kollagen, die als
biokompatible und biodegradable Kompositmatrix Verwendung zur
Reparatur muskuloskeletaler Defekte findet.
Zur Regeneration von Gewebedefekten ist die Verwendung einer
körperverträglichen, langsam biodegradablen Matrix
erforderlich, die unter geeigneten Bedingungen die
Differenzierung eingebrachter Zellen mit ausgeprägter
Produktion einer spezifischen interzellulären Matrix
ermöglicht. Im Stand der Technik sind verschiedene Matrizes
dieser Art bekannt.
Die WO 97/28192 offenbart ein Verfahren zur Herstellung
prionenfreier Kollagenprodukte, die als schwammartiges
Implantat verwendet werden können. Für okulare Anwendungen kann
das Kollagenprodukt zur Erhöhung der Transparenz mit 5 Gew.-%
Hyaluronsäure versetzt werden. Die Hyaluronsäure stimuliert
außerdem die Zellinfiltration in das Implantat.
Das US 5,676,964 offenbart inter- und intramolekular vernetzte
Ester von sauren Polysacchariden wie bevorzugt Hyaluronsäure.
Diese Ester können als biodegradable, beispielsweise schwammige
Materialien als chirurgische Gegenstände eingesetzt werden.
Die bekannten Matrizes zeigen jedoch deutliche Einschränkungen
in der Bereitstellung von für die Differenzierung eingebrachter
Zellen geeigneter Milieubedingungen und sind auch im Hinblick
auf die für die Handhabung notwendige Stabilität
unbefriedigend.
Eine Aufgabe der vorliegenden Erfindung besteht somit darin
eine Matrix zur Verfügung zu stellen, die die
Zelldifferenzierung und interzellulare Matrixproduktion
unterstützt und dann selbst langsam degradiert wird. Außerdem
soll die Matrix eine ausreichende Stabilität aufweisen, die die
Matrix nicht nur für eine Vorkultivierung von Zellen in vitro
sondern auch für eine in vivo Implantation gut geeignet und
leicht handhabbar macht.
Es wurde nun gefunden, daß diese Aufgabe durch eine
Kompositmatrix aus einem Hyaluronsäurederivat und
hydrolysiertem Kollagen gelöst wird.
Die vorliegende Erfindung betrifft somit eine poröse
Kompositmatrix, umfassend als Matrixbildner ein
Hyaluronsäurederivat und hydrolysiertes Kollagen.
Die erfindungsgemäße Kompositmatrix umfaßt als Matrixbildner
ein Hyaluronsäurederivat und hydrolysiertes Kollagen bevorzugt
in einem Gewichtsverhältnis von 30 : 70 bis 99 : 1, insbesondere
60 : 40 bis 90 : 10 und besonders bevorzugt etwa 70 : 30.
Als hydrolysiertes Kollagen eignet sich insbesondere Gelatine,
d. h. Kollagen in stark hydrolysierter Form. Beispielsweise kann
Gelatine vom Schwein oder vom Rind eingesetzt werden. Es können
jedoch auch Gelatineformen mit einer höheren Aggregationsrate
in Richtung Fibrillen eingesetzt werden. Stärker aggregiertes
Kollagen kann zu einer Verbesserung der Matrixstabilität
führen. Solche Kollagene mit unterschiedlich großen
Degradationsformen können durch eine kontrollierte, langsame
Hydrolyse von fibrillärem Kollagen erzeugt werden.
Als Hyaluronsäurederivat zur Herstellung der erfindungsgemäßen
Kompositmatrix werden Hyaluronsäureester bevorzugt, wobei die
Hyaluronsäure unterschiedliche Veresterungsgrade aufweisen
kann. Beispiele für erfindungsgemäß einsetzbare
Hyaluronsäureester sind in dem US-Patent Nr. 5,676,964 genannt.
Die Offenbarung dieses US-Patents wird somit in die vorliegende
Beschreibung aufgenommen.
Ein bevorzugter Hyaluronsäureester ist ein Benzylester der
Hyaluronsäure (HYAFF), der beispielsweise von der Firma "Fidia
Advanced Biopolymers" aus Abano Therme in Italien bezogen
werden kann. HYAFF wird in verschiedenen Veresterungsgraden
angeboten, von denen erfindungsgemäß ein hochveresterter
Hyaluronsäurebenzylester "HYAFF 11" (100% Benzylester), der als
bereits zugelassenes Wundverbandmaterial "JALOSKIN" im Handel
erhältlich ist, bevorzugt wird.
Andere Hyaluronsäureester mit niedrigeren Veresterungsgraden
(beispielsweise HYAFF 11 p 75, ein Hyaluronsäurebenzylester mit
einem Veresterungsgrad von ca. 75%) und/oder anderen
Alkoholresten, wie beispielsweise Hyaluronsäureethylester (wie
etwa HYAFF 7), oder mit Mischungen verschiedener Alkoholreste
sind jedoch auch einsetzbar.
Die erfindungsgemäße Kompositmatrix ist porös, insbesondere
offenporig. Bevorzugt haben die Poren in der Kompositmatrix
einen durchschnittlichen Durchmesser im Bereich von 50-500 µm.
Es hat sich gezeigt, daß zu große Poren (< 500 µm) bei der
Besiedelung mit Zellen zu einem hohen Zellverlust aus der
Matrix, besonders bei kleinen Schwammdurchmessern führen. Bei
zu kleinen Poren (< 160 µm) zeigt sich ein starker Siebeffekt
und die Zellen können nicht in tieferen Matrixbereichen
angesiedelt werden. Jedoch kann durch einen bestimmten Anteil
kleinerer Poren eine niedrigere Dichte und eine lockerere
Struktur der Kompositmatrix erreicht werden. Hierdurch kann
eine Beschleunigung des Abbaus in vivo ohne Änderung der für
die Zellen zugänglichen Porengröße erreicht werden.
Poren mit einem durchschnittlichen Durchmesser im Bereich von
160-250 µm und Poren mit einem durchschnittlichen Durchmesser
im Bereich von 250-500 µm haben sich als vorteilhaft erwiesen.
Wenn eine niedrigere Dichte oder eine lockerere Struktur der
Kompositmatrix erwünscht ist, können zusätzlich Poren im
Bereich von 30-150 µm, insbesondere im Bereich von etwa 50 µm
vorhanden sein. Auch können Poren in etwa gleicher Größe oder
Poren mit einem Größegradienten bereitgestellt werden.
Zusätzlich kann die erfindungsgemäße Kompositmatrix chemisch
oder physikalisch quervernetzt sein. Hierdurch läßt sich die
biologische Abbaubarkeit der Kompositmatrix je nach Bedarf
verzögern. Außerdem kann ein vorzeitiges Auslaugen von
eventuellen Zusätzen verhindert werden. Als Vernetzungsmittel
eignet sich beispielsweise Cyanamid, das Proteine und
Polysaccharide vernetzt und beim biologischen Abbau keine
körperfremden, schädlichen Reststoffe ergibt, da es zu
Harnstoff degradiert wird.
Die erfindungsgemäße Kompositmatrix kann darüber hinaus
biologisch aktive Verbindungen umfassen. Hierbei kann es sich
beispielsweise um Verbindungen handeln, die die Eigenschaft der
Matrix für die Besiedlung von Zellen optimieren. Vorteilhaft
läßt sich die Zelladhäsion durch Zugabe von hochpolymerem Poly-
L-lysin oder Beschichtung mit einem aktivierten Succinylderivat
von Poly-L-lysin oder das Beimengen von Fibronektin oder
Peptiden mit RGD-Sequenzen verbessern.
Um den Einsatz der erfindungsgemäßen Kompositmatrix in der
Therapie von ossären Gewebedefekten zu optimierten, kann die
Matrix Calciumsalze wie z. B. Calciumsufate, Calciumphosphate
und Calciumcarbonate beispielsweise als Suspension oder Lösung
enthalten.
Zur Verminderung der Infektionsgefahr bei der Implantation der
erfindungsgemäßen Kompositmatrix kann diese auch Antibiotika
enthalten.
Als weitere biologisch aktive Verbindungen kann die
erfindungsgemäße Kompositmatrix beispielsweise zur Optimierung
der Reparatur von muskuloskeletalen Defekten induktive
Faktoren, insbesondere Cytokine wie z. B. bFGF (fibroblast
growth factor), IGF (insulin-like growth factor) oder TGFbeta
(transforming growth factor) enthalten.
Die Kompositmatrix eignet sich besonders für die in vitro und
in vivo Generierung von differenziertem Gewebe aus
chondrozytären Zellen und mesenchymalen Stamm- und
Progenitorzellen. Die Erfindung betrifft somit auch
Kompositmatrizes, die diese Zellen umfassen.
Ein weiterer Aspekt der vorliegenden Erfindung ist ein
Verfahren zur Herstellung der vorstehend beschriebenen porösen
Kompositmatrix. Dieses Verfahren umfaßt das Lösen oder
Suspendieren des Hyaluronsäurederivats und des hydrolysierten
Kollagens in einem geeigneten ersten Lösungsmittel, die Zugabe
einer pulverförmigen Verbindung, die sich in dem ersten
Lösungsmittel praktisch nicht löst, die jedoch in einem zweiten
Lösungsmittel löslich ist, in dem die Matrixbildner
Hyaluronsäurederivat und hydrolysiertes Kollagen praktisch
unlöslich sind, zu der Lösung oder Suspension, wobei die
pulverförmige Verbindung eine mittlere Korngrößenverteilung im
Bereich der gewünschten Porengröße der herzustellenden
Kompositmatrix aufweist, das Entfernen des ersten
Lösungsmittels und anschließend das Lösen der pulverförmigen
Verbindung in einem zweiten Lösungsmittel, in dem sich die
pulverförmige Verbindung löst und die Matrixbildner praktisch
nicht lösen.
Als erstes Lösungsmittel eignet sich insbesondere 1,1,1,3,3,3-Hexa
fluorisopropanol (HFIP). Hierbei handelt es sich um eine
hochflüchtige Flüssigkeit, in der sich veresterte
Hyaluronsäure, hydrolysiertes Kollagen (Gelatine) sowie
weitere, für die spezifischen Erfordernisse notwendige
Substanzen wie z. B. Wachstumsfaktoren und Calciumverbindungen
gleichzeitig bei Raumtemperatur lösen bzw. suspendieren. Je
größer die Molekülaggregate des hydrolysierten Kollagens sind,
desto schlechter ist deren Löslichkeit in HFIP. Fibrilläres
Kollagen wird nicht mehr gelöst.
Die Konzentrationen der Ausgangsstoffe in dem ersten
Lösungsmittel sind für das erfindungsgemäße Verfahren
unwesentlich und können variiert werden, solange handhabbare
Lösungen bzw. Suspensionen erhalten werden. Dies betrifft
sowohl die Konzentrationen der einzelnen Komponenten, als auch
die Gesamtkonzentration der Komponenten in dem ersten
Lösungsmittel. Die Einzelkonzentrationen von dem
Hyaluronsäurederivat und dem hydrolysierten Kollagen bestimmen
das Gewichtsverhältnis der beiden Komponenten im Endprodukt. Da
zum Schluß das erste Lösungsmittel dem Endprodukt entzogen
wird, bestimmt die Gesamtkonzentration die Dichte und
Festigkeit des Endproduktes.
Für die Handhabung der erfindungsgemäßen Kompositmatrix spielt
deren mechanische Festigkeit in nassem Zustand eine wichtige
Rolle. Die Festigkeit der Kompositmatrix ist bei hohem
Hyaluronsäurederivatanteil in der Matrix am größten, da die
Matrix hier am wenigsten quillt. Bei wachsendem Anteil des
hydrolysierten Kollagens quillt die Kompositmatrix zunehmend
stark und wird weniger stabil.
Bevorzugt wird in dem erfindungsgemäßen Verfahren HYAFF mit
5 Gew.-% in HFIP gelöst. Hierzu kann Gelatine in variabler
Einzelkonzentration von beispielsweise bis zu 7,5 Gew.-%
beigegeben werden, so daß eine hohe Gesamtkonzentration von
12,5 Gew.-% Matrixbildner in der Lösung erreicht wird. Dadurch
wird die Minderung der Festigkeit wegen der starken Quellung
kompensiert. Lösungen mit einer Gesamtkonzentration von mehr
als 12,5 Gew.-% sind sehr zäh und lassen sich schlecht
handhaben. Eine Erhöhung des Anteils der Gelatine im Endprodukt
ist daher nur dann durchführbar, wenn der HYAFF-Anteil
reduziert wird. Jedoch mindert eine Reduktion des HYAFF-Anteils
(beispielsweise auf eine Einzelkonzentration von 2,77 Gew.-%
bei einer Gesamtkonzentration von 9,23 Gew.-% der Matrixbildner
in der Lösung, was einem Gewichtsverhältnis von HYAFF zu
Gelatine von 30 : 70 entspricht) die Stabilität der Matrix ohne
eine Verbesserung der Bioverträglichkeit zu ergeben.
Grundsätzlich wirkt sich der Zusatz von Gelatine positiv auf
die Bioverträglichkeit und auf die histogene Eigenschaft der
Matrix aus. In vitro und in vivo bewährte sich ein
Gewichtsverhältnis von Hyaluronsäurederivat zu hydrolysiertem
Kollagen von etwa 70 : 30, wobei jedoch je nach Anwendung zum
Beispiel für die Bildung von Knorpel oder für die Regeneration
von Knochengewebe optimale Gewichtsverhältnisse im Bereich von
85 : 15 bis 60 : 40 liegen können.
Die Porenbildung erfolgt durch Zugabe einer pulverförmigen
Verbindung, die in dem ersten Lösungsmittel praktisch nicht
löslich ist. Wird als erstes Lösungsmittel HFIP verwendet, so
eignete sich beispielsweise Natriumchlorid als pulverförmige
Verbindung zur Porenbildung. Natriumchlorid ist praktisch
unlöslich in HFIP, außerdem ist es untoxisch und billig.
Neben Natriumchlorid eignet sich darüber hinaus z. B. beim
Einsatz von HFIP als erstes Lösungsmittel jedes wasserlösliche
und in HFIP nicht lösliche Alkali- oder Erdalkalisalz,
insbesondere -halogenid. Aus den oben genannten Gründen wird
jedoch Natriumchlorid bevorzugt.
Die zugegebene Menge der pulverförmigen Verbindung bestimmt die
Porenzahl und damit die Dichte und auch Festigkeit der
hergestellten Matrix. Als vorteilhaft hat sich ein
Gewichtsverhältnis von Lösung oder Suspension zu
Natriumchloridkristallen von etwa 1 : 2 erwiesen.
Die Porengröße wird durch die Auswahl der Korngröße der
pulverförmigen Verbindung bestimmt. Käufliches Natriumchlorid
hat überwiegend Körner mit einem Durchmesser zwischen 500 und
1000 µm. Fraktionen von kleineren Größen können einfach durch
zermörsern von größeren Körnern und durch Sieben durch
kalibrierte Siebe hergestellt werden.
Das Gemisch aus HYAFF, Gelatine und Natriumchloridkristallen
hat die Konsistenz einer dicken Paste. Durch das Pressen mit
einem Stempel in Formen, beispielsweise aus innertem Kunststoff
(PTFE, PE, PVC) ist es möglich, Matrixobjekte herzustellen,
deren Form weitgehend dem Bedarf angepaßt werden kann. Da HFIP
als Lösungsmittel sehr volatil ist, erfolgt ein schnelles
Trocknen des Gemisches. Deswegen sollte das Gemisch in
geschlossenen Gefäßen aufbewahrt und möglichst schnell
verarbeitet werden. Das Trocknen kann beispielsweise über Nacht
unter einem Abzug und anschließend einige Stunden im Vakuum
erfolgen. Danach kann die Kompositmatrix aus der Form entnommen
werden.
Da das Gemisch während der Trocknung kaum schrumpft, kann das
Los lösen der Matrix Schwierigkeiten bereiten. Deswegen sollten
die Formen so gestaltet sein, daß man den getrockneten Inhalt
mit einem Stempel herausdrücken kann. Beispielsweise können
zylinderförmige Matrizes mit einem Durchmesser von 3-18 mm und
einer Höhe von 2-15 mm leicht hergestellt werden. Für die
Herstellung von größeren Matrixblöcken haben sich kuboide,
wannenförmige Formen als besonders geeignet erwiesen, die aus
zerlegbaren Wand- und Bodenteilen zusammengelegt sind.
Die Poren der erfindungsgemäßen Kompositmatrix werden
anschließend durch Lösen der pulverförmigen Verbindung in einem
zweiten Lösungsmittel erhalten, in dem sich die pulverförmige
Verbindung löst und die Matrixbildner praktisch nicht lösen.
Wenn Natriumchloridkristalle als pulverförmige Verbindung
verwendet werden, eignet sich als zweites Lösungsmittel
insbesondere Wasser. Mehrfaches Spülen in Reinwasser entfernt
das Salz und eventuell noch anhaftende Spuren von HFIP. Bei
kleinen Proben empfehlen sich vier Wechsel des zweiten
Lösungsmittels nach jeweils 15 Minuten Eintauchzeit, bei
größeren Proben 6 Wechsel nach jeweils 20 Minuten.
Beim ersten Trocknen der Kompositmatrix durch Verdampfen des
ersten Lösungsmittels werden primär geschlossene Poren mit
darin enthaltenen Salzkörnern erzeugt. Während des
Waschvorgangs quillt die semipermeable Substanz der Matrix auf
und es kommt in den Poren zur Bildung einer osmotisch
hochaktiven Salzlösung. Infolgedessen platzen bei weiterer
Wasseraufnahme die Poren und die Matrix wird zum Schluß
offenporig.
Falls gewünscht, kann die Kompositmatrix während oder nach der
Herstellung zusätzlich mit wie oben beispielhaft genannten
biologisch aktiven Verbindungen beladen werden. Vorteilhaft
werden die biologisch aktiven Verbindungen zu der Lösung oder
Suspension der Matrixkomponenten noch vor der Zugabe der
pulverförmigen Verbindung zugesetzt.
Vorteilhaft wird die so hergestellte Kompositmatrix
anschließend getrocknet. Dies kann beispielsweise durch
Eintauchen in Aceton aufsteigender Konzentration (50%, 80%,
100%), blotten auf Filterpapier und anschließendes Trocknen im
Vakuum erreicht werden.
Schließlich ist es ratsam, eine dünne Oberflächenschicht der
Kompositmatrix beispielsweise mit einer scharfen Klinge zu
entfernen, da in dieser Schicht eine hohe Zahl von
geschlossenen Poren verbleibt, was das Eindringen von Zellen in
die Tiefe behindert.
Vor einem Beladen mit Zellen wird die Kompositmatrix
vorteilhaft sterilisiert. Dies kann durch verschiedene bekannte
Sterilisationsverfahren wie beispielsweise mit Alkohol,
Ethylenoxid oder durch gamma-Sterilisation erfolgen. Bevorzugt
wird eine gamma-Sterilisation mit beispielsweise 350 000 rad.
Die erfindungsgemäße Kompositmatrix eignet sich für die in
vitro und in vivo Generierung von differenziertem Gewebe aus
chondrozytären Zellen und mesenchymalen Stamm- und
Progenitorzellen. Durch eine spezifisch angepaßte
Matrixzusammensetzung sowie Matrixgeometrie wird hiermit die
Reparatur muskuloskeletaler Defekte möglich.
Die vorliegende Erfindung betrifft somit auch die Verwendung
der oben beschriebenen Kompositmatrix zur Generierung von
differenziertem Gewebe aus chondrozytären Zellen oder
mesenchymalen Stamm- und Progenitorzellen, wobei frisch
entnommene oder amplifizierte Zellen zu der Kompositmatrix
zugegeben und gegebenenfalls unter chondrogenen Bedingungen
kultiviert werden.
Durch Zugabe von frisch entnommenen Chondrozyten oder
mesenchymalen Stamm- und Progenitorzellen oder von in vitro
amplifizierten, dedifferenzierten Chondrozyten oder
mesenchymalen Stamm- und Progenitorzellen zu der
erfindungsgemäßen Kompositmatrix unter chondrogenen
Kulturbedingungen kann somit ein biomechanisch belastbares
Gelenkknorpelgewebe hergestellt werden. Die erfindungsgemäße
Kompositmatrix eignet sich somit zum Tissue Engineering von
Gewebetypen des Binde- und Stützapparates, insbesondere von
chondralem und ossärem Gewebe.
Eine so hergestellte, biokompatible und biodegradable
Kompositmatrix eignet sich ohne oder mit vorheriger in vitro
Kultivierung zur in vivo Differenzierung zu Gewebetypen des
Binde- und Stützapparates, insbesondere zu chondralem und
ossärem Gewebe unter ektoper oder autotoper Implantation.
Die erfindungsgemäße Kompositmatrix eignet sich beispielsweise
für humane Chondrozyten, die aus hyalinem Knorpel gewonnen
wurden. Dabei können hyaline Gelenkknorpel von Autopsien sowie
Restknorpelbestände aus der Durchführung von Totalendoprothesen
den Entnahmeursprung darstellen. Außerdem eignen sich
embryonale Chondrozyten, wie sie beispielsweise von
Abtreibungen erhalten werden können. Darüber hinaus können
adulte mesenchymale Stamm- und Progenitorzellen beispielsweise
aus Knochenmark, Synovium oder Periost sowie bevorzugt
embryonale mesenchymale Stamm- und Progenitorzellen
beispielsweise aus der Nabelschnur verwendet werden. Embryonale
mesenchymale Stammzellen bieten den Vorteil einer fehlenden
Abstoßung bei allogener Transplantation. Zudem stehen sie
ständig in ausreichender Zahl zur Verfügung und können ohne
einen zusätzlichen Eingriff am Patienten gewonnen werden.
Die erfindungsgemäße Kompositmatrix weist den Vorteil auf, daß
es beim Beladen der Matrix mit Zellen nur zu einer geringen
Größenveränderung kommt. Bekannte Kollagenmatrizes zeigen beim
Beladen mit Zellen starke Größenunterschiede (zunächst massives
Aufquellen, dann starke Tendenz sich einzukugeln). Für die
Anwendung von Tissue-Engineering (in vitro Erzeugung von Gewebe
mit dem Ziel, dieses in einen Defekt einzubauen) ist jedoch
eine Größenstabilität der Matrix auch nach Zellbeladung und
Kultivierung von großem Vorteil. Dies wird durch die
erfindungsgemäße Kompositmatrix und insbesondere durch die
gleichzeitige Mischung der Matrixbildner unter Verwendung von
HFIP erreicht.
Darüber hinaus werden mit der erfindungsgemäßen Kompositmatrix
folgende weitere Vorteile erzielt:
In stationärer Kultur ist eine Redifferenzierung amplifizierter Chondrozyten in der Kompositmatrix möglich. Es werden knorpeltypische Proteoglykane (Chondroitinsulfat, Keratansulfat, Aggregan) sowie Kollagen II gebildet. Dies konnte nach 2-, 4- und 6-wöchiger Kultivierung nachgewiesen werden.
In stationärer Kultur ist eine Redifferenzierung amplifizierter Chondrozyten in der Kompositmatrix möglich. Es werden knorpeltypische Proteoglykane (Chondroitinsulfat, Keratansulfat, Aggregan) sowie Kollagen II gebildet. Dies konnte nach 2-, 4- und 6-wöchiger Kultivierung nachgewiesen werden.
Das in vitro erzeugte Produkt aus auf der Kompositmatrix
kultivierten Chondrozyten zeigt eine deutliche Zunahme in der
biomechanischen Stabilität im Vergleich zur Ausgangsbedingung
am Zeitpunkt des Aufbringens von Zellen auf der Matrix.
Ohne Zellen löst sich die Matrix in vitro nach ca. 14 Tagen
auf. In vivo läßt sich eine Resorption nach ca. 6-8 Wochen
beobachten (Nacktmaus, Kaninchen).
Gute Differenzierungsfähigkeit von Knochenmarkzellen zu
hyalinartigem Gewebe in vitro.
Sehr gute Differenzierung zu ossärem Gewebe beim Einbau in
Subkutangewebe von Nacktmäusen, Resorption der Matrix in vivo
erst nach 6 Wochen.
Beim Einbau in osteochondrale Defekte im Kniegelenk von
Kaninchen ist eine Integration des Zell-Matrixkonstruktes
erkennbar (Zellen waren hierbei Knochenmarkzellen oder
Chondrozyten), Differenzierung zu Knorpelgewebe ist erkennbar.
Im ossären Defektanteil zeigt sich knöcherne Integration und
Ausdifferenzierung zu neuem Knochengewebe.
Keine Entzündungsneigung durch Material im Kniegelenk
nachweisbar (kein Gelenkerguß, kein massiver Anstieg von
Entzündungszellen).
Einbau des Zell-Matrixkonstruktes in Meniskusdefekte des
Kaninchens nach vorheriger Kultivierung in vitro möglich, gute
Regeneration des Meniskusdefektes, keine Entzündungsneigung im
Kniegelenk.
Die anliegenden Figuren zeigen Vergrößerungen der
erfindungsgemäßen Kompositmatrix. Es zeigen:
Fig. 1 eine 50fache Vergrößerung einer stabileren Struktur
(oben) und einer schwächeren Struktur (unten),
Fig. 2 eine 100fache Vergrößerung der stabileren Struktur
(oben) und der schwächeren Struktur (unten),
Fig. 3 eine 200fache Vergrößerung der stabileren Struktur
(oben) und der schwächeren Struktur (unten) und
Fig. 4 in den Poren wachsende Chondrozyten bei 200facher
Vergrößerung (oben) und 1000facher Vergrößerung (unten).
Die jeweils stabilere Struktur in Fig. 1-3 wurde durch eine
höhere Gesamtkonzentration der Matrixkomponenten in der Lösung
während der Herstellung erhalten, wobei die Gesamtkonzentration
von 6,3% für die schwächere Struktur bis 9,2% für die stabilere
Struktur variiert wurde.
Die fadenartigen Strukturen in Fig. 4 deuten auf die
beginnende Produktion der extrazellulären Matrix hin.
Die nachfolgenden Beispiele sollen die vorliegende Erfindung
näher erläutern.
Eine erfindungsgemäße Kompositmatrix wurde durch Auflösen von
HYAFF und Gelatine in HFIP, Zugabe von
Natriumchloridkristallen, Formen und Trocknen der entstandenen
Paste, sowie durch Entfernen des Natriumchlorids durch
mehrfaches Spülen mit Wasser hergestellt. Nach dem Trocknen
wurde die Kompositmatrix einer gamma-Sterilisation unterzogen.
Hyaliner Gelenkknorpel (adult/embryonal) wurde nach Entnahme
sofort in RPMI-Medium transferiert und möglichst schnell
aufgearbeitet (kleiner 24 h). Hierzu wurde der Knorpel zunächst
mechanisch vom Knochen getrennt und dann mit einem Skalpell
zerkleinert (Endgröße: 1-2 mm große Knorpelstückchen). Bei 37°C
erfolgte daraufhin unter ständigem Schwenken ein enzymatischer
Andau mit Kollagenase, Hyaluronidase und DNAse. Die Enzyme
wurden in RPMI-Medium mit Hepes-Puffer, L-Glutamin und Zusatz
von Penicillin/Streptomycin (Antibiotikazusatz) resuspendiert.
Das optimierte enzymatische Dissoziationsintervall betrug 12
Stunden. Durch Zugabe von serumhaltigem Medium (RPMI mit 10%
AB-Serum oder RPMI mit 10% fetalem Rinderserum (FBS)) wurde die
enzymatische Aktivität gepuffert. Daraufhin erfolgte die
Extraktion noch verbliebener extrazellulärer Matrixstücke durch
Filtern und Zentrifugieren der Suspension, Verwerfen des
Überstandes und Resuspendieren des Zellpellets in RPMI mit 10%
AB-Serum oder RPMI mit 10% FBS. Nach einer Zellzählung folgte
eine stationäre Kultivierung und Amplifikation der Chondrozyten
für 14-21 Tage (2 mal pro Woche Mediumwechsel mit serumhaltigem
Medium). Nach Erreichen von Konfluenz erfolgte ein Passagieren
der Zellen (Entfernen des Mediums, Zugabe von 0,25% Trypsin,
nach Aufheben der Zelladhärenz Zugabe von serumhaltigem Medium,
Zentrifugation der Zellsuspension und Resuspendieren des
daraufhin gewonnenen Pellets in frischem Medium, Zellzählung
und erneutes Aussähen der Zellen). Hierbei wurde zumeist eine 1
in 4 Teilung durchgeführt, d. h. eine Kulturflasche lieferte die
Zellen für 4 neue Flaschen. Nach erneuter Konfluenz (ca. nach
2-4 Wochen) wurden die Zellen (Sekundärkultur) durch erneute
Trypsinbehandlung (siehe oben) von dem Kulturboden abgelöst und
für die Beladung der Matrizes vorbereitet.
Es können jedoch auch Zellen in Primär- und Tertiärkultur (2
Passagierungsschritte) verwendet werden.
Die Zellen wurden in DMEM Medium mit 10% FBS kultiviert und
nach Erreichen von Konfluenz als Primärkultur für die
Matrixbeladung verwendet. Die Gewinnung der adhärenten Zellen
erfolgte wiederum durch die oben beschriebene Trypsinanwendung.
Knochenmark wurde aus dem posterior superior Darmbeinkamm von 4
Monate alten weißen Neuseelandhasen gewonnen. Zu dem Aspirat
wurde "Dolbecco's modified Eagle's Medium" (DMEM) mit 10%
fetalem Rinderserum (FBS) zugegeben. Nach Bestimmung der
Zellzahl wurden 20×106 Zellen in 100 mm Zuchtschalen bei 37°C
mit 5% CO2 kultiviert. Das Medium wurde zweimal pro Woche
gewechselt bis die Zellen 80% konfluent waren. Adhärente Zellen
wurde wie oben beschrieben mit Trypsin behandelt, gezählt,
gewaschen und in DMEM auf eine Endkonzentration von
5×105 Zellen/25 µL resuspendiert.
Zur Matrixbeladung wurde das Zellpellet in wenig Medium
aufgenommen (1 mm3/1 µl). Daraufhin erfolgte das Beladen der
Matrix (steril, bisher trocken) von einer Seite. Dadurch wurde
das Entweichen von Luft, die sich in der Matrix befand,
sichergestellt (Einwirkzeit 1-5 Minuten). Daraufhin wurde durch
Erzeugen eines Unter- und Überdruckes mit einer Pipettenspitze
noch verbliebenes Medium mit hoher Zellkonzentration in die
Matrix transferiert. Es sollte eine möglichst homogene
Verteilung von Zellen in der Matrix erreicht werden. Durch die
Zugabe von Detergenzstoffen kann die Beladung erleichtert
werden.
Anschließend erfolgte eine Inkubation von 2 h im Inkubator
(37°C, 5% CO2). Dies erlaubte den Zellen, sich an der
vorliegenden Matrix zu adhärieren.
Abschließend wurde das Zell-Matrixkonstrukt mit Medium voll
überschichtet und weiterkultiviert.
Hierfür wurden unterschiedliche Kulturmedien verwendet:
RPMI mit 10% AB-Serum (Human),
RPMI mit 10% FBS oder
"Dulbecco's modified Eagle's Medium" (DMEM) mit hohem Glucosegehalt und Nähr- sowie Zusatzstoffen (ITS und Pyruvat plus Dexamethason, Ascorbinsäure und TGF betal). (Vgl. B. Johnstone in Exp. Cell Res. 238 (1998)).
RPMI mit 10% AB-Serum (Human),
RPMI mit 10% FBS oder
"Dulbecco's modified Eagle's Medium" (DMEM) mit hohem Glucosegehalt und Nähr- sowie Zusatzstoffen (ITS und Pyruvat plus Dexamethason, Ascorbinsäure und TGF betal). (Vgl. B. Johnstone in Exp. Cell Res. 238 (1998)).
Eine alternative Kultivierungsbedingung stellt die
kontinuierliche Perfusionskultur in RPMI-Medium mit 10% AB-
Serum dar.
Um die Wirksamkeit der Beladung der erfindungsgemäßen
Kompositmatrix mit Zellen zu untersuchen, wurde eine gemäß
Beispiel 1 hergestellt Kompositmatrix mit den gemäß Beispiel 2
gewonnenen Knochenmarkzellen beladen. Ein Teil der Matrizes
wurde sofort in Formalin fixiert, gewaschen und in Paraffin
eingebettet (Gruppe I). Andere beladene Matrizes (Gruppe II)
wurden für 14 Tage in einem chondrogenen Medium enthaltend DMEM
mit ITS + Vormischung (Collaborative Biomechanical Products),
Pyruvat (1 mM), Ascorbinsäure-2-phosphat (37,5 µg/ml),
Dexamethason (10-7 M) und TGF-β1 (10 ng/ml), kultiviert. Das
Medium wurde dreimal wöchentlich gewechselt.
Die Zellsuspension wurde unter leichtem Quellen des Konstrukts
in die Matrix eingebracht. Durch Toluidinblau gefärbte Bereiche
der Matrizes aus Gruppe I konnte gezeigt werden, daß eine hohe
Zellbeladung in allen Poren der Matrizes vorlag. Nach 14 Tagen
unter chondrogenen Kulturbedingungen (Gruppe II) waren die
ursprünglich weichen Zellmatrixkonstrukte gehärtet. Die
Tuluidinblau gefärbten Bereiche zeigten Zellen mit einer
ausgeprägten metachromatisch färbenden extrazellulären Matrix,
die in der gesamten Kompositmatrix vorlag. Die extrazelluläre
Matrix enthielt Kollagen II.
Wie in Beispiel 3 mit Zellen beladene Kompositmatrizes wurden
subkutan in immundefiziente Mäuse implantiert (Gruppe III).
Gleiche Matrizes wurden für 14 Tage in vitro in dem in Beispiel
3 beschriebenen chondrogenen Medium kultiviert und dann in vivo
implantiert (Gruppe IV). Die Implantate wurden nach 3 Wochen
entnommen, in Formalin fixiert, entkalkt und in paraffin
eingebettet.
Es wurden 5 µm dicke Scheiben der Proben geschnitten und mit
Toluidinblau gefärbt. Die gefärbten Bereiche wurden nach ihrer
osteochondralen Differenzierung bewertet (0 (weder Knochen noch
Knorpel in den Matrixporen) bis 4 (mehr als 75% der Poren
enthalten Knochen und/oder Knorpel)).
Nach 3 Wochen in vivo trat weder bei den Gruppe III noch bei
den Gruppe IV Implantaten eine wesentliche Größenveränderung
auf. Die für 14 Tage in vitro vorkultivierten Implantate
(Gruppe IV) erschienen jedoch qualitativ härter als die
Kompositmatrizes, die sofort nach der Beladung mit den Zellen
implantiert wurden (Gruppe III). Das Färben mit Toluidinblau
ergab eine osteochondrale Differenzierung von Zellen in den
Kompositmatrizes beider Gruppen, wobei sich die Poren mit
Knorpel und Knochen füllten. Die Kompositmatrizes der Gruppe IV
enthielten jedoch mehr Knochen und Knorpel (durchschnittliche
Bewertung = 4, verglichen mit einer Bewertung von 3 für Gruppe
III). Außerdem war der Anteil an Knochen in den Proben der
Gruppe IV größer (Verhältnis von Knochen : Knorpel : fibrösem
Gewebe in Gruppe III: 40 : 20 : 49 und in Gruppe IV: 85 : 10 : 5).
Claims (22)
1. Poröse Kompositmatrix, umfassend als Matrixbildner ein
Hyaluronsäurederivat und hydrolysiertes Kollagen.
2. Kompositmatrix nach Anspruch 1, worin die Matrixbildner
in einem Gewichtsverhältnisbereich von Hyaluronsäurederivat zu
hydrolysiertem Kollagen von 30 : 70 bis 99 : 1 vorliegen.
3. Kompositmatrix nach Anspruch 2, worin die Matrixbildner
in einem Gewichtsverhältnisbereich von Hyaluronsäurederivat zu
hydrolysiertem Kollagen von 60 : 40 bis 90 : 10, bevorzugt in einem
Gewichtsverhältnis von etwa 70 : 30 vorliegen.
4. Kompositmatrix nach einem der vorhergehenden Ansprüche,
worin das hydrolysierte Kollagen fibrilläres Kollagen oder
Gelatine ist.
5. Kompositmatrix nach einem der vorhergehenden Ansprüche,
worin das Hyaluronsäurederivat ein Hyaluronsäureester ist.
6. Kompositmatrix nach Anspruch 5, worin der
Hyaluronsäureester ein Ethyl- oder Benzylester der
Hyaluronsäure ist.
7. Kompositmatrix nach einem der vorhergehenden Ansprüche,
umfassend Poren mit einem durchschnittlichen Durchmesser im
Bereich von 50-500 µm.
8. Kompositmatrix nach Anspruch 7, worin die Poren einen
durchschnittlichen Durchmesser im Bereich von 160-250 µm
aufweisen.
9. Kompositmatrix nach Anspruch 7, worin die Poren einen
durchschnittlichen Durchmesser im Bereich von 250-500 µm
aufweisen.
10. Kompositmatrix nach Anspruch 8 oder 9, worin
zusätzlich Poren im Bereich von 50-150 µm vorhanden sind.
11. Kompositmatrix nach einem der vorhergehenden
Ansprüche, die Quervernetzungen aufweist.
12. Kompositmatrix nach einem der vorhergehenden
Ansprüche, umfassend biologisch aktive Verbindungen wie
Antibiotika, Verbindungen zur Verbesserung der Zelladhäsion,
Calciumsalze oder induktive Faktoren.
13. Kompositmatrix nach einem der vorhergehenden
Ansprüche, umfassend Chondrozyten oder mesenchymale Stamm- und
Progenitorzellen.
14. Verfahren zur Herstellung einer porösen Kompositmatrix
gemäß einem der Ansprüche 1-13, umfassend das Lösen oder
Suspendieren des Hyaluronsäurederivats und des hydrolysierten
Kollagens in einem geeigneten ersten Lösungsmittel, die Zugabe
einer pulverförmigen Verbindung, die sich in dem ersten
Lösungsmittel praktisch nicht löst, die jedoch in einem zweiten
Lösungsmittel löslich ist, in dem die Matrixbildner
Hyaluronsäurederivat und hydrolysiertes Kollagen praktisch
unlöslich sind, zu der Lösung oder Suspension, wobei die
pulverförmige Verbindung eine mittlere Korngrößenverteilung im
Bereich der gewünschten Porengröße der herzustellenden
Kompositmatrix aufweist, das Entfernen des ersten
Lösungsmittels und anschließend das Lösen der pulverförmigen
Verbindung in einem zweiten Lösungsmittel, in dem sich die
pulverförmige Verbindung löst und die Matrixbildner praktisch
nicht lösen.
15. Verfahren nach Anspruch 14, worin das erste
Lösungsmittel 1,1,1,3,3,3-Hexafluorisopropanol ist.
16. Verfahren nach Anspruch 14 oder 15, worin die
pulverförmige Verbindung ein wasserlösliches Alkali- oder
Erdalkalisalz, insbesondere ein Alkalihalogenid wie
Natriumchlorid ist.
17. Verfahren nach einem der Ansprüche 14-16, worin das
zweite Lösungsmittel Wasser ist.
18. Verfahren nach einem der Ansprüche 14-17, worin die
Kompositmatrix zusätzlich geformt, getrocknet und
gegebenenfalls sterilisiert wird.
19. Verfahren nach einem der Ansprüche 14-18, worin die
Kompositmatrix zusätzlich gegebenenfalls mit biologisch aktiven
Verbindungen und Chondrozyten oder mesenchymalen Stamm- und
Progenitorzellen beladen wird.
20. Verwendung einer Kompositmatrix nach einem der
Ansprüche 1-13 zur Generierung von differenziertem Gewebe aus
chondrozytären Zellen oder mesenchymalen Stamm- und
Progenitorzellen, wobei frisch entnommene oder amplifizierte
Zellen- zu der Kompositmatrix zugegeben und gegebenenfalls unter
chondrogenen Bedingungen kultiviert werden.
21. Verwendung nach Anspruch 20 zum Tissue Engineering von
Gewebstypen des Binde- und Stützapparates, insbesondere von
chondralem und ossärem Gewebe.
22. Verwendung nach Anspruch 20 zur in vivo
Differenzierung der Zellen zu Gewebstypen des Binde- und
Stützapparates, insbesondere zu chondralem und ossärem Gewebe.
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