DE3246873C2

DE3246873C2 - Mit immunologischer Agglutinationsreaktion arbeitendes Analysiergerät

Info

Publication number: DE3246873C2
Application number: DE3246873A
Authority: DE
Inventors: Kazua Hijikata; Yutaka Tama Tokio/Tokyo Kato; Hajime Hachioji Tokio/Tokyo Sakuma; Hidehiko Hachioji Tokio/Tokyo Yamamoto
Original assignee: Olympus Optical Co Ltd
Current assignee: Olympus Corp
Priority date: 1981-12-17
Filing date: 1982-12-17
Publication date: 1986-04-24
Also published as: JPH0216875B2; JPS58105065A; DE3246873A1; US4727033A

Abstract

Ein Analysiergerät zur Untersuchung von Blutproben durch den Nachweis von Teilchen-Agglutinationsmustern, die auf geneigten Bodenflächen von Küvetten (8) in einer Küvettenplatte (52) entstehen, hat eine Station (31) zum Herstellen verdünnter Proben, in der bestimmte Mengen an Blutzellen bzw. -körperchen und an Serum aus einem Probengefäß (23) in Verdünnungsgefäße (42A bis 42D) abgegeben werden, welche auf einer auf einem umlaufenden Endlosband (37) befestigten Trägerplatte (39) angeordnet sind, und eine im voraus festgelegte Menge eines Verdünnungsmittels in die Verdünnungsgefäße (42A bis 42D) zugegeben wird, um verdünnte Blutkörperchen- und Serumproben herzustellen, ferner eine Abgabestation (70) für verdünnte Proben zum Abgeben bestimmter Mengen an verdünnten Blutkörperchen- und Serumproben aus den Verdünnungsgefäßen (42A bis 42D) selektiv entsprechend den durchzuführenden Bestimmungen in eine regelmäßige Anordnung von Küvetten (8) der Küvettenplatte (52), und eine Reagensabgabestation (60) zum Beschicken der Küvetten (8) mit bestimmten Reagentien. Die mit den verdünnten Blutkörperchen- und Serumproben beschickte Küvettenplatte (52) wird zumindest annähernd erschütterungsfrei in einer in einer vertikalen Ebene angeordneten Reaktionsbahn transportiert, in welcher die auf den Küvettenboden entstandenen Teilchenmuster photoelektrisch nachgewiesen werden.

Description

Die Erfindung betrifft ein mit immunologischer Agglutinationsreaktion arbeitendes Analyrergerät mit einer Zuführvorrichtung für Blutprobengefäße, einer Einrichtung zum Herstellen mehrerer verdünnter Blutproben in Verdünnungsgefäßen aus den einzelnen Blutproben, einer Zuführvorrichtung zum Zuführer von Küvettenpiatten zu einer Einfüllstation, einer Einrichtung zum Einfüllen der verdünnten Blutproben in die reihenweise angeordneten Küvetten der Küvettenplatten, einer Einrichtung zum Eingeben von Reagentien in die Küvetten, einer Transportvorrichtung zum Fördern der Küvettenplatten längs einer Reaktionsbahn, die insbesondere mehrere in einer Vertikalebene verlaufende teils horizontale und teils vertikale Reaktionsbahnabschnitte aufweist, einer an der Reaktionsbahn angeordneten photoelektrischen Meßeinrichtung für die Agglutinationsreaktion und einer am Ende der Reaktionsbahn angeordneten Austragsvorrichtung für die Küvettenplatten.

Ein solches Analysiergerät ist bekannt (ältere nachveröffentlichte DE-OS 32 46 274). Das automatisierte Analysiergerät dient der Untersuchung von Blutproben, wobei aus jeder Blutprobe eine Serumprobe und eine Blutkörperchenprobe gewonnen werden, die getrennt ir/ vier Verdünnungsgefäße eingefüllt werden. Aus diesen werden an der Einfüllstation verdünnte Proben an eine zwölf Küvetten aufweisende Küvettenreihe der zugeführten Küvettenplatten abgegeben. Dieses geschieht mittels vier Einfüllpipetten, die den vier Verdünnungsgefäßen zugeordnet sind, die in einer der Transportrichtung entsprechenden Reihe hintereinander in die Einfüllstation bewegt werden. Die Einfüllpipetten sind dementsprechend ebenfalls in einer Längsreihe angeordnet, lassen sich in senkrechter Richtung auf und nieder bewegen sowie in Querrichtung verlagern, um aus einer auf die Emfüllpipetten ausgerichteten Stellung in eine auf die Küvetten ausgerichtete Stellung bewegt zu werden, wobei die bzw. jede Küvettenreihe sich gleichfalls in der Längsrichtung erstreckt.

Um verschiedene Küvettenreihen derselben Küvettenplatte mit verdünnten Proben beschicken zu können, müssen die an einer gemeinsamen Tragplatte angeordneten Pipetten unterschiedlich weit in Querrichtung bewegt bzw. gesteuert werden. Außerdem müssen aber die Pipetten auch nach der Querausrichtung auf eine bestimmte Küvettenreihe in Längsrichtung längs dieser Küvettenreihe bewegt werden, damit die Küvetten gruppenweise nacheinander beschickt werden können. Diese Relativbewegung zwischen der Küvettenreihe und den Pipetten läßt sich nicht durch Vorschub der Küvettenplatten mittels ihrer Transportvorrichtung erreichen, weil dann zum Befüllen der nächsten Küvettenreihe derselben Küvettenplatte diese wieder zurückbewegt werden müßte.

Aus diesen Gründen ist die Einrichtung zum Einfüllen der verdünnten Blutproben hinsichtlich ihrer Ausbildung und Betätigung bzw. Steuerung vergleichsweise kompliziert. Das wirkt sich nachteilig auf die für das Oberführen der Proben aus den Verdünnungsgefäßen in die Küvetten erforderliche Zeitdauer und damit auch

auf die Leistung des AnsJysiergerätes aus. Ebenfalls sind Ausbildung und Betätigung der Einfülleinrichtung der Forderung nach einer kompakten, Stellfläche einsparenden Bauweise des Analysiergerätes abträglich, obwohl die beim bekannten Analysiergerät vorgesehene Anordnung von horizontalen und vertikalen Reaktionsbahnabschnitten in einer Vertikalebene in diesem Zusammenhang besonders vorteilhaft ist.

Dementsprechend liegt der Erfindung die Aufgabe zugrunde, bei einem automatisierten Analysiergerät der eingangs genannten Art die Einrichtung zum Einfüllen der verdünnten Blutproben in die Küvetten bei platzsparender Bauweise so auszubilden, daß auch bei einer Vielzahl verschiedener Untersuchungen, die gegebenenfalls auch an selektiv verschiedenen Blutbestandteilen durchzuführen sind, zuverlässig und schnell gearbeitet werden kann, so daß sich die Leistungsfähigkeit des Analysiergerätes erhöht

Diese Aufgabe wird erfindungsgemäß dadurch gelöst, daß die Einrichtung zum Einfüllen der verdünnten Blutproben in die Küvetten einen verschwenkbaren sowie linear und senkrecht bewegbaren Probenabgabearm aufweist, an dei.. mehrere Pipetten zum gleichzeitigen Aufsaugen der verdünnten Blutkörperchen- und Serumproben aus den Verdünnungsgefäßen und zum Abgeben der Proben in die Küvetten der Küvettenplatte angeordnet sind, wobei in der Einfüllstation die Küvettenreihen rechtwinklig zu den in einer Reihe angeordneten Verdünnungsgefäßen ausgerichtet sind.

Durch diese Maßnahmen vereinfachen sich die Bewegungsschritte der Pipetten, da durch die Querbwegbarkeit der Pipetten sämtliche Küvetten der entsprechend ausgerichteten Küvettenreihe erreichbar sind Dabei werden die querausgerichteten Küvettenreihen nach dem Beschicken einer Reihe mit den Proben mittels der Transportvorrichtung für die Küvettenplatten jeweils um einen Transportschritt vorbewegt, was problemlos und ohne besonderen Aufwand geschehen kann. Es ist daher ersichtlich, daß mit dem e^rradungsgemäßen Anafysiergerät besonders schnell und trotzdem zuverlässig gearbeitet werden kann. Zweckmäßige Ausgestaltungen und Weiterbildungen ergeben sich aus den Unteransprüchen. Ausführungsbeispiele der Erfindung sind aus der folgenden Beschreibung eines gattungsgemäßen Analysiergeräts, die durch schematische Zeichnungen näher erläutert ist, ersichtlich. Es zeigt

F i g. 1 eine vereinfachte Darstellung der aufeinanderfolgender Arbeitsschritte eines Analysierverfahrens für ein mit immunologischer Agglutinationsreaktion arbeitendes Analysiergerät, F i g. 2 eine Draufsicht auf eine Ausführungsform des Analysiergerätes, F i g. 3 eine vereinfachte Darstellung einer Reagensabgabevorrichtung des Analysiergerätes gemäß F i g. 2, F i g. 4 eine Schrägansicht einer Probenabgabevorrichtung,

F i g. 5 einen Querschnitt durch eine Ausführungsform einer Kupplung zwischen einem Endlosband und einer Proben-Trägerplatte,

F i g. 6 eine vereinfachte Darstellung einer Küvettenplatten-Übergabevorrichtung, F i g. 7 eine vereinfachte Ansicht eines Küvettenplatten-Abwärtsförderers, F i g. 8 eine Schrägansicht einer Reaktionsbahnsektion und einer Photometrierstation, F i g. 9 eine Schrägansicht einer anderen Ausführungsform der in F i g. 8 dargestellten Reaktionsbahnsektion, F i g. 10 eine vereinfachte Darstellung des Aufbaus der in F i g. 6 und 8 dargestellten Photometrierjtation, F i g.! 1A und 11B grafische Darstellungen der Ausgangssignale der in F i g. 10 dargestellten Lichtempfangsvorrichtung,

Fig. 12 ein Flußdiagramm der aufeinanderfolgenden Abläufe beim Nachweis eines Agglutinationsmusters anhand e<nes Ausgangssignals der Lichtempfangsvorrichtung und

F i g. 13 ein Flußdiagramm aufeinanderfolgender Abläufe c js in F i g. 2 dargestellten Analysiergerätes, im Analysiergerät gemäß der Erfindung wird eine mehrere Reaktionsgefäße bzw. Küvetten aufweisende Küvettenplatte in bezug auf Proben- und Reagensabgabevorrichtungen und relativ zu einer Photometrierstation bewegt und zumindest annähernd erschütterungsfrei entlang einer Reaktionsbahn in waagerechter und senkrechter Richtung transportiert, wobei die Reaktionsbahn aus mehreren in einer vertikalen Ebene angeordneten Sektionen zusammengesetzt ist Nach Ablauf einer im voraus festgelegten Zeit ab der Proben- und Reagensabgabe wird mit der Photometriervorrichtung ein Agglutinationsmuster nachgewiesen, das sich auf einer Bodenfläche des erschütterungsfrei transportierten Reaktionsgefäßes ausgebildet hat.

Beim herkömmlichen Mikrotitrationsverfahren ist es notwendig, daß das Reaktionsgefäß oder die Küvette nach der Proben- und iv'eagensabgabe völlig ruhigsteht, damit die Teilchen in der Küvette sedimentieren können. Um die vorstehend angegebenen Arbeitsgänge automatisieren zu können, müssen daher die Proben- und Reagensabgabevorrichtungen und die Errichtung zur Agglutinationsprüfung an der ortsfest angeordneten Küvette vorbeibewegt werden — das Gerät bekommt somit gr"3« Abmessungen und wird kompliziert.

Die Anmelderin hat durch Versuche festgestellt, daß, wenn die Küvettenplatte mit derselben Geschwindigkeit transportiert wird wie das herkömmliche biochemische Analysiergerät, du:· Ausbildung des durch fntürlichc Sedimentation hervorgerufenen Teilchen-Agglutinationsmusters durch eine Erschütterung oder Bewegung der Küvettenplatte nicht beeinflußt wird.

Es ist somit möglich, auf der Bodenfiäche der Küvettenplatte ein genaues Agglutinationsmuster entstehen zu lassen. Daher kann die für die Benutzung im herkömmlichen biochemischen /Analysiergerät vorgesehne bewegliche Küvette in der immunologischen Agglutinationsreaktion als im wesentlichen stillstehend bzw. erschütterungsfrei angenommen werden. Weil ferner auf einer Küvettenplatte eine Vielzahl von Küvetten angeordnet sind, wird die Fördervorrichtung äußerst einfach, und es wird auch eine hohe Leistung erzielt. Weil die Küvettenplatte entlang einer Reaktionsbahn transportiert wird, die sich aus mehreren in einer vertikalen Ebene angeordneten Sektionen zusammensetzt, ist es insbesondere möglich, die Abmessungen des Analysiergerätes klein zu halten.

Weil außerdem die jeweiligen Proben in mehrere Küvetten eingegeben werden, um mehrere Agglutinationsmuster auszubilden, und »synthetisch« beurteilt werden, ist die Durchführung einer äußerst exakten Untersuchung möglich. Das Ar.alysiergerät gemäß der Erfindung wird beispielsweise in einem Zentral-Blutlabor einge-

setzt, wo eine Fehlbestimmung schwerwiegende und unmittelbare Folgen hat. Es ist daher sehr wichtig, für eine große Untersuchungsgenauigkeit zu sorgen.

Gemäß Fig. 1 wird das einem Patienten 1 entnommene vollständige Blut BL in ein Prüfrohr 2 gegeben, das nach Zugabe einer gerinnungshemmenden Substanz, z. B. Natriumeitrat, in eine bekannte Zentrifuge eignesetzt wird, in der das vollständige Blut BL in ein Serum S und (rote) Blutzellen bzw. Blutkörperchen R getrennt wird. Die Blutkörperchen R werden dann mit einer von einer Mikrospitze gebildeten Abgabevorrichtung 3-1 aufgesaugt und in ein Probengefäß 4-1 abgegeben, in welches auch mit einer Abgabevorrichtung 5-1 aus einem Gefäß 6-1 ein Verdünnungsmittel D, z. B. Kochslazlösung, eingegeben wird. Auf diese Weise ist im Probengefäß 4-1 eine Blutkörperchensuspension RD enthalten. Aus dem Prüfrohr 2 wird das Serum S mit einer Abgabevorrichtung 3-2 in Probengefäße 4-2,4-3 und 4-4 agegeben, in die mit Abgabevorrichtungen 5-2,5-3 und 5-4 auch das Verdünnungsmittel D eingegegeben wird, um ein verdünntes Serum SD herzustellen.

Danach werden die Blutkörperchensuspension RD und das verdünnte Serum SD aus den Probengefäßen 4-1 bis 4-4 quantitativ in Reaktionsgefäße bzw. Küvetten8-1 bis 8-12 (Kanäle Nr. 1 bis 12) mit Abgabevorrichtungen 7-1 bis 7-4 abgegeben. Die Küvetten 8-1 bis 8-12 weisen je eine kegelige Bodenfläche auf. In die Küvetten 8-1 bis 8-12 werden mittels weiterer Abgabevorrichtungen 9-1 bis 9-12 aus ersten Reagensbehältern 10-1 bis 10-12 zusätzlich im voraus festgelegte Reagentien quantitativ eingegeben, die den durchzuführenden Bestimmungen entsprechen. Ferner werden die Küvetten 8-1 und 8-7 mittels noch anderer Abgabevorrichtungen 11-1 und 11-2 aus zweiten Reagensbehältern 12-1 und 12-2 mit im voraus festgelegten Reagentien quantitativ beschickt, so daß in Hen Küvetten 8-1 hkft-12 erforderliche Prnhenlösnngen entstehen

Mit anderen Worten, in die Küvette 8-1 werden mit der Abgabevorrichtung 7-1 die Blutkörperchensuspension RD aus dem Probengefäß 4-1, mit der Abgabevorrichtung 9-1 ein (mit Phosphat-Puffer verdünntes) Anti-D-Serum D-S aus dem ersten Reagensbehälter 10-1, und mit der Abgabevorrichtung 11-1 ein (mit Phosphat-Puffer verdünntes) Bromelin V-S aus dem zweiten Reagensbehälter 12-1 eingegeben, so daß eine Probenlösung R-D-Si entsteht.

In die Küvette 8-2 werden mit der Abgabevorrichtung 7-2 die Blutkörperchensuspension RD aus dem Probengefäß 4-1 und mit der Abgabevorrichtung 9-2 das (mit Phosphat-Puffer verdünnte) Bromelin V-S aus dem ersten Reagensbehälter 10-2 eingegeben, so daß eine Probenlösung R-V-S2 entsteht.

In die Küvette 8-3 werden mit der Abgabevorrichtung 7-3 die Blutkörperchensuspension RD aus dem Probengefäß 4-1 und mit der Abgabevorrichtung 9-3 ein (mit Kochsalzlösung verdünntes) Anti-A-Serum A-S aus dem ersten Reagensbehälter 10-3 eingegeben, so daß eine Probenlösung R-A-S3 entsteht.

In die Küvette 8-4 werden mit der Abgabevorrichtung 7-4 die BIutkörperchensusp?nsion RD aus dem Probengefäß 4-1 und mit der Abgabevorrichtung ?/-4 ein (mit Kochsalzlösung verdünntes) Anti-B-Serum B-S aus dem ersten Reagensbehälter 10-4 eingegeben, so daß eine Probenlösung R-A-S4 entsteht.

In die Küvette 8-5 werden mit der Abgabevorrichtung 7-5 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-2 und mit der Abgabevorrichtung 9-5 ein (mit Kochsalzlösung verdünntes) Reagens für Blutkörperchen des Α-Typs A-R aus dem ersten Reagensbehälter 10-5 eingegeben, so daß eine Probenlösung A-R-Si entsteht.

In die Küvette 8-6 werden mit der Abgabevorrichtung 7-6 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-2 und mit der Abgabevorrichtung 9-6 ein (mit Kochsalzlösung verdünntes) Reagens für Blutkörperchen des B-Typs B-R aus dem ersten Reagensbehälter 10-6 eingegeben, so daß eine Probenlösung B-R-S2 entsteht.
In die Küvette 8-7 werden mit der Abgabevorrichtung 7-7 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-2, mit der Abgabevorrichtung 9-7 ein (mit Kochsalzlösung verdünntes) Reagens für Blutkörperchen des A-Typs A-R aus dem ersten Reagensbehälter 10-7 und mit der Abgabevorrichtung 11-2 ein Blutkörperchen-Reagens R-S aus dem zweiten Reagensbehälter 12-2 eingegeben, so daß eine Probenlösung A-R-S3 entsteht

In die Küvette 8-8 werden mit der Abgabevorrichtung 7-8 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-2 und mit der Abgabevorrichtung 9-8 ein (mit Kochsalzlösung verdünntes) Reagens für Blutkörperchen des B-Typs B-R aus dem ersten Reagensbehälter 10-8 eingegeben, so daß eine Probenlösung B-R-S4 entsteht

In die Küvette 8-9 werden mit der Abgabevorrichtung 7-9 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-3 und mit der Abgabevorrichtung 9-9 mit einem R-PHA-Puffer aus dem ersten Reagensbehälter 10-9 sensibilisierte Blutkörperchen R-R eingegeben, so daß eine Probeniösung R-R-S5 entsteht

In die Küvette 8-10 werden das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-3 mit der Abgabevorrichtung 7-10 und mit ösr Abgabevorrichtung 9-10 mit einem R-PHA-Puffer aus dem ersten Reagensbehälter ls-10 sensibilisierte Blutkörperchen R-R eingegeben, so daß eine Probenlösung R-R-S6 entsteht

In die Küvette 8-11 werden mit der Abgabevorrichtung 7-11 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-4 und mit der Abgabevorrichtung 9-11 mit einem T-PHA-Puffer aus dem ersten Reagensbehälter 10-11 sensibilisierte Blutkörperchen T-R eingegeben, so daß eine Probeniösung T-R-S7 entsteht

In die Küvette 8-12 werden mit der Abgabevorrichtung 7-12 das verdünnte Serum SD aus dem Probengefäß 4-4 und mit der Abgabevorrichtung 9-12 mit einem T-PHA-Puffer aus dem ersten Reagensbehälter 10-12 sensibilisierte Blutkörperchen T-R eingegeben, so daß eine ProbeniösungT-R-Se entsteht

Eine Gegenüberstellung der Probenlösungen in den Küvetten 8-1 bis 8-12 und der von den Agglutinationsmustern dieser Probenlösungen ausgehenden Bestimmungen sieht folgendermaßen aus.

Bestimmung

Küvette
(Kanal Nr.)

Erstes Reagens

Probe

Zweites Reagens

Probenlösung

Blutgruppe
RH

8-1

8-2

Blutgruppe 8-3
ABO

8-4

8-5

8-6

Antikörper
Suchtest

8-7

HBs-Antigen 8-9

Syphilis-Antikörper

Anti-D-Serum (verdünnt mit Phosphat-Puffer) D-S

Bromelin (verdünnt mit Phosphat-Puffer) V-S

Anti-A-Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung) A-S

Anti-B-Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung) B-S

Anti-A-Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung) A-R

Anti-B-Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung) B-R

Anti-A-Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung) A-R

Anti-B-Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung) B-R

Blutkörperchen sensibilisiert mit R-PHA

R-R

8-10 10

8-11 11

8-12 12

Blutkörperchen sensibilisiert mit R-PHA
R-R

Blutkörperchen sensibilisiert mit T-PHA
T-R

Blutsuspension (verdünnt mit Kochsalzlösung)

Blutsuspension (verdünnt mi! Kochsalzlösung)

Blutsuspension (verdünnt mit Kochsalzlösung)

verdünntes Serum (verdünnt mit Kochsalzlösung)

verdünntes Serum (R-PHA-Puffer)

verdünntes Serum (T-PHA-Puffer)

Bromelin
(verdünnt mit
Phosphat-Puffer)

Blutkörperchen-Reagens

R-D-S,

R-V-S₂

R-A-S₃

R-B-S₄

A-R-S,

B-R-S₂

A-R-S₃

B-R-S₄

R-R-S₅

R-R-S₆

T-R-S₇

T-R-S₈

Beim vorstehend beschriebenen Beispiel werden die Küvetten 8-1 bis 8-12 nach Beschickung mit dem verdünnten Serum oder der Blutsuspension und mit dem Reagens geschüttelt Wenn sich im Falle der Beschickung mit dem verdünnten Serum oder der Blutkörperchensuspension und mit dem Reagens beide Lösungen ausreichend miteinander vermischen, ist das Schütteln der Küvette entbehrlich. Nach dem Schütteln zur Vermischung der eingegebenen Reaktionspartner (einschließlich einem Schütteln der Küvette zwischen der Abgabe der einzelnen Lösungen eta), muß die mehrere Küvetten aufweisende Küvettenplatte erschütterungsfrei entlang der Reaktionsbahn transportiert werden, so daß die Prüfflüssigkeiten keine heftige Bewegung erfahren und ein stetiger Verlauf der Reaktion ermöglicht wird. Während der Reaktion erfolgt eine natürliche Sedimentation der

Blutkörperchen. Die Reaktionszeit wird unter Berücksichtigung des Verdünnungsgrades, der verdünnten Menge an Blutkörperchen oder Serum und der Reagensmenge sowie weiterer ,-!eaktionen zwischen ihnen festgelegt und beträgt z. B. etwa 10 bis 60 Minuten.

Unter der Annahme einer Blutprobe des Α-Typs agglutinieren die Slutkörperchen in der Probenlösung R-A-S3, der das Anti-A-Serum A-S zugegeben worden ist, miteinander und sedimentieren gleichmäßig auf der geneigten Bodenfläche der Küvette 8-3. In der Probenlösung R-B-S₄, die das Anti-B-Serum B-S enthält, agglutinieren die Blutkörperchen dagegen nicht, rollen auf der geneigten Bodenfläche der Küvette 8-4 nach unten und sammeln sie*: in der tiefsten Mitte der Bodenfläche an. Bei einer Agglutination bilden die sich auf den geneigten Küvettenboden niedergeschlagenden Blutkörperchen gemäß F i g. 1 ein gleichmäßiges Niederschlagsmuster, während sie bei nicht eintretender Agglutination vom geneigten Küvettenboden wegrollen, sich in der Bodenmitte ansammeln und ein »inlegriertes« oder »geschlossenes« Muster bilden. Di« se Muster können zur Bestimmung der Blutgruppe photoelektrisch erfaßt werden.

Die Küvette 8-6 zeigt keine Agglutination, sondern ein geschlossenes Muster in der Mitte des Küvettenbodens, wogegen in der Küvette 8-5 eine Agglutination eingetreten ist und sich daher auf die Bodenfläche ein gleichmäßiges Muster niedergeschlagen hat. Durch photoelektrisches Prüfen dieser Muster ist ebenfalls eine Bestimmung der Blutgruppe möglich. Die vorstehend beschriebene Bestimmung wird allgemein auch als indirekte Bestimmung bezeichnet. Wenn sowohl die direkte als auch die indirekte Bestimmung durchgeführt werden, läßt sich die Blutgruppe der Blutprobe sehr exakt bestimmen. Bei Verwendung der Küvettenplatte, auf der eine Vielzahl von Küvetten in Matrixform angeordnet sind, wird die Küvettenplatte nach Prüfung der auf den Böden aller Küvetten ausgebildeten Muster aus der Reaktionsbahn herausgenommen.

Bei dem in F i g. 1 dargestellten Beispiel werden die Reagentien A-S, B-S, A-R und B-R in die Küvetten eingegeben, nachdem diese mit den Blutkörperchen- und Serumproben beschickt worden sind. Die Reihenfolge der Beschickung mit diesen Reagentien und Proben kann umgekehrt werden, die Reagentien und Proben können aber auch gleichzeitig eingegeben werden.

Da bei dem vorstehend beschriebenen Blutgruppen-Bestimmungsverfahren die Küvetten ruhiggehalten werden und die Agglutinationsmuster, also das gleichmäßige Niederschlagsmuster und das geschlossene Muster, sich durch natürliche Sedimentation der Blutkörperchen ausbilden, kann die aufgrund inkompletter Antikörper schwach agglutinierende Blutgruppe sehr exakt festgestellt werden. Beim bekannten Verfahren dagegen kann es geschehen, daß die agglutinierten Blutkörperchen durch Erschütterung der Küvette voneinander gelöst werden.

Ferner reicht beim vorstehend beschriebenen Verfahren eine Blutkörperchensuspension aus, die eine sehr niedrige Konzentration von z. B. 0,5 bis 2% hat, und eine kleine Suspensionsmenge von 5 bis 30 μΐ ist schon ausreichend. Die Menge der Blutprobe kann daher sehr klein gehalten werden. Beim bekannten Verfahren dagegen wird von einer 2- bis 5%igen Blutzellen- oder Blutkörperchensuspension eine große Menge benötigt. Das vorstehend beschriebene Verfahren ist nicht auf die Bestimmung der Blutgruppen des ABO-Systems beschränkt, sondern kann gleichermaßen zur Bestimmung anderer Blutgruppen und zur Durchführung verschiedener immunologischer Untersuchungen angewendet werden.

Das in F i g. 2 dargestellte Analysiergerät hat eine Proben-Eingabevorrichtung 20 mit drei Gestelikassetten bzw. Kassettentabletts 21, in denen je 12 Probengefäß-Gestelle 22 angeordnet sind. Jedes Gestell 22 nimmt zehn Probengefäße 23 auf. Ein Kassettentablett 21 enthält daher 120 Probengefäße 23. Jedes Probengefäß 23 enthält eine zentrifugierte Blutprobe und trägt auf einer Seitenwand einen Strichkode mit Probendaten wie z. B. Patientennummer, die durchzuführenden Bestimmungen, Blutgruppe usw.

Das Kassettentable". 21 ist entlang einer Proben-Führungsbahn 24 in der Eingabevorrichtung 20 in der mit einem Pfeil A angegebenen Richtung schrittweise mit einer bstimmten Schrittlänge fortbewegbar. Wenn ein Gestell 22 im Kassettentablett 21 eine Proben-Zuführbahn 25 erreicht, ist es mittels einer nicht dargestellten Klauen-Vorschubvorrichtung der Eingabevorrichtung 20 in der mit einem Pfeil B angegebenen Richtung bewegbar und wird an ein Endlosband 27 abgegeben, das von Antriebswellen 26Λ und 26S mit einer bestimmten Geschwindigkeit antreibbar ist. Auf derr Endlosband 27 wird das Gestell 22 mittels einer Gestell-Positioniervorrichtung 28 zu einer Proben-Feststellstation 29 transportiert, die eine Proben-Feststellvorrichtung 30 aufweist. Zuerst wird der Strichkode auf dem ersten Probengefäß 23-1 gelesen und dann das Gestell 22 mittels der Positioniervorrichtung 28 schrittweise so weiterbewegt, daß das nächste Probegefäß 23-2 vor der Proben-Feststellvorrichtung 30 in Stellung kommt, die daraufhin den Strichkode auf dem Probengefäß 23-2 liest. Die Gestell-Positioniervorrichtung 28 kann so ausgebildet sein, daß mit einem Elektromagneten verbundene Klauen die Bewegung des Gestells 22 gegen eine Bewegungskraft in der Pfeilrichtung B oder synchron mit dem Endlosband 27 stoppt Auf diese Weise werden Probendaten nacheinander aus den Strichkodes an den Probengefäßen 23-1 bis 23-10 im Gestell 22 ausgelesen.

Nachdem die Probendaten gelesen worden sind, werden die Probengefäße 23 nacheinander zu einer Probenabgabestation 31 weitertransportiert, in der beispielsweise die Blutkörperchen und das Serum im Probengefäß 23-1 mittels einer Blutkörperchen-Pipette 33 und einer Serum-Pipette 34, welche in einem Endabschnitt eines Prebenabgabearms 32 angeordnet sind, quantitativ in die Abgabevorrichtungen 3-1 und 3-2 angesaugt werden.

Diese Ansaugung geschieht in der Weise, daß der Probenabgabearm 32 in der mit einem Pfeil C angegebenen Richtung so verstellt wird, daß die Pipetten 33 und 34 über dem Probengefäß 23-1 in der Probenabgabestation 31 in Stellung kommen, und dann nach unten bewegt wird, um die vorderen Enden der Pipetten 33 und 34 in die Blutkörperchen bzw. in das Serum einzutauchen. Beim gezeigten Beispiel ist am vorderen Ende des Probenabgabearms 32 eine Elektrode 35 so befestigt, daß sie zusammen mit den Pipetten 33 und 34 in das Probengefäß 23-1 eintaucht, und die Pipetten 33 und 34 sind aus einem elektrisch leitfähigen Werkstoff hergestellt Daher wird ein Flüssigkeitsspiegel oder eine Grenzfläche zwischen dem Serum und den Blutkörperchen aufgrund einer Änderung der Impedanz zwischen diesen Elektroden festgestellt Somit ist es möglich, die Abwärtsbewegung des Probenabgabearms 32 zu steuern und festzustellen, ob das jeweilige Probengefäß 23 Prüfflüssigkeit enthält

Beim gezeigten Beispiel ist der Abstand zwischen der Probenfeststellstation 29 und der Probenabgabestation

31 gleich dem Abstand zwischen den Probengefäßen 23-1 und 23-5, ist aber nicht auf diese Größe beschränkt.
Nach riem Aufsaugen einer Menge an Serum und Blutkörperchen wird der Probenabgabearm 32 nach oben

und dann in der dem Pfeil C entgegengesetzten Richtung bewegt, um die Blutkörperchen-Pipette 33 und die Serum-Pipette 34 über einer Proben-Führunjjsbahn 36 in Stellung zu bringen. In der Proben-Führungsbahn 36 ist ein aus rostfreiem Stahl hergestelltes Endlosband 37 mittels zweckdienlicher Antriebswellen 38/4 und 38öin der mit einem Pfeil D angegebenen Richtung intermittierend bzw. schrittweise bewegbar. Am Endlosband 37 sind mehrere Proben-Trägerplatten 39 befestigt. Auf jeder Trägerplatte 39 ist ein erster Halter 4 \A und in etwas Abstand davon, mit gleichmäßigen Zwischenabständen in der Pfeilrichtung D, drei weitere Halter 415,41Cund 41D angeordnet. In die Halter 4M bis 41Dsind zugehörige Proben-Verdünnungsgefäße 42/4,425. 42Cbzw. 42D wegnehmbar eingesetzt. Das Verdünnungsgefäß 42A ist zur Beschickung mit den Blutkörperchen mittels der Abgabevorrichtung 3-1 vorgesehen und erhält gleichzeitig von der Abgabevorrichtung 5-1 aus einem nicht dargestellten Behälter eine Kochsalzlösung, so daß in ihm eine im voraus festgelegte Menge der Blutkörperchensuspension RD hergestellt v/ird. Sodann bringt das Endlosband 37 das Verdünngungsgefäß 425 unter dem Probenabgabearm 32 in Stellung, in das etwa ein Drittel der Serumprobe aus der Abgabevorrichtung 3-2 und gleichzeitig mit der Abgabevorrichtung 5-2 die Kochsalzlösung abgegeben werden, so daß in ihm eine im vorau« festgelegte Menge des verdünnten Serums SD hergestellt wird. Auf dieselbe Weise werden die Verdünnungsgefäße 42Cund 42D mittels der Pipette 34 mit der Serumprobe und aus den Abgabevorrichtungen 5-3 und 5-4 mit einer vorbestimmter. Menge Kochsalzlösung beschickt, so daß in ihnen das verdünnte Serum SD hergestellt wird.

Sodann *ird der Probeabgabearm 32 in der dem Pfeil D entgegengesetzten Richtung zu einer Waschvorrichtung 43 bewegt, die in der Nähe des Umfangs der Proben-Führungsbahn 36 angeordnet ist. Nach den; Auswaschen der Pipetten 33 und 34 und der Elektrode 35 in dieser Waschstation wird der Probenabgabearm 32 in die F i g. 2 gezeichnete Ausgangsstellung zurückgestellt.

Die vorstehend beschriebenen Arbeitsgänge werden für alle Probengefäße 23 in der Probenabgabestation 31 durchgeführt. Es ist somit möglich, in den auf der Trägerplatte 39 angeordneten Verdünnungsgefäßen 42/4 bis 42D die Blutkörperchensuspension RD und das verdünnte Serum SD je mit einem im voraus festgelegten Verdünnungsgrad herzustellen. Beim gezeigten Beispiel sind für das Gestell 22 als Transportzeit auf dem Endlosband 27 15 Sekunden angenommen. Die Abgabe- und Verdünnungsvorgänge für die Proben in den Probengefäßen 23-1 bis 23-10 eines Gestells 22 sind daher nach 15 mal 10= 150 Sekunden beendet.

Wenn beim gezeigten Beispiel die Abgabe der Blutkörperchenprobe so vorgenommen wird, daß zuerst die Blutkörperchenprobe und dann nach einer gewissen Zeit die Kochsalzlösung eingegeben wird, setzen sich die Blutkörperchen auf dem Küvettenboden ab, und es ist somit ein gutes Vermischen nicht möglich. Es ist daher von Vorteil, wenn die Abgabe der Blutzellenprobe während der Abgabezeit der Kochsalzlösung beendet wird. Dagegen kann die Abgabe der Kochsalzlösung für die Serumprobe an beliebiger Stelle zwischen der Serumabgabestation und einer nachfolgend näher beschriebenen Probenaufsaugstation 45 vorgenommen werden.

Außerdem wird beim gezeigten Beispiel die Probe nacheinander in die Verdünnungsgefäße 42/4 bis 42D synchron mit der Bewegung des Endlosbandes 37 abgegeben. Es ist jedoch auch möglich, den Probenabgabearm

32 entlang der Proben-Führungsbahn 36 so zu bewegen, daß die Pipetten 33 und 34 nacheinander über den Verdünnungsgefäßen 42Λ bis 42D in Stellung kommen. Es ist außerdem möglich, die Probenabgabe durch Aufeinanderabstimmen der Bewegungen des Probenabgabearms 32 und des Endlosbandes 37 durchzuführen.

Nach Abgabe der Proben aus allen Probengefäßen 23-1 bis 23-10 des Gestells 22 wird das Endlosband 27 in umgekehrter Richtung angetrieben und das Gestell 22 in die Ausgangsstellung im Kassettentablett 21 zurückgegeben. Sodann wird das Kassettentablett 21 einen Schritt in der Pfeilrichtung A verstellt und das nächste Gxstel¹ 22 in die Proben-Führungsbahn 25 zugeführt, woraufhin die vorstehend beschriebenen Arbeitsgänge für die nächsten Probengefäße 23-1 bis 23-10 wiederholt werden.

Durch Betätigen des Endlosbandes 37 wird dann die Trägerplatte 39 mit den Verdünnungsgefäßen 42/4 bis 42D, welche die Blutkörperchensuspencion RD und das verdünnte Serum SD enthalten, in der Probenaufsaugstation 45 in Stellung gebracht.

Gemäß F i g. 2 enthält eine Küvettenplatte 52 12 mal 10 = 120 Küvetten 8 und weist in einer Seitenfläche über zehn Küvettenreihen Positionierrasten auf. Wie im Zusammenhang mit F i g. 1 erläutert, werden für eine Probe zwölf Küvetten (Kanäle) benutzt; daher ist es möglich, in einer Küvett^nplatte 52 die Probenlösung für zehn Proben herzustellen.

Jede Küvette 8 weist einen kegelförmigen Boden und mehrere regelmäßig ausgebildete konzentrische Stufen auf, um auf dieser geneigten Bodenfläche eine stabile Grundschicht von sedimentierten Teilchen zu bilden. Außerdem kann die geneigte Bodenfläche im Querschnitt sägezahnfönnig sein. Bei gezeigten Beispiel ist es möglich, die regelmäßigen Stufen entlang der geneigten Bodenfläche mit gleichbleibender, zunehmender oder abnehmender Höhe auszubilden, wobei die Größe der sedimentierenden Teilchen zu berücksichtigen ist. Ferner ist die Querschnittsgestalt nicht auf die Sägezahnform beschränkt; sie kann auch konkav oder konvex sein. Außerdem ist es möglich, auf der geneigten Bodenfläche nur Teilstufen auszubilden. Auch ist die Gestalt der Bodenfläche nicht auf die kegelige Form beschränkt; sie kann auch kegelstumpfförmig sein. Wenn somit in der geneigten Fläche regelmäßige Stufen ausgebildet sind, bildet sich die stabile Grundschicht der sedimentierten Teilchen auf der Stufe aus. Tritt daher eine Agglutinationsreaktion ein, schlagen sich die sedimentierten Teilchen gleichmäßig auf die Grundschicht nieder, wogegen bei ausbleibender Agglutinationsreaktion die sedimentierten Teilchen auf der schrägen Bodenfläche nach unten rollen und sich in der tiefsten Bodenmitte ansammeln. Somit können sich auf der geneigten Bodenfläche eindeutige Agglutinations- oder Nicht-Agglutinationsmuster ausbilden.

Mehrere Küvettenplatten 52 sind in einer automatischen Küvettenplatten-Zuführvorrichtung 53 übereinan-

dergestapelt Diese KOvettenplatten 52 sind durch Führungsstücke 54A bis 54D positioniert bzw. zentriert, die in der Zuführvorrichtung 53 angeordnet sind. Aus Gründen der einfacheren Darstellung ist in Fig.2 nur die unterste Küvettenplatte 52 gezeichnet Die in der Zuführvorrichtung 53 gestapelten Küvettenplatten 52 werden vom unteren Sapelende weg zu im voraus festgelegten Zeitpunkten nacheinander in der mit einem Pfeil E angegebenen Richtung einer Küvettenplatten-Obergabevorrichtung 55 zugeführt

Die Küvetteaplatten-Obergabevorrichtung 55 weist ein Endlosband 57 auf, das von Antriebswellen 56A und 56B in der mit einem Pfeil Fangegebenen Richtung parallel zur Proben-Führungsbahn 36 antreibbar ist Die auf das Endlosband 57 abgegebene Küvettenplatte 52 wird zu einer Reagensabgabestation 58 transportiert In der Prob· i- und Reagensabgabestation 58 werden gemäß F i g. 2 im voraus festgelegte Reagentien quantitativ in

ίο eine Reihe mit zwölf Küvetten 8 abgegeben, und zur gleichen Zeit sind die Blutkörperchensuspension und das verdünnte Serum mengenmäßig aus den Verdünnungsgefäßen 42A bis 42D in der Probenaufsaugstation 45 abgegeben worden, so daß die vorgesehenen Probenlösungen entstehen.

Ein Reagensabgabearm 60 trägt den in der Reagensabgabestation 58 angeordneten zwölf Küvetten 8 oder Kanälen zugeordnete Pipetten 61-1 bis 61-12, die über zugehörige Rohre 62 an die Abgabevorrichtungen 9-1 bis

ts £-12 angeschlossen sind. Den zwölf Kanälen entsprechen in einem Reagensbehälter 63 zwölf Reagenskammern 63-5 bis 63-12, die, wie im Zusammenhang mit F i g. 1 erläutert die im voraus festgelegten ersten Reagentien enthalten. Bei Bedarf sind die Reagenskammern 63-1 bis 63-12 oben mit nicht dargestellten Stopfen versehen, und für jeden einzelnen Kanal oder für alle Kanäle gemeinsam ist ein Schüttelapparat vorgesehen, um ein Zusammenklumpen des Reagens und insbesondere eine Sedimentation des Blutkörperchenreagens zu verhin dem.

Der Resgeüsbebäitcr 63 ist über dens Endlosband 57 der KüvettertplatteR-Übergabevcrrichtung 55 auf einer Platte 64 angeordnet die an einem Gerätegestell mit solchem Zwischenraum befestigt ist, daß eine Küvettenplatte 52 unter ihr hindurchgeht Ferner sind die dem 1. Kanal zugeordnete Pipette 61-1 und die dem 7. Kanal zugeordnete Pipette 61-7 des Reagensabgabeanns 60 je mit der zugehörigen Abgabevorrichtung 11-1 bzw. 11-2 verbunden und somit werden die im voraus festgelegten zweiten Reagentien in der im Zusammenhang mit F i g. 1 erläuterten Weise in die diesen Kanälen entsprechenden Küvetten 8 der Küvettenplatte 52 abgegeben. Gemäß Fig.2 sind die Abgabevorrichtungen 11-1 und 11-2 übet Rohre 65 an die den Kanälen Nr. 1 und 7 entsprechenden Rohre 62 angeschlossen. Es ist jedoch möglich, die Rohre 65 mit den den Kanälen Nr. 1 und 7 entsprechenden Pipetten 61-1 und 61-7 direkt zu verbinden oder für die Abgabe der zweiten Reagentien getrennte Pipetten vorzusehen, die an die Rohre 65 direkt angeschlossen sind.

Anhand F i g. 3 werden nun ein Arbeitszyklus des Reagensabgabeanns 60 und eine Beziehung zwischen dem Reagensbehälter 63 und der Küvettenplatte 52 beschrieben. Die Pipetten 61-1 bis 61-12 sind am Reagensabgabearm 60 gegenüber der Senkrechten in Fig.3 mit einer Seichten Schrägstellung α im Gegenuhrzeigersinn befestigt In der Proben- und Reagensabgabestation 58 sind an einem Probenabgabearm 70 Probenabgabepipet ten 71-1 bis 71-4 mit einem Neigungswinkel af angeordnet In der Abgabestation 58 werden Küvetten 8-1-1 bis 8-1-12 in der Küvettenplatte 5Z die vom Endlosband 57 schrittweise herangeführt werden, das erste (und das zweite) Reagens, die Blutkörperchensuspension und das verdünnte Serum mit den Pipetten 61-1 bis 61-12 und den Probenabgabepipetten 71-1 bis 71-4 zugeführt, um die Probenlösungen herzustellen. Danach wird die Agglutinationsreaktion eingeleitet.

Hierzu wird zuerst der Reagensabgabearm 60 in der von einem Pfeil G\ angegebenen Richtung nach unten bewegt und die vorderen Enden der Pipetten 61-1 bis 61-12 in die entsprechenden Reagenskammern 63-1 bis 63-12 eingetaucht Die Pipetten 61-1 bis 61-12 saugen dann die in den Kammern 63-1 bis 63-12 enthaltenen Reagentien auf. Danach wird der Reagensabgabearm 60 nach oben bewegt und in dem mit einem Pfeil Gi angegebenen Bogen geführt und sodann entsprechend einem Pfeil Gi abgesenkt, um eine im voraus festgelegte

Reagensabgabe auszuführen.

Gemäß F i g. 2 sind am Probenabgabearm 70 vier Probenabgabepipetten 71-1 bis 71-4 mit einem im voraus festgelegten Zwischenabstand angeordnet der dem Abstand zwischen den Verdünnungsgefäßen 42,4 bis 42D auf der Trägerplatte 39 entsprich·, die vom Endlosband 37 in die Probenaufsaugstation 45 herangeführt wird. Die Pipetten 71-1 bis 71-4 sind mit den Abgabevorrichtungen 7-1 bis 7-4 über zugehörige Rohre 73 verbunden.

so Sobald die Trägerplatte 39 die Probenaufsaugstation 45 erreicht hat, wird der Probenabgabearm 70 in der waagerechten Ebene entsprechend einem Pfeil H von einer nicht dargestellten Kardan-Antriebsvorrichtung um 90° in eine mit strichpunktierten Linien gezeichnete Stellung geschwenkt und abgesenkt Sodann werden die Pipetten 71-1 bis 71-4 in die in der Probenaufsaugstation 45 angeordneten zugehörigen Verdünnungsgefäße 424 bis 42D eingetaucht wolei aus dem Verdünnungsgefäß 42/4 von der Abgabevorrichtung 7-1 über die Pipette 71-1 die Blutkörperchensuspension und aus den Verdünnungsgefäßen 42S bis 42£> von den Abgabevorrichtungen 7-2 bis 7-4 über die Pipetten 71-2 bis 71-4 auch die verdünnten Seren aufgesaugt werden. Der Probenabgabearm 70 wird dann in eine vorbestimmte Stellung aufwärtsbewegt, um die Pipetten 71-1 bis 71-4 aus den Verdünnungsgefäßen 42Λ bis 42D herauszuziehen und entsprechend einem Pfeil / in einem Bogen geführt und dann entsprechend einem Pfeil /gegen die Küvettenplatte 52 zugestellt In dieser Stellung wird zuerst mit der Pipette 71-4 das verdünnte Serum aus der Abgabevorrichtung 7-4 in die Küvette 8-Π-2 der Küvettenplatte 52 abgegeben, wobei π eine Zahl zwischen 1 und 10 ist. Sodann wird im Laufe einer Rückstellbewegung des Probenabgabearms 70 in der mit einem Pfeil K angegebenen Richtung das verdünnte Serum aus der Abgabevorrichtung 7-4 mit der Pipette 71-4 in die Küvette 8-n-l 1 abgegeben, das verdünnte Serum aus der Abgabevorrichtung 7-3 mit der Pipette 71-3 in die Küvetten S-n· 10 und 8-/7-9, das verdünnte Serum aus der Abgabevorrich-

3S tung 7-2 mit der Pipette 71-2 in die Küvetten 8-/7-8,8-Π-7,8-/7-6 und 8-/7-5, und die Blutkörperchensuspension aus der Abgabevorrichtung 7-1 milder Pipette 71-1 in die Küvetten 8-Π-4,8-/7-3,8-/7-2 und 8- /7-1.

Im Hinblick auf die Leistung des Analysiergerätes, die Reaktionsgeschwindigkeit und eine gute Vermischung ist es bei der Beschickung von Vorteil, wenn die Reagentien mit den Pipetten 61-1 bis 61-12 des Reagensabgabe-

arms 60 sowie die Blutkörperchensuspension und das verdünnte Serum mit den Pipetten 71-1 bis 71-4 des Probenabgabearms 70 zumindest annähernd gleichzeitig abgegeben werden. Mit anderen Worten, es sind folgende Beschickungsverfahren denkbar:

1) Abgabe des Reagens in die Küvetten 8-/7-1 bis 8-Π-12 zur gleichen Zeit und danach Abgabe der Proben, wobei der Probenabgabearm 70 in der Pfeilrichtung K rasch bewegt wird.

2) Abgabe des Reagens nacheinander in die Küvetten 8-n-l bis 8-/7-12 und Abgabe der Proben ebenfalls nacheinander entsprechend der Reagensabgabe.

3) Abgabe der Reagentien nacheinander in Küvettengruppen je mit einigen Küvetten und Abgabe der Proben dementsprechend.

Nach beendeter Probenabgabe wird der Probenabgabearm 70 in Pfeilrichtung K in eine vorbestimmte Stellung bewegt und dann erneut in Pfeilrichtung H geschwenkt Danach wird der Probenabgabeann 70 zu Pipettenwaschstationen T2A bis 72D weiterbewegt, die entsprechend den Pipetten 71-1 bis 71-4 angeordnet sind, um diese Pipetten auszuwaschen. Zur Durchführung der Probenabgabe wird der Probenabgabearm 70 mehrmais entlang dem obenbeschriebenen Ort verstellt Beim gezeigten Beispiel dauert die Reagens- und Probeirabgabe für eine Küvettenreihe 8-n-l bis 8-/7-12 15 Sekunden. Für die Herstellung der Probenlösungen /ü- eine Küvettenplatte 52 werden daher 10 mal 15=150 Sekunden benötigt

Anhand F i g. 4 werden nun ein Arbeitszyklus und eine Stellungsbeziehung zwischen dem Probenabgabearm 70, der Küvettenplatte 52 und der Trägerplatte 39 erläutert Der Probenabgabearm 70 setzt sich aus einem Abgabeabschnitt 70A und einem Träger 70S zusammen. Der Abgabeabschnitt 7OA ist um είπε Tragachse 7OC schwenkbar, und der Abgabeabschnitt 70A und der Träger 705 sind zusammen in den Pfeilrichtungen K und / verstellbar. Das Auswaschen der Probenabgabepipetten 71-1 bis 71-4 geschieht in den Pipettenwaschstationen 72A bis 72D einer Waschvorrichtung 72, die in der Nähe des Endlosbandes 37 angeordnet ist

Wenn beispielsweise der Probenabgabearm 70 in der mit einem Pfeil L angegebenen Richtung abgesenkt und as Auswaschen der Pipetten 71-1 bis 71-4 durchgeführt worden ist wird der Probenabgabearm 70 zuuerst nach oben und dann entsprechend einem Pfeil M zur Probenzuführbahn 36 bewegt und zum Aufsaugen von Proben aus den Verdünnungsgefäßen 42A bis 42D in Stellung gebracht In dieser Stellung wird er dann entsprechend einem Pfeil N abgesenkt, um eine im voraus festgelegte Aufsaugopreation durchzuführen, und wird danach wieder in Pfeilrichtung / nach oben bewegt und im Bogen in eine Stellung geschwenkt, die dier Pfeilrichtung / entspricht. Danach wird der Probenabgabearm 70 in der Pfeilrichtung N abgesenkt, um die Küvetten 8-/7-12 bis 8-/7-I der Küvettenplatte 52 nacheinander mit Proben zu beschicken. Anschließend wird der Probenabgabearm 70 in der mit einem Pfeil P angegebenen Richtung nach oben bewegt und dann in Pfeilrichtung K in die Ausgangsrichtung zurückgestellt Damit ist ein Abgabezyklus beendet

Nachdem die verdünnte Blutkörperchensuspension und das verdünnte Serum mit den Probenabgabepipetten 71-1 bis 71-4 aufgesaugt worden sind, werden die Verdünnungsgefäße 42A Bis 42D durch das Endlosband 37 in eine Waschstation 75 transportiert (s. F i g. 2). Diese hat Waschdüsen 76A bis 76D, welche so angeordnet sind, daß sie in die Verdünnungsgefäße 42A bis 42Z? eintauchbar sind. Die Probenreste in den Verdünnungsgefäßen 42A bis 42D werden über die Waschdüsen 76A bis 76D durch Betätigen einer Saugpumpe 77 entfernt Danach werden die Verdünnungsgefäße 42A bis 42D mit einer Waschflüssigkeit ausgewaschen, die den Waschdüsen 76A bis 76D von einer nicht dargestellten Zuführvorrichtung zugeleitet wird. Nach dem Waschen werden die Verdünnungsgefäße 42A bis 42Z? während ihrer Weiterbeförderung auf dem Endlosband 37 getrocknet und zur Prcbenabgabestation 31 zurücktransportiert, so daß sie erneut benutzt werden können. Beim gezeigten Beispiel sind die jeweiligen Trägerplatten 39 am Endlosband 37 gemäß F i g. 5 mittels eines Ansatzes 200 auf der Unterseite der Trägerplatte 39 und einer Mutter 201 befestigt.

Die mit den Reagentien und den Proben beschickte Küvettenplatte 52 wird in der mit dem Pfeil Fangegebenen Richtung weitertransportiert. Weil beim gezeigten Beispiel die Agglutinationsreaktion ab dem Herstellen der Probenlösung beginnt, wird das Endlosband 57 nachfolgend als erste Reaktionsbahnsektion bezeichnet.

Gemäß F i g. 2 ist nahezu unter der den Reagensbehälter 63 abstützenden Platte 64 ein Küvettenplatten-Abwärtsförderer 80 angeordnet, der nachstehend anhand F i g. 6 und 7 erläutert wird.

Gemäß Fig.6 und 7 wird die Küvettenplatte 52 auf dem Endlosband 57, das mittels der Antriebswellen 56A und 565 angetrieben wird, in der mit dem Pfeil Fangegebenen Richtung transportiert und dann zwischen einem Paar endloser Tragriemen 81A und 81 β des Abwärtsförderers 80 abgestützt. An den Tragriemen 81A und 815 sind mit gleichmäßigen Zwischenabständen mehrere L-förmige Stege 8IA-/7 und 81 S-n für die Aufnahme mehrerer dazwischen angeordneter Küvettenplatten 52 befestigt. Die Stege 8IA-/7 und 81 S-n weisen nicht dargestellte Anschläge auf. um ein Herabfallen der Küvettenplatten 52 von den Stegen zu verhindern. Die Tragriemen 81A und 815 sind in entgegengesetzten Umlaufrichtungen durch Antriebswellen 82Ai und 82A₂ bzw. 83ßi und 835? bewegbar, die von einer zweckdienlichen Antriebsvorrichtung mit einer konstanten Geschwindigkeit drehantreibbar sind. Die vom Endlosband 57 nacheinander zugeführten Küvettenplatten 52 werden daher zwischen Paaren von Stegen 81A-n, 8iB-n abgestützt und in Abhängigkeit von einer Umlaufbewegung der Tragriemen 81A und 81S nacheinander in der mit einem Pfeil Tangegebenen Richtung gefördert. In I

dieser Förderbahn läuft die Agglutinationsreaktion der in den Küvetten 8 der Küvettenplatte 52 enthaltenen |

Probelösungen ab. Beim gezeigten Beispiel wird diese vertikale Förderbahn als zweite Reaktionsbahnsektion bezeichnet. Weil die Agglutinationsreaktion in der zweiten Reaktionsbahnsektion stattfindet, müsen die Tragriemen 81A und 815 ruhig laufen, ohne daß die Küvettenplatten 52 heftig erschüttert werden. Die unterste der zwischen den Tragriemen 81A und 81B geförderten Küvettenplatten 52 wird auf ein Endlosband 90 abgegeben, wenn die sie abstützenden Stege 81 A-n und 81 B-η voneinander weg bewegt werden.

Gemäß F i g. 8 ist das Endlosband 90 in der mit einem Pfeil U angegebenen Richtung mittels Antriebswellen

91A 9\B und 91Cbewegbar, die mit einer konstanten Geschwindigkeit von einer zweckdienlichen Antriebsvorrichtung weich drehantreibbar sind Das Endlosband 90 wird intermittierend mit einer Schrittlänge bewegt, die dem Abstand zwischen den Küvetten 8-1 bis 8-10 entspricht, weil die Probenlösungen in den Küvetten 8-n-l bis 8-/J-12 der Küvettenplatte 52 in einer Photometrierstation 92 einzeln photometriert werden. Beim gezeigten Beispiel wird diese Förderbahn als dritte Reaktionsbahnsektion bezeichnet. Das Endlosband 90 hat ein Bandteil 90Λ von zum Transportieren der Küvettenplatte 52 ausreichender Breite und zwei Riemen 90JS-1 und 90B-2, die mit Zwischenabstand angeordnet sind, um die in diesem Zwischenraum stattfindende Zwölf-Kanal-Photometrie nicht zu stören. Das Bandteil 9GA und die Riemen 902M und 905-2 umschlingen die Antriebswelle 91S in einem bestimmten Abstand voneinander, um sich in ihrem Lauf nicht gegenseitig zu stören.

Gemäß F i g. 6 und 8 weist die Photometrierstation 92 eine Lichtquelle 93, eine Lichtempfangseinrichtung 94 und einen Träger 95 auf. Die Lichtquelle 93 und die Lichtempfangseinrichtung 94 sind am Träger 95 unter bzw. über der dritten Reaktionsbahnsektion angeordnet Für das Positionieren einer Reihe von zwölf Küvetten 8-n-l bis 8-Π-12 in der dritten Reaktionsbahnsektion ist an einer vorbestimmten Stelle in der Nähe der Photometrierstation 92 eine Positioniervorrichtung 96 angeordnet, die ein Positionierglied 97 aufweist Dieses wirkt mit Rasten zusammen, die in eine Seitenwand der Küvettenplatte 52 mit einer Teilung eingearbeitet sind, welche der Teilung der Küvettenreihen entspricht

Beim gezeigten Beispiel beträgt die Beförderungszeit einer Küvettenplatte 52 zwischen der Reagensabgabestation 58 und der Photometrierstation 92, also die Reaktionszeit, 60 Minuten. Der Träger 95 ist in der mit einem Pfeil V angegebenen Richtung rechtwinklig zur Pfeilrichtung U hin- und herbewegbar. Somit werden in der Photometriertation 92 alle zwölf Küvetten 8-n-l bis 8-/7-12 oder Kanäle nacheinander photometriert, wobei das Photometriet en entweder in einer Richtung oder in beiden Richtungen vorgenommen werden kann.

F i g. 9 zeigt eine andere mögliche Ausgestaltung der dritten Reaktionsbahnsektion: Mit den beiden Antriebswellen 91Λ und 91C ist in der Pfeilrichtung £/ein Endlosband 115 antreibbar, das mehrere Aussparungen 116 aufweist Das Endlosband 115 ist in der Lage, die Küvettenplatte 52 zuverlässig zu transportieren und ermöglicht durch die Aussparungen 116 hindurch einen einwandfreien Empfang des von der Lichtquelle 93 ausgesandten

Lichtes durch die Lichtempfangseinrichtung 94. Außerdem ist es möglich, durch Abdecken der Aussparung 116

mit einem durchsichtigen Baute« von hoher Lichtdurchlässigkeit die Tragfähigkeit zum Abstützen der Küvet tenplatten 52 zu verbessern.

Gemäß Fig.2 und 6 wird die Küvettenplatte 52 nach dem Photometrieren einem Aufwärtsförderer 120

ao zugeführt auf einer Platte 121 aufgenommen und dann auf dieser mittels einer Antriebsvorrichtung 122 in einer Aufwärtsförderbahn 123 in der mit einem Pfeil W angegebenen Richtung nach oben bewegt Sobald die Küvettenplatte 52 eine im voraus festgelegte Stoppstellung 124 erreicht hat, wird die Antriebsvorrichtung 122 abgeschaltet In der Stoppstelk-ig 124 kann die Küvettenplatte 52 mittels eines Betrachtungsgerätes 126 bei Bedarf visuell überprüft werden. Die auf diese Weise überprüfte Küvettenplatte 52 wird z. B. durch Verstellen der Platte 121 des Aufwärtsförde crs 120 oder mittels einer Fördervorrichtung zu einer Stapelvorrichtung 127 weitertransportiert und mittels einer Antriebsvorrichtung 128 über eine Platte 129 in der mit einem Pfeil Y angegebenen Richtung einzeln gestapelt

Es werden nun der Aufbau der Photometrierstation 92 und ein Nachweisvorgang erläutert In F i g. 10 ist eine Ausführungsform der Lichtquelle 93 und der Lichtempfangseinrichtung 94 gemäß F i g. 6 und 8 dargestellt. In der

Lichtquelle 93 wird ein von einer Lampe 100 ausgesandtes Lichtbündel durch einen Wärmeschutzfilter 101, eine

. Kondensorlinse 102 und eine Beleuchtungslinse 103 hindurch gleichmäßig auf die Unterseite der Küvette 8 in der Küvettenplatte 52 projiziert In der Lichtempfangseinrichtung 94 wird ein gleichmäßig ausgeleuchtetes Bild von der Unterseite der Küvette 8 durch eine Objektivlinse 104 hindurch von einem Lichtempfänger 105 aufgefangen, der zwei Lichtempfängerelemente 106 und 107 hat, welche gemäß einer in die F i g. 10 eingezeich neten Draufsicht mit Zwischenabstand konzentrisch zueinander angeordnet sind. Beim gezeigten Beispiel wer den photoelektrisch umgewandelte Ausgangssignale dieser Lichtempfängerelemente 106 und 107 von zugehörigen Verstärkern 108 und 109 verstärkt und danach über einen Analogschalter 110 und einen Analog-Digital-Umsetzer 111 einer Zentraleinheit 112 zugeführt. Weil beim gezeigten Beispiel die Bodenfläche der Küvetten 8 kegelförmig ist, ist bei Agglutinationsreaktion

so auf der Bodenfläche ein gleichmäßiges Niederschlagsinuster ausgebildet, wogegen bei nicht eingetretener Agglutinationsreaktion ein geschlossenes Muster in der Bodenmitte vorliegt Beim Abtasten des Teilchenmusters auf der Bodenfiäche der Küvette 8 durch Verstellen der Phototmetrierstation 92 in bezug auf die Küvette 8 nimmt daher ein photoelektrisch umgewandeltes Ausgangssignal aus dem Lichtempfängerelement 106 in der Nähe der Mitte der Küvette 8 aufgrund der Änderung der Bodendicke einen hohen Wert an (s. Fig. 11A), dagegen im Falle eines geschlossenen Musters einen niedrigen Wert (s. F i g. 11 B).

Gemäß Fig. 1IA und HB kann das photoelektrisch umgewandelte Ausgangssignal zwischen einem Startpunkt 1 und einem Endpunkt /V'über den gesamten Durchmesser der Küvette 8 abgetastet werden, und die auf diese Weise abgetasteten Ausgangssignale können der Zentraleinheit 112 zugeführt werden. Beim gezeigten Beispiel jedoch ist ein Abtastbereich n\ bis n-i festgelegt, dessen Mitte etwa mit der Mitte der Küvette 8 zusammenfällt und dessen Durchmesser kleiner ist als der der Küvette 8, und das photoelektrisch umgewandelte Ausgangssignal des Lichtempfängerelementes 106 wird an η Stellen im gleichen Abstand (1 bis 100 μπι) abgetastet. Zur gleichen Zeit wird auch das Ausgangssignal des Lichtempfängerelementes 107 abgetastet. Sodann werden die abgetasteten Ausgangssignale der Zentraleinheit 112 zugeführt. Der Abtastbereich kann unter Berücksichtigung einer Erhöhung der Untersuchungsgenauigkeit und einer Verkürzung der Abtastzeit festge legt werden. Außerdem wird die Zahl π der Abtastungen des photoelektrisch umgewandelten Ausgangssignals zuvor unter Berücksichtigung verschiedener Forderungen festgelegt, z. B. im Hinblick auf die Untersuchungsgenauigkeit, den Küvettendurchmesser, die Form des Agglutinationsmusters, den Abtastabstand, das Reagens u. a. Beispielsweise kann bei einem angenommenen Durchmesser der Küvette 8 von etwa 5 bis 10 mm die Zahl π der

Abtastungen mehrere zehn bis einhundert betragen.

Anhand des in Fig. 12 dargestellten Flußdiagramms wird nun das Nachweisverfahren erläutert Seim dargestellten Beispiel wird das photoelektrisch umgewandelte Ausgangssignal des Lichtempfängerelementes 106 als Zentraldaten, dasjenige des Lichtempfängerelementes 107 als Umfangsdaten bezeichnet.

Nachdem die Zentral- und Umfangsdaten generiert worden sind, wird zuerst ermittelt, ob das Muster der Zentraldaten »konvex nach oben« (s. Fig. 11 A) oder »konvex nach unten« (s. Fig. MB) ist Diese Ermittlung wird folgendermaßen durchgeführt Zuerst wird das (fli)te Zentraldatenelement a mit dem (n\ +«)ten Zentraldatenelement b

R)

oder ^--2)ten, f-|- + l)ten oder ^-

to

verglichen und auch das (ji2)te Zentraldatenelement c mit dem (/72—«Oten Zentraldatenelement d

oder ^<-y)-

Wenn die Bedingung a < b und c< c/ist, dann wird das Muster als »nach oben konvex« erkannt, bei a > b und c> d als »nach unten konvex«. Wenn a < b und c> d oder a < b und c< d, liegt eine unbrauchbare oder Fehlbestimmung vor (Endergebnis ist»?«).

Wenn das Ergebnis »nach ober· konvex« lautet, liegt ein Maximalwert der Zentraldaten vor, be^; einem Ergebnis »nach unten konvex« ein Kleinst« „-it Bei der Ermittlung des Größtwertes wird zuerst der Größtwert (REm«) unter den π Zentraldatenwerten ermittelt und dann von den Umfangsdaten (RF), die vom Lichtempfängerelement 107 an einer Stelle abgeleitet wurden, welche der Stelle des größten Zentraldatenwertes RLm_2x entspricht Wenn in diesem Falle der Größtwert in mehr als zwei Punkten festgestellt wird, wird als der Größtwert derjenige Datenwert angenommen, der in einem dem

30

Punkt näheren Punkt erhalten wird (wenn die Abstände dieser Punkte gleich sind, wird als der Größtwert der in der Reihenfolge jüngere Wert (younger ordering vaiue) angenommen. Beim gezeigten Beispiel werden von RE_mM und RF und von zwei neben RE_m„ und RF liegenden Werten jeweils Durchschnittswerte berechnet um den Zentraldatenwert RE_n,*, und den Umfangsdatenwert RF_m„ abzuleiten. Bei der Kleinstwertermittlung wird, in gleicher Weise wie bei der Größtwertermittlung, zuerst der Zentraldaten-Kleinstwert (RE_m/n) und der entsprechende Umfangsdatenwert (RF) ermittelt und dann werden zwei neben dem ermittelten Wert (RE_n,,,,) und zwei neben dem ermittelten Wert (RF) liegende Werte abgeleitet. Schließlich werden von RE_n,/,, und RF und von den jeweils neben ihnen liegenden zwei Werten jeweils Durchschnittswerte ermittelt, um den Zentraldatenwert RE_m/>, und den Umfangsdatenwert RF_mm abzuleiten.

Die so ermittelten Photometriedaten haben wegen unterschiedlicher Lichtempfangsflächen der Lichtempfängerelemente 106 und 107 verschiedene Gewichtungen, und sop· jt werden, um die beiden Gewichtungen gleich zu machen, die Photometriedaten mit einer Kcrrekturkonstamen multipliziert, so daß man E_mM, F_mM oder E_m,n, F_m/„ erhält.

Sodann wird festgestellt, ob die korrigierten Photometriedaten innerhalb eines im voraus festgelegten Bereiches zwischen einem unteren Grenzwert (uG) und einem oberen Grenzwert (oG) liegen (s. F i g. 11A und 11 B). Wenn die Bedingung gestellt ist, daß unterer Grenzwert <E_ra„, F_m„ oder E_n,,)* F_m/n< oberer Grenzwert, wird eine Erkennungsfunktion C errechnet, und wenn E_mM, F_m„S oberer Grenzwert oder E_m/_ra F_m/„< unterer Grenzwert ist, dann ist di.s Endergebnis bzw. der Endnachweis »?«.

Als Erkennungsfunktion G wird ein Verhältnis G = F/E benutzt, worin E ein korrigiertes Zentraldatenelement und F ein korrigiertes Umfangsdatenelement ist Es ist außerdem möglich, als Erkennungsfunktion G »F-E«, »log (F/E)«, »log (F-QE)« mit Q als Konstante, etc. zu benutzen.

Sodann wird der errechnete Wert mit einem im voraus festgelegten oberen Schwellenwert (oSW) und unteren Schwellenwert (uSW) verglichen. Wenn in diesem Falle die Bedi^giuig G ä oSW gilt, also »keine Agglutination«, dann ist der Nachweis » + «, bei G £ uSW, also »Agglutination«, ist der Nachweis » — «, und bei uSW < G < oSW ist der Nachweis »?«. Wenn der obere Schwellenwert übermäßig hoch angesf tzt ist, ist die Genauigkeit für den Nachweis » + « groß, jedoch wird die prozentuale Häufigkeit des Nachweises »?« dementsprechend groß. Wenn der untere Schwellenwert übermäßig niedrig angesetzt ist, wird die Genauigkeit für den Nachweis » —« groß, aber in gleicher Weise wird der prozentuale Anteil des Nachweises »?« dementsprechend groß. Daher müssen diese oberen und unteren Schwellenwerte sorgfältig gewählt werden, unter Berücksichtigung verschiedener Bedingungen wie der Erkennungsfunktion G, des Reagens, der Probe, der Umgebungsbedingungen, der Nachweisgenauigkeit u. a.

Beim gezeigten Beispiel wird das Nachweisergebnis mit Steuerung durch die Zentraleinheit 112 durch einen Drucker ausgedruckt, zusammen mit verschiedenen Informationen, die von der Probenfeststell- oder Probenerkennungsvorrichtung 30 zuvor gelesen wurden, z. B. die Probendaten und die vorhandenen Probendaten, die mit einem Elektrodcnpaar, bestehend aus der Elektrode ?5 und der als Elektrode wirkenden Pipette 33 oder 34, erfaßt wurden.

F i g. 13 zeigt das Flu^diagramm für die vorstehend beschriebenen, vom Analysiergerät nacheinander ausgeführten Arbeitsschritte, und da für deren Verständnis die vorstehende ausführliche Erläuterung ausreicht, wird

auf eine nochmalige Beschreibung verzichtet.

Im Vorstehenden wurden als Beförderungszeit für eine Küvettenplatte 52 zwischen der Reagensabgabestation 58 und der Photometrierstation 92, also für die Reaktionszeit, 60 Minuten angenommen; es ist jedoch eine Verkürzung der Reaktionszeit auf 30 Minuten möglich, wenn die Umlaufgeschwindigkeit der Tragriemen 81A und 81S im Küvettenplatten-Abwärtsförderer 80 erhöht wird und die Küvettenplatten 52 nur auf jedes zweite Stegpaar81/4-n,81ß-n aufgegeben werden.

Hierzu 11 Blatt Zeichnungen

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Claims

Patentansprüche:

1. Mit immunologischer Agglutinationsreaktion arbeitendes Analysiergerät mit einer Zuführvorrichtung für Blutprobengefäße, einer Einrichtung zum Herstellen mehrerer verdünnter Blutproben in Verdünnungsgefäßen aus den einzelnen Blutproben, einer Zuführvorrichtung zum Zuführen von Küvettenplatten zu einer Einfüllstation, einer Einrichtung zum Einfüllen der verdünnten Blutproben in die reihenweise angeordneten Küvetten der Küvettenplatten, einer Einrichtung zum Eingeben von Reagentien in die Küvetten, einer Transportvorrichtung zum Fördern der Küvettenplatten längs einer Reaktionsbahn, die insbesondere mehrere in einer Vertikalebene verlaufende teils horizontale und teils vertikale Reaktionsbahnabschnitu: aufweist, einer an der Reaktionsbahn angeordneten photoelektrischen Meßeinrichtung für die Agglutimationsreaktion und einer am Ende der Reaktionsbahn angeordneten Austragsvorrichtung für die Küvettenplatten, dadurch gekennzeichnet, daß die Einrichtung zum Einfüllen der verdünnten Blutproben in die Küvetten einen verschwenkbaren sowie linear und senkrecht bewegbaren Probenabgabearm (70) eufweist, an dem mehrere Pipetten (71-1 bis 71-4) zum gleichzeitigen Aufsaugen der verdünnten Blutkörperchen- und Serumproben aus den Verdünnungsgefäßen (42Λ bis 42D) und zum Abgeben der Proben in die Küvetten (8) der Küvettenplatte (52) angeordnet sind, wobei in der Einfüllstation (45, 58) die Küvettenreihen (8-/7-1 bis 8-/3-12) rechtwinklig zu den in einer Reihe angeordneten Verdünnungsgefäßen (42/4 bis 42D) ausgerichtet sind.

2. Analysiergerät nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Zahl und Anordnung der Pipetten (71-1 bir Tl-4) am Probenabgabearm (70) der Zahl und Anordnung der Verdünnungsgefäße (4Z4 bis 42D^ in

der Emiüästation (45, 58) entspricht und daß bei einer größeren Zahl von Küvetten (8) je Küvettenreihe (8-J7-1 bis 8-/7-12) die Pipetten (71-1 bis 71-4) durch entsprechende Bewegungssteuerung des Probenabgabearms (70) nacheinander auf zwei oder mehr Küvetten (8) der Küvettenreihe (8-/7-1 bis 8-/7-12) ausrichtbar sind.

3. Analysiergerät nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß der Probenabgabearm (70) vier Pipetten (71-1 bis 71-4) aufweist, mit denen je Einfüllzyklus zwölf Küvetten (8) beschickt werden, die eine Küvettenreihe (8-Π-1 bis 8-/7-12) bilden.

4. Analysiergerät nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß die Pipetten (71-1 bis 71-4) durch entsprechende Bewegungssteuerung des Probenabgabearms (70) in eine Waschvorrichtung (72) einführbar sind.

5. Analysicrgrät nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß die Waschvorrichtung (72) einer der Zahl und Anordnung der Pipetten (71-1 bis 71-4) entsprechende Zahl und Anordnung von einzelnen Waschstationen (72/4 bis 72D^ aufweist, uie seitlich neben den in der Einfüllstation (45,58) befindlichen Verdünnungsgefäßen (42/4 bis 42Dj angeordnet sind.