DE60214175T2

DE60214175T2 - Mikrobielle kontrolle bei der geflügelverarbeitung

Info

Publication number: DE60214175T2
Application number: DE60214175T
Authority: DE
Inventors: N. Jonathan Baton Rouge HOWARTH
Original assignee: Albemarle Corp
Current assignee: Albemarle Corp
Priority date: 2001-06-28
Filing date: 2002-06-25
Publication date: 2007-07-05
Anticipated expiration: 2022-06-26
Also published as: CA2452014A1; US20030113402A1; WO2003001931A1; PE20030202A1; DE60214175D1; PE20030204A1; BR0210712A; US20070237868A1; CN1522114A; AU2008203859A1; US7182966B2; ATE336910T1; CN1522114B; BR0210712B1; US7767240B2; CN102669502B; MXPA04000141A; CN102669502A; AU2002315452B2; RU2004102201A

Description

Hintergrund
Geflügelverarbeitung ist ein Gebiet, bei dem die mikrobielle Kontrolle von vitaler Bedeutung ist. Durch die Natur der beteiligten Verarbeitung gibt es zahlreiche Gelegenheiten, bei denen das Geflügel verschiedenen Pathogenen in Form von mobilen Bakterien, wie beispielsweise Escherichia coli, Salmonella enteritidis, Salmonella typhimurim, Campylobacter jejuni, Campylobacter coli, Campylobacter lari, und in Form von Biofilmen ausgesetzt ist, wie beispielsweise Listeria monocytogenes, Pseudomonas fluoresceins, Pseudomonas aeruginosa, Enterococcus faecium und Staphylococcus aureus. Der Gedanke an Handhabung, Verarbeitung und Konsum von bakterienverseuchtem Geflügel ist extrem abstoßend.
Bisher sind bestimmte Mikrobiozide auf Chlorbasis vorgeschlagen und in einem Versuch verwendet worden, geeignete Entkeimung im Zusammenhang mit der Geflügelverarbeitung bereitzustellen. Obwohl einige Mikrobiozide eine gewisse Wirksamkeit zeigen, besitzen sie leider eine Reihe schwerwiegender Mängel. Sie sind erstens nicht so wirksam, wie man es gerne hätte. Sie neigen zweitens dazu, geruchsintensiv zu sein, und in vielen Fällen können sie auf die Geflügelkarkassen eine bleichende Wirkung haben, die dann für den Verbraucher ungenießbar erscheinen. Wegen des Ausbreitens von Fäkalmaterial, das mit dem Ausweiden des Geflügels verbunden ist, sind reichlich Fäkalbakterien vorhanden. Dieser unerhörte Zustand führt wiederum zu hohen Stickstoffgehalten in den Waschwassern und auf feuchten Oberflächen, wie Schneidoberflächen, Leitungen, Tankoberflächen und anderen nachgeordneten Geräten, die auf irgendeine Weise diesen Waschwassern ausgesetzt sind. Die aktiven Chlorspezies bestimmter Mikrobiozide auf Chlorbasis neigen leider dazu, mit den stickstoffhaltigen Spezies unter Bil dung von Chloraminen zu reagieren, die augenreizend sowie gegenüber Metalloberflächen korrosiv sind. In der Tat können so wenig wie 50 ppm Chlor in wässrigen Waschtanks, die stickstoffhaltige Verunreinigungen enthalten, zu Mengen an augenreizenden Stoffen in der Luft führen, die für die Arbeiter in der Anlage nicht zu tolerieren sind. Der Verbrauch an Chlorwerten bei der Bildung von Chloraminen führt außerdem zu einem signifikanten Verlust an biozider Wirkung, da die Chloramine keine biozid wirksamen Spezies sind.
Es besteht eindeutig ein Bedarf an einer neuen, wirksameren, wirtschaftlich durchführbaren Weise zur Bereitstellung von mikrobiologischer Kontrolle in der Geflügelverarbeitungsindustrie.
Kurze Zusammenfassung der Erfindung
Diese Erfindung befriedigt den zuvor genannten Bedarf, indem sie bestimmte hochwirksame Mikrobiozide auf Halogenbasis bei der Verarbeitung von Geflügel und zur Desinfektion von Geräten, Instrumenten, Vorrichtungen und/oder Wasser, die bzw. das bei der Verarbeitung von Geflügel und/oder Karkassen und/oder Geflügelteilen verwendet werden bzw. wird, die aus der Verarbeitung resultieren, bereitstellt und verwendet. Erfindungsgemäß verwendete mikrobiozide Mittel können wirtschaftlich in direkter Verarbeitung aus relativ preiswerten Rohmaterialien hergestellt werden und können wegen ihrer Wirksamkeit mikrobielle Kontrolle auf wirtschaftlicher Basis liefern, die sich nach den Bedürfnissen der Industrie richtet.
Diese Erfindung liefert ein Verfahren zum Desinfizieren von Geräten, Instrumenten, Vorrichtungen und/oder Wasser, die bzw. das zur Verarbeitung von Geflügel verwendet worden ist bzw. sind, und/oder Karkassen und/oder andere Geflügelteile, die aus solcher Verarbeitung resultieren, bei dem auf die Geräte, Instrumente, Vorrichtungen und/oder das Wasser, die bzw. das in dieser Verarbeitung verwendet worden ist bzw. sind, und/oder Karkassen und/oder andere Geflügelteile, die aus dieser Verarbeitung resultieren, eine wässrige mikrobiozide Lösung von einer oder mehreren aktiven Halogenspezies aufgebracht wird oder diese damit in Kontakt gebracht werden, wobei die Lösung ein Derivatprodukt von mindestens einem 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin in einem wässrigen Medium ist, worin eine der Alkylgruppen eine Methylgruppe ist und die andere Alkylgruppe im Bereich von 1 bis etwa 4 Kohlenstoffatomen enthält.
Diese Erfindung betrifft ferner die Verwendung eines wässrigen Mikrobiozids, das aus mindestens einem 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin gebildet worden ist, wobei eine der Alkylgruppen eine Methylgruppe ist und die andere Alkylgruppe im Bereich von 1 bis etwa 4 Kohlenstoffatome enthält, um Geräte, Instrumente, Vorrichtungen und/oder Wasser, die/das in dieser Verarbeitung verwendet wurde(n), und/oder Karkassen und/oder andere Geflügelteile, die aus dieser Verarbeitung resultieren, zu desinfizieren.
Das Derivatprodukt ist eine wässrige mikrobiozide Lösung, die durch Lösen des spezifizierten 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoins/der spezifizierten 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoine in Wasser gebildet wird und somit daraus resultiert. Diese 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoine sind in der Regel im Handel in Form von Feststoffen erhältlich, und es können aus diesen Feststoffen konzentrierte wässrige Lösungen mit oder ohne weitere Verdünnung zur Aufbringung auf Geräte, Instrumente oder Vorrichtungen, die in der Geflügelverarbeitung verwendet werden, gebildet und zu Wasser zugesetzt werden, das in der Geflügelverarbeitung verwendet wird. Zur Aufbringung auf Geflügelkarkassen oder Teile davon sollte jedoch entweder die konzentrierte Lösung vor Gebrauch weiter mit Wasser verdünnt werden, oder die gewählten 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoinfeststoffe sollten Wasser in Proportionen zugesetzt werden, die die gewünschte mikrobiozide Dosis direkt ergibt, ohne dazwischen eine konzentriertere Lösung zu bilden.
Gemäß bevorzugten Ausführungsformen ist das in dem obigen Verfahren verwendete Mikrobiozid auf Halogenbasis eine wässrige mikrobiozide Lösung von mindestens einem 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin, wobei eine der Alkylgruppen eine Methylgruppe ist und die andere Alkylgruppe im Bereich von 1 bis etwa 4 Kohlenstoffatome enthält. Gemäß den Ausführungsformen dieser Erfindung, bei denen Geräte, Instrumente, Vorrichtungen und/oder Wasser, die bzw, das in der Geflügelverarbeitung verwendet wird bzw. werden, desinfiziert wird und/oder Karkassen und/oder andere Geflügelteile, die aus dieser Verarbeitung resultieren, desinfiziert werden, bedeutet "auf Brombasis" eine wässrige mikrobiozide Lösung von einer oder mehreren aktiven Halogenspezies, wobei die Lösung ein Derivatprodukt von mindestens einem 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin in einem wässrigen Medium ist, wobei eine der Alkylgruppen eine Methylgruppe ist und die andere Alkylgruppe im Bereich von 1 bis etwa 4 Kohlenstoffatome enthält. In der Praxis werden die zu desinfizierenden Oberflächen mit der wässrigen Mikrobiozidlösung in Kontakt gebracht, die natürlich eine mikrobiozid wirkende Menge des mikrobioziden Mittels und/oder mikrobiozide(s) Hydrolyseprodukt(e) davon enthält.
Solche Mikrobiozide auf Brombasis sind gegenüber verschiedenen Bakterien und Biofilme effektiver als Mikrobiozide auf Chlorbasis. Diese Mikrobiozide auf Brombasis neigen. außerdem dazu, weniger geruchsintensiv als Mikrobiozide auf Chlorbasis zu sein, und sie sind im Wesentlichen frei von unerwünschter Bleichwirkung. Während einige der Mikrobiozide auf Brombasis möglicherweise mit stickstoffhaltigen Spezies reagieren können, wie sie im Wasser und auf Oberflächen vorhanden sind, die zur Geflügelverarbeitung gehören, besitzen die resultierenden Bromamine ebenfalls mikrobiologische Aktivität. Derartige Nebenreaktionen würden die mikrobiologische Wirksamkeit, die dem Geflügelverarbeiter durch Verwendung dieser Mikrobiozide auf Brombasis zur Verfügung gestellt wird, nicht wesentlich herabsetzen. Bromamine zeigen zudem im Allgemeinen keine unangenehmen Wirkungen auf Arbeiter in der Verarbeitungsanlage, während Chloramine, die aus der Verwendung bestimmter Mikrobiozide auf Chlorbasis resultieren, unter den gleichen Bedingungen dazu neigen, stark augenreizend zu sein.
Die Mikrobiozide auf Brombasis sind mikrobiozide Lösungen von einer oder mehreren aktiven Bromspezies, wobei die Lösungen Derivatprodukte von mindestens einem 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin in einem wässrigen Medium, wie Wasser, sind, wobei die Alkyle wie beschrieben sind. Beim Auflösen eines in diesem Absatz genannten Dibrom-5,5-dialkylhydantoins in einem wässrigen Medium findet eine Umwandlung statt, so dass in der resultierenden Lösung aktive Halogen-(oder Brom)spezies vorhanden sind.
Die gemäß den obigen Ausführungsformen dieser Erfindung verwendeten wässrigen mikrobioziden Lösungen können in vielen Fällen gebildet werden, indem das mikrobiozide Mittel selbst (d. h. in unverdünnter Form) oder als vorab gebildete, konzentrierte, wässrige Lösung davon zu Wasser gegeben wird, das in einer oder mehreren Geflügelverarbeitungsoperationen verwendet wird (z. B. Wasser, das in Kühltanks fließt, oder Wasser, das sich bereits in Kühltanks befindet), um eine erfindungsgemäße verdünnte mikrobiozide Lösung zu bilden, die mit den zu desinfizierenden Oberflächen in Kontakt gebracht wird. Alternativ kann eine konzentrierte, vorab gebildete, wässrige Lösung des mikrobioziden Mittels direkt auf die zu desinfizierenden Oberflächen aufgebracht werden (z. B. Oberflächen von Schneidtischen oder Messer), oder üblicher würde eine derartige konzentrierte Lösung mit Wasser unter Bildung einer verdünnteren Lösung des mikrobioziden Mittels gemischt, die auf die zu desinfizierenden Oberflächen aufgebracht und/oder in Wasser eingebracht wird, das in Geflügelverarbeitungsoperationen verwendet wird. Die gemäß diesen Ausführungsformen der Erfindung verwendeten wässrigen mikrobioziden Lösungen können kurz gesagt vollständig oder teilweise aus Wasser hergestellt werden, das bereits in den Geflügelverarbeitungsoperationen in Gebrauch ist oder verwendet werden soll, oder können ganz aus Wasser hergestellt werden, das getrennt von demjenigen vorliegt, das in der Geflügelverarbeitung verwendet wird oder verwendet werden soll. In jedem derartigen Fall wird das In-Kontakt-Bringen der wie auch immer hergestellten und/oder auf die Oberfläche aufgebrachten mikrobioziden Lösung zu einer effektiven Desinfektion führen.
Derzeit ist das zur Durchführung irgendeiner Ausführungsform dieser Erfindung am meisten bevorzugt verwendete Mikrobiozid auf Brombasis ein wasserlösliches 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin, in dem eine der Alkylgruppen eine Methylgruppe ist und die andere eine Alkylgruppe ist, die 1 bis etwa 4 Kohlenstoffatome enthält, wobei 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin das am meisten bevorzugte ist.
Verschiedene Ausführungsformen und Merkmale dieser Erfindung ergeben sich aus der folgenden Beschreibung und den angefügten Ansprüchen.
Kurze Beschreibung der Zeichnungen
1 ist eine graphische Darstellung der Wirkung von mikrobioziden Kühltankbehandlungen auf das Wachstum von Pseudomonas-Spezies auf Hühnchenhaut.
2 ist eine graphische Darstellung der Wirkung von mikrobioziden Kühltankbehandlungen auf das Wachstum der gesamten aeroben Bakterien auf Hühnchenhaut.
3 ist eine graphische Darstellung der Wirkung von mikrobioziden Kühltankbehandlungen auf das Wachstum von Pseudomonas-Spezies auf Hühnchenhaut.
4 ist eine graphische Darstellung der Wirkung von mikrobioziden Kühltankbehandlungen auf das Wachstum der gesamten aeroben Bakterien auf Hühnchenhaut.
5 und 6 sind graphische Darstellungen der Ergebnisse, die in Tests erhalten worden, die die Verwendung von Bromspezies beinhalten, die aus Sulfamat-stabilisiertem Bromchlorid stammen, um HPC-(heterotrophe Plattenzählung) Bakterien in Biofilm beziehungsweise in planktonischer Form in Konzentrationen von 0,5 ppm und 2 ppm als Brom in Wasser auszulöschen.
7 und 8 sind graphische Darstellungen der Ergebnisse, die in Tests erhalten wurden, die die Verwendung von Bromspezies beinhalten, die aus Sulfamat-stabilisiertem Bromchlorid stammen, um HPC-(heterotrophe Plattenzählung) Bakterien in Biofilm beziehungsweise in planktonischer Form in Konzentrationen von 4 ppm und 10 ppm als Brom in Wasser auszulöschen.
9 ist eine graphische Darstellung der Ergebnisse, die in Tests erhalten wurden, die die Verwendung von Bromspezies beinhalten, die aus 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin stammen, um HPC-(heterotrophe Plattenzählung) Bakterien in einem Biofilm in Konzentrationen von 0,5 und 5 ppm als Brom in Wasser auszulöschen.
10 ist eine graphische Darstellung der Ergebnisse, die in Tests erhalten wurden, die die Verwendung von Bromspezies beinhalten, die aus 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin stammen, um HPC-(heterotrophe Plattenzählung) Bakterien in einem Biofilm in Konzentrationen von 0,5 und 5 ppm als Brom in Wasser auszulöschen.
Weitere ausführliche Beschreibung der Erfindung
Ein bevorzugtes System zur Verwendung zur Durchführung dieser Ausführungsformen dieser Erfindung ist eine mikrobiozide Lösung auf Brombasis von 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin, wobei eine der Alkylgruppen eine Methylgruppe ist und die andere Alkylgruppe im Bereich von 1 bis etwa 4 Kohlenstoffatome enthält. Diese bevorzugten Biozide umfassen somit 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-ethyl-5-methylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-n-propyl-5-methylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-isopropyl-5-methylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-n-butyl-5-methylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-isobutyl-5-methylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-sek.-butyl-5-methylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-tert.-butyl-5-methylhydantoin und Mischungen von irgendwelchen zwei oder mehr von diesen. Von diesen bioziden Mitteln sind vom Kostenaspekt her 1,3-Dibrom-5-isobutyl-5-methylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-n-propyl-5-methylhydantoin und 1,3-Dibrom-5-ethyl-5-methylhydantoin bevorzugt, besonders bevorzugte, beziehungsweise stärker bevorzugte Mitglieder dieser Gruppe. Von den Mischungen der zuvor genannten Biozide, die erfindungsgemäß verwendet werden können, ist die Verwendung von 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin als eine der Komponenten bevorzugt, wobei eine Mischung aus 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin und 1,3-Dibrom-5-ethyl-5-methylhydantoin besonders bevorzugt ist. Das am meisten bevorzugte Mitglied dieser Gruppe von Mikrobioziden ist 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin. Diese Verbindung ist auf dem Markt in Tabletten- oder körniger Form unter den Handelsbezeichnungen Albrom^® 100T Biozid und Albrom^® 100PC Biozid (Albemarle Corporation) erhältlich.
Wenn erfindungsgemäß eine Mischung von zwei oder mehr der vorhergehenden 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoinbiozide verwendet wird, können die individuellen Biozide der Mischung in irgendwelchen Anteilen relativ zueinander vorliegen.
Verfahren zur Herstellung von 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoinen sind bekannt und in der Literatur beschrieben.
Gewünschtenfalls können die 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoine in einem geeigneten, unschädlichen, harmlosen, wasserlöslichen, organischen Lösungsmittel mit oder ohne Wasser gelöst werden, um eine Lösung zu bilden, die auf Oberflächen von Geräten, Instrumenten und Vorrichtungen aufgebracht werden kann. In Abhängigkeit von dem verwendeten Lösungsmittel können die Oberflächen dann weiter mit sauberem Wasser gewaschen werden, um Rückstände dieses Lösungsmittels zu entfernen. Neben dem Erhöhen der Menge an 1,3-Dihalogen-5,5-dialkylhydantoin, die in Lösung gebracht werden kann, wodurch die Bildung einer konzentrierten Lösung erleichtert wird, z. B. für die Räume der Geflügelindustrie, besitzt eine derartige konzentrierte Lösung, wenn sie verdünnt wird, wie durch Zugabe zu Prozesswasser, das in dem Räumen verwendet wird, mikrobiozide Aktivität durch das 1,3-Dihalogen-5,5-dialkylhydantoin. Die erfindungsgemäß verwendeten wässrigen Lösungen können somit geeigneterweise geringe Mengen eines unschädlichen, harmlosen, wasserlöslichen, organischen Lösungsmittels enthalten, das mindestens in den beteiligten Dosierniveaus ungiftig ist, wie Acetonitril.
In Fällen, in denen extrem starke biozide Aktivität erwünscht ist, wie während periodischer Reinigungs- und Desinfektionsoperationen, können konzentrierte wässrige Lösungen der erfindungsgemäßen Mikrobiozide direkt auf Oberflächen von Geflügelverarbeitungsgeräten, Instrumenten und/oder Vorrichtungen aufgebracht werden, die mit pathogenen Mikroorganismen belastet sind. Solche konzentrierten Lösungen können beispielsweise bis zu 150 000 ppm oder 160 000 ppm oder mehr aktives Brom und bis zu etwa 66 667 ppm oder etwa 71 111 ppm aktives Chlor enthalten, bestimmbar durch konventionelle Stärke-Iod-Titration. Gewünschtenfalls kann ein Teil dieser konzentrierten Lösung mit irgendeiner geeigneten Wassermenge verdünnt werden, bevor sie direkt auf die Oberflächen dieser Geflügelverarbeitungsgeräte, Instrumente und/oder Vorrichtungen aufgebracht wird, vorausgesetzt natürlich, dass die verdünnte Lösung noch eine mikrobiozid wirkende Menge an aktiven Bromspezies für die betreffende Verwendung aufweist. Konzentrierte erfindungsgemäße Lösungen können auch Prozesswasser, das in Geflügelverarbeitungsoperationen verwendet wird, zugesetzt und somit in verdünnter Form verwendet werden, wie beispielsweise Wasser, das durch Rohrleitungen fließt, Wasser, das in Tanks fließt oder in solchen gehalten wird, und in Wasser, das in Sprühgeräten verwendet wird.
Die Menge (Konzentration) des bei der Durchführung dieser Erfindung verwendeten gewählten Mikrobiozids variiert in Abhängigkeit von verschiedenen Faktoren, wie dem speziellen verwendeten Mikrobiozid, der Art und Frequenz früherer mikrobiozider Behandlungen, den Typen und der Art der anwesenden Mikroorganismen, der Menge und Typen von Nährstoffen, die den Mikroorganismen zur Verfügung stehen, der Art und dem Ausmaß der Reinigungsaktionen, soweit vorhanden, die zusammen mit der mikrobioziden Behandlung durchgeführt worden, der Oberfläche oder dem Ort der behandelten Mikroorganismen und so weiter. In jedem Fall wird eine mikrobiozid wirksame Menge der verdünnten wässrigen Lösung des erfindungsgemäßen Mikrobiozids auf die Mikroorganismen aufgebracht oder damit in Kontakt gebracht. Die verdünnte Lösung enthält in der Regel eine mikrobiozid wirksame Menge aktives Halogen im Bereich von 2 bis 1000 ppm (Gew./Gew.), vorzugsweise im Bereich von 2 bis 500 ppm (Gew./Gew.) und insbesondere im Bereich von 25 bis 250 ppm (Gew./Gew.) aktives Halogen, das unter Verwendung des konventionellen DPD-Testverfahrens bestimmbar ist. Wenn das tatsächliche aktive Halogen in der Lösung aus aktivem Chlor besteht, ist die Konzentration der verwendeten verdünnten Lösung vorzugsweise mindestens zwei bis drei Mal höher als die Mindestwerte der genannten Bereiche. Im Fall der erfindungsgemäß verwendeten 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoine ist ein besonders bevorzugter Bereich zur Verwendung in normalen Situationen (z. B. zum Abwaschen harter Oberflächen, wie Tischen, Wänden, Böden, Fördermaschinen oder Teilen davon, wie Förderbändern oder -ketten und Messern oder Schneidklingen) der Bereich von 50 bis 150 ppm (Gew./Gew.) aktives Brom. Wenn Geflügelkarkassen oder essbare Teile davon mit erfindungsgemäß verwendeten wässrigen Lösungen in Kontakt gebracht werden, die aus mindestens einem 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin gebildet sind, ist es besonders bevorzugt, in dem Wasser zum Waschen oder anderweitigen in Kontakt bringen der Geflügelkarkassen oder essbaren Teilen davon eine mikrobiozid wirksame Menge an aktivem Brom zu verwenden, die die Haut der Karkasse nicht erheblich oder nennenswert bleicht oder einen signifikanten oder nennenswerten nachteiligen Effekt auf den organoleptischen Geschmack des gegarten Fleisches aus diesem Geflügel hat, wie Brustfleisch und Schenkelfleisch. Eine derartige Menge liegt in der Regel im Bereich von 0,5 bis 30 ppm (Gew./Gew.) und vorzugsweise im Bereich von 5 bis 25 ppm (Gew./Gew.) aktives Brom, bestimmbar nach dem DPD-Testverfahren. Ähnliche Bereiche werden als anwendbar angesehen, wenn in diesen Karkassenwaschoperationen Sulfamat-stabilisiertes Bromchlorid verwendet wird. Es sei darauf hingewiesen, dass von den genannten Bereichen abgewichen werden kann, wann immer dies als notwendig oder erwünscht angesehen wird, und dass diese Abweichungen in dem Geist und Umfang der Erfindung liegen.
In Abhängigkeit von der Weise, auf die das erfindungsgemäße Mikrobiozid verwendet wird, kann sich eine mikrobiozid wirkende Menge der erfindungsgemäßen Mikrobiozide von so wenig wie etwa 2 ppm bis zu so hoch wie der maximalen Wasserlöslichkeit des speziellen verwendeten aktiven Halogen-mikrobioziden Mittels bei der Temperatur erstrecken, bei der dieses aktives Halogen aufweisende mikrobiozide Mittel verwendet wird.
Wie aus dem obigen ersichtlich ist, gibt es zwei verschiedene Typen von Verfahren, die zur Bestimmung des aktiven Halogengehalts verwendet werden, ob aktives Chlor, aktives Brom oder beide. Um die Konzentrationen in der Nähe von etwa 500 ppm oder so (Gew./Gew.) aktivem Brom oder sagen wir etwa 1100 ppm aktivem Chlor zu messen, ist Stärke-Iod-Titration das bevorzugte Verfahren. Wenn die Konzentrationen unter den Niveaus in diesen Bereichen sind, ist das konventionelle DPD-Testverfahren geeigneter, da dieser Test zum Messen sehr niedriger aktiver Halogenkonzentrationen vorgesehen ist, z. B. Konzentrationen an aktivem Chlor im Bereich von Null bis etwa 11–12 ppm (Gew./Gew.) oder Konzentrationen an aktivem Brom im Bereich von Null bis etwa 5 ppm (Gew./Gew.). Wenn die tatsächliche Konzentration des aktiven Chlors zwischen sagen wir etwa 11–12 ppm und etwa 1100 ppm (Gew./Gew.) liegt oder wenn die tatsächliche Konzentration des aktiven Broms zwischen sagen wir etwa 5 ppm und etwa 1100 ppm (Gew./Gew.) liegt, wird die Testprobe in der Tat typischerweise mit reinem Wasser verdünnt, um die tatsächliche Konzentration zu reduzieren, damit sie im Fall von aktivem Chlor im Bereich von 4 bis 11–12 ppm liegt und im Fall von aktivem Brom im Bereich von 2 bis 5 ppm liegt, bevor die DPD-Analyse gemacht wird. Es ist ersichtlich, dass, obwohl es keine absolute Konzentrationsteilungslinie gibt, welches Verfahren zu verwenden ist, die oben angegebenen Ungefährwerte eine praktische Näherungsteilungslinie repräsentieren, da die Mengen der Wasserverdünnung von konzentrierteren Lösungen, wenn das DPD-Testverfahren verwendet wird, mit zunehmender anfänglicher aktiver Halogenkonzentration zunehmen, und derartig große Verdünnungen können leicht durch Verwendung von Stärke-Iod-Titrationen vermieden werden, wenn die konzentrierteren Lösungen analysiert werden. Kurz gesagt wird bei geeignet verdünnten Lösungen die Verwendung des DPD-Testverfahrens empfohlen, und bei konzentrierteren Lösungen wird die Verwendung von Stärke-Iod-Titration empfohlen.
Das Stärke-Iod-Titrationsverfahren zur Bestimmung von aktivem Halogen ist seit langem bekannt. Eine Beschreibung der Stärke-Iod-Titration findet sich beispielsweise im Kapitel XIV von Willard-Furman, Elementary Quantitative Analysis, 3. Ausgabe, D. Van Nostrand Company, Inc., New York, Copyright 1933, 1935, 1940. Obwohl die Details der quantitativen Standardanalyseverfahren zur Bestimmung von aktivem Halogen in diesen Produktlösungen durch Stärke-Iod-Titration von Fall zu Fall variieren können, sind die Ergebnisse von einem Standardverfahren zu dem anderen normalerweise ausreichend gleichförmig, um die Zuverlässigkeit der Ergebnisse nicht in Frage zu stellen. Ein empfohlenes Stärke-Iod-Titrationsverfahren ist wie folgt: Ein Magnetrührer und 50 ml Eisessig werden in einen Iodkolben gegeben. Die Probe (üblicherweise etwa 0,2 bis 0,5 g), bei der das aktive Halogen bestimmt werden soll, wird ge wogen und dem Kolben zugegeben, der die Essigsäure enthält. Dem Kolben werden dann Wasser (50 ml) und wässriges Kaliumiodid (15 %, Gew./Gew.; 25 ml) zugefügt. Der Kolben wird mit einem wasserdichten Verschluss verschlossen. Die Lösung wird dann 15 Minuten lang gerührt, danach wird der Stopfen aus dem Kolben gezogen und der Stopfen und der Verschlussbereich wurden mit Wasser in den Kolben abgespült. Eine Automatikbürette (Metrohm Limited) wurde mit 0,1 N Natriumthiosulfatlösung gefüllt. Die Lösung in dem Iodkolben wurde mit dem 0,1 N Natriumthiosulfat titriert; als eine blassgelbe Farbe beobachtet wurde, wurde 1 ml einer 1 gew.-%igen Stärkelösung in Wasser zugefügt, woraufhin sich die Farbe der Lösung in dem Kolben von blassgelb zu blau änderte. Die Titration mit Natriumthiosulfat wurde fortgesetzt, bis die blaue Farbe verschwand. Die Menge an aktivem Halogen wurde unter Verwendung des Gewichts der Probe und des Volumens der titrierten Natriumthiosulfatlösung berechnet. Auf diese Weise kann die Menge an aktivem Halogen, wie aktivem Chlor oder aktivem Brom, in einer wässrigen Produktlösung unabhängig von der tatsächlichen chemischen Form quantitativ bestimmt werden.
Der Standard-DPD-Test zum Bestimmen niedriger Gehalte an aktivem Halogen basiert auf den klassischen Testverfahren, die von Palin 1974 beschrieben wurden. Siehe A. T. Palin, "Analytical Control of Water Disinfection With Special Reference to Differential DPD Methods For Chlorine, Chlorine Dioxide, Bromine, Iodine and Ozone", J. Inst. Water Eng., 1974, 28, 139. Wenn es auch verschiedene modernisierte Varianten der Palin-Verfahren gibt, ist die empfohlene Version des Tests vollständig im Hach Water Analysis Handbook, 3. Auflage, Copyright 1997, beschrieben. Das Verfahren für "Gesamtchlor" (d. h. aktives Chlor) ist in jener Veröffentlichung als Method 8167 auf Seite 379 angegeben. Kurz gesagt beinhaltet der "Ge samtchlor"-Test, dass in die verdünnte Wasserprobe, die aktives Halogen enthält, ein Pulver, das DPD Indikatorpulver (d. h. N,N'-Diethyldiphenylendiamin), KI, umfasst, und ein Puffer eingebracht werden. Die vorhandene(n) aktive(n) Halogenspezies reagiert bzw. reagieren unter Bildung von Iodspezies, die den DPD-Indikator in rot/pink umwandeln. Die Intensität der Verfärbung hängt von der Konzentration der "Gesamtchlor"-Spezies (d. h. aktivem Chlor) ab, die in der Probe vorhanden sind. Diese Intensität wird mit einem Kolorimeter gemessen, das kalibriert ist, um die Intensitätsablesung in einen "Gesamtchlor"-Wert in Form von mg Cl₂/l umzuwandeln. Wenn das vorhandene aktive Halogen aktives Brom ist, wird das Ergebnis in Form von mg Cl₂/l mit 2,25 multipliziert, um das Ergebnis in Form von mg Br₂/l aktives Brom anzugeben.
Genauer gesagt ist das DPD-Testverfahren wie folgt:

1. Zur Bestimmung der Menge der in dem Wasser vorhandenen Spezies, die auf den "Gesamtchlor"-Test reagieren, sollte die Wasserprobe innerhalb von wenigen Minuten analysiert werden, nachdem sie genommen wurde, und vorzugsweise unmittelbar nachdem sie genommen wurde.
2. Hach Verfahren 8167 zum Testen der Menge an in der Wasserprobe vorhandenen Spezies, die auf den "Gesamtchlor"-Test ansprechen, beinhaltet die Verwendung des Hach Modell DR 2010 Kolorimeters. Die gespeicherte Programmnummer für Chlorbestimmungen wird durch Eingeben von "80" über die Tastatur aufgerufen, gefolgt von der Einstellung der Extinktionswellenlänge auf 530 nm, indem das Wählrad an der Seite des Instruments gedreht wird. Zwei identische Probenzellen werden mit dem zu untersuchenden Wasser bis zu der 10 ml Markierung gefüllt. Eine der Zellen wird willkürlich als die Blindprobe ausgewählt. Zu der zweiten Zelle werden die Inhalte eines DPD Total Chlorine Powder Pillow gegeben. Diese wird 10 bis 20 Sekunden zum Mi schen lang geschüttelt, wenn die Entwicklung einer rosaroten Farbe die Anwesenheit von Spezies in dem Wasser zeigt, die positiv auf das DPD-"Gesamtchlor"-Testreagenz reagieren. Auf dem Tastenfeld werden die Tasten SHIFT TIMER gedrückt, um mit einer Reaktionszeit von 3 Minuten zu beginnen. Nach drei Minuten piept das Instrument, um zu signalisieren, dass die Reaktion abgeschlossen ist. Mit dem 10 ml Zellheber wird die Blindprobenzelle in die Probenkammer des Hach Modell DR 2010 eingelassen und die Abschirmung geschlossen, um Streulichteffekte zu verhindern. Dann wird die Taste ZERO gedrückt. Nach wenigen Sekunden zeigt die Anzeige 0,00 mg Cl₂/l. Dann wird die Blindprobenzelle, die zur Nullung des Instruments verwendet wurde, aus der Zellkammer des Hach Modell DR 2010 entfernt und durch die Testprobe ersetzt, der das DPD "Gesamtchlor"-Testreagenz zugesetzt wurde. Die Lichtabschirmung wird danach geschlossen, wie für die Blindprobe, und die Taste READ wird gedrückt. Innerhalb weniger Sekunden wird das Ergebnis in mg Cl₂/l auf der Anzeige gezeigt. Dies ist der "Gesamtchlor"-Gehalt der untersuchten Wasserprobe.

In der Praxis dieser Erfindung kann das mikrobiozide System auf verschiedene Weisen verwendet werden. Beispielsweise wird eine mikrobiozid wirkende Menge eines mikrobioziden Systems auf Brombasis auf den Ort der auszulöschenden oder zu kontrollierenden Mikroorganismen aufgebracht, so dass das mikrobiozide System in Kontakt mit diesen Mikroorganismen kommt. Die Aufbringung kann durch Aufbringung durch Gießen, Sprühen, Nasswischen mit dem Mopp, Überfluten und/oder Nasswischen befallener oder möglicherweise befallener Oberflächen oder Bereichen der Verfahrensgeräte und Umgebungen, wie Böden, Wänden, Tischen, Beförderungsgeräten, Pfosten, Rohrleitungen, Tanks und Ablaufleitungen mit einer biozid wirkenden Menge einer wässrigen Lösung des Mikrobiozids durchgeführt werden.
Wenn anwendbar und möglich, können Teile der Verarbeitungsvorrichtung in eine wässrige Lösung des Mikrobiozids eingetaucht werden, wobei sie wenn nötig temporär auseinandergebaut werden. Solche Aufbringungen sollten routinemäßig mit ausreichender Frequenz durchgeführt werden, um zu gewährleisten, dass die Einwirkung gefährlicher Mikroorganismen, wie Bakterien und Biofilmen, auf das verarbeitete Geflügel in größtmöglichem Maße verhindert wird. Diese Operationen sollten, um beste Ergebnisse zu ergeben, zusammen oder in Verbindung mit gründlichen Reinigungsoperationen durchgeführt werden, wie Schrubben, Scheuern oder anderweitiger Entfernung von Ansammlungen von Biofouling oder Biofilmen, ob sichtbar oder unsichtbar. Nach dem In-Kontakt-Bringen der Mikroorganismen mit dem Mikrobiozid für einen geeigneten Zeitraum, um Eindringen in die Polysaccharidhüllen und andere Verteidigungsmechanismen verschiedener Spezies dieser Mikroorganismen zu gewährleisten, sollte der gesamte desinfizierte Bereich gewaschen werden, z. B. mit sauberem Wasser mit dem Schlauch abgespritzt werden, und vorzugsweise sollten die Waschflüssigkeiten selbst mit weiterem erfindungsgemäßem Biozid desinfiziert werden, vorzugsweise Mikrobiozid auf Brombasis, bevor sie abgelassen werden. Die Kontaktzeiten variieren natürlich in Abhängigkeit von der Frequenz und Gründlichkeit der Reinigungs- und Desinfektionsoperationen und der Identität und Konzentration der speziellen verwendeten mikrobioziden Lösung. Allgemein gesagt können die Kontaktzeiten in den Bereich von etwa wenigen Minuten bis wenigen Stunden fallen, aber es sollte irgendein Zeitraum, der die Auslöschung oder Kontrolle der Mikrobenpopulation in den Geflügelverarbeitungsbereichen bewirkt, verwendet werden und dieser liegt innerhalb des Umfangs der Erfindung.
Eine weitere Weise zur Aufbringung der mikrobiozid wirksamen Mengen der Mikrobiozide dieser Ausführungsformen der Erfindung im festen Zustand liegt darin, das Auslaugen des Mikrobiozids in Wasserströme herbeizuführen, die Rohrleitungen passieren und in Tanks oder andere Waschvorrichtungen gelangen, die bei der Verarbeitung des Geflügels verwendet werden. Geeignete feste Formen des Mikrobiozids, vorzugsweise Mikrobiozid auf Brombasis, wie Tabletten, Briketts, Pellets, Nuggets oder Körner, werden in geeignete Zuführungsvorrichtungen gegeben, durch die ein Wasserstrom geleitet wird. Der Durchgang des Wassers durch das Mikrobiozidbett führt dazu, dass der Strom kontinuierlich geringe Mengen des Mikrobiozids löst, um dadurch mikrobiozid wirkende Mengen des Mikrobiozids in dem Wasser zu liefern. 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin ist wegen seiner relativ niedrigen Löslichkeit und somit relativ niedrigen Auflösungsgeschwindigkeit in Wasser bei Raumtemperaturen zur Verwendung in diesem Aufbringungsmodus besonders bevorzugt. Dies führt zu relativ langen Nutzungsperioden, bevor die Vorrichtung, die die Feststoffe enthält, wieder aufgefüllt werden muss. Die Löslichkeit von 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin in Wasser bei 75°F (ca. 24°C) beträgt beispielsweise 405 ppm, ausgedrückt als Cl₂, während die Löslichkeiten von N,N'-Bromchlor-5,5-dimethylhydantoin und von der handelsüblichen Mischung von N,N'-Bromchlor-5,5-dimethylhydantoin und 1,3-Dichlor-5-ethyl-5-methylhydantoin bei der gleichen Temperatur 890 ppm beziehungsweise 1905 ppm betragen, beide ausgedrückt als Cl₂.
Eine besonders kostengünstige, betriebseffiziente und äußerst bevorzugte Weise zur Bildung wässriger mikrobiozider Lösungen von einem oder mehreren 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoinen, wobei eine der Alkylgruppen eine Methylgruppe ist und die andere Alkylgruppe im Bereich von 1 bis etwa 4 Kohlenstoffatomen enthält, am meisten bevorzugt 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin ("Dibromdialkylhydantoin(e)"), umfasst das Lei ten von Wasser durch ein Bett von einem oder mehreren derartigen Dibromdialkylhydantoin(en) in körniger, Nugget-, Pellet-, Tabletten- oder anderer nicht pulverförmiger Teilchenform ("Bett"), das in einem Kanister, Tank oder einem anderen ähnlichen Gefäß ("Tank") angeordnet ist. Der Tank hat vorzugsweise einen durch Druck verschließbaren Anschluss an seinem oberen Bereich, um den Inhalt des Betts periodisch wieder aufzufüllen, und das Wasser wird dazu gebracht, durch einen Teil des Betts aufwärts zu fließen. Der Tank ist insbesondere in einer Aufwärtsrichtung länglich, so dass das Bett von oben nach unten länger ist als von Seite zu Seite, wobei dieser aufwärts gerichtete Wasserfluss in das Bett so abgegeben wird, dass er nur durch einen unteren Teil des Betts aufwärts fließt und danach durch einen zwischen dem unteren und dem oberen Bereich des Bettes und des Tanks angeordneten Anschluss im Wesentlichen horizontal fließt. Auf diese Weise dient der obere Teil des Betts als Reservevorrat der Inhalte des Betts, der automatisch unter der Schwerkraft den unteren Teil des Betts speist, wenn der untere Teil des Betts langsam, jedoch gleichförmig in dem Wasserfluss aufgelöst wird. Bei diesem Betrieb ist der Wasserfluss somit vorzugsweise ein mindestens im Wesentlichen kontinuierlicher Fluss und am meisten bevorzugt ein kontinuierlicher Fluss. Verfahren zur Herstellung von Körnern, Tabletten oder anderen nicht pulverförmigen Teilchenformen von 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin sind detailliert in den in gemeinsamem Besitz befindlichen, gleichzeitig anhängigen Anmeldungen PCT/US 01/01541, 01/01545 und 01/01585 beschrieben, alle eingereicht am 17. Januar 2001, die jeweils Priorität auf Basis der jeweiligen zuvor eingereichten entsprechenden US-Anmeldungen beanspruchen. Hervorragende Verfahrenstechnologie zur Herstellung von 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin zur Verwendung zur Herstellung derartiger Körner, Tabletten oder anderer nicht pulverförmiger teilchenförmiger Formen ist detail liert in der in gemeinsamem Besitz befindlichen, gleichzeitig anhängigen Anmeldung PCT/US 01/01544 beschrieben, eingereicht am 17. Januar 2001, die Priorität auf Basis einer zuvor eingereichten entsprechenden US-Anmeldung beansprucht. Eine besonders bevorzugte Vorrichtung zur Verwendung zusammen mit solchen Körnern, Tabletten oder anderen nicht pulverförmigen Teilchenformen dieser Dibromdialkylhydantoin(e) zur Bildung wässriger mikrobiozider Lösungen davon ist von Neptune Chemical Pump Company, einer Abteilung von R. A. Industries, Inc., Lansdale, PA 19446, USA, als "Bromine Feeders" Modelle BT-15, BT-40, BT-42, BT-80, BT-160, BT-270, und BT-350, oder äquivalent erhältlich. Hervorragende Ergebnisse werden unter Verwendung von Modell BT-40 mit Körnern aus 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin Albrom^® 100 Biozid erhalten, erhältlich von Albemarle Corporation. Einzelbeschickungen derartiger Mikrobiozide in Tabletten- oder Körnerform in einer derartigen Vorrichtung können kontinuierliche, hochwirksame mikrobiozide Aktivität in Wasserkörpern der Endanwendungen bei gewöhnlichen Außenbereichstemperaturen für bis zu fünf (5) Monate liefern, ohne dass wieder aufgefüllt werden muss.
Im Fall der besser wasserlöslichen Mikrobiozide, die erfindungsgemäß verwendet werden, beinhaltet ein weiteres geeignetes Verfahren, um Kontakt zwischen dem Mikrobiozid und dem Mikroorganismus zu bewirken, das Pumpen einer wässrigen Lösung, die eine mikrobiozid wirksame Menge des Mikrobiozids enthält, die durch Rohrleitungen und in die Tanks oder anderen Waschvorrichtungen, wie Brühtanks und Kühltanks, die zur Verarbeitung des Geflügels verwendet werden. Zu Varianten dieses Verfahrens gehört die portionsweise Abgabe, wie durch Schwerkrafttropfen einer wässrigen Lösung des Mikrobiozids direkt in einen Tank oder ein anderes Gefäß, in dem Geflügel verarbeitet wird oder verarbeitet werden soll.
Ein weiterer Aufbringungsmodus gemäß diesen Ausführungsformen der Erfindung beinhaltet das Aufbringen auf oder In-Kontakt-Bringen des Geflügels selbst, in der Regel unmittelbar vor und/oder nach dem Schlachten, mit einer wässrigen Lösung des Mikrobiozids. Nachdem für eine geeignete Kontaktzeit gesorgt wurde; um Bakterien auf den Oberflächen des Geflügels auszulöschen, kann das Geflügel dann abgewaschen werden, um sowohl das überschüssige Mikrobiozid als auch die abgetötete Mikrobenpopulation von den freiliegenden Oberflächen des Geflügels selbst zu entfernen. Die inneren Organe des Geflügels können nach dem Schlachten ebenfalls behandelt und auf die gleiche Weise abgewaschen werden. Die Aufbringung(en) der mikrobioziden Lösung(en) auf diese Weise kann irgendeine geeignete Form annehmen, z. B. Verwendung von wässrigen Sprays, die eine mikrobiozid wirkende Menge des verwendeten Mikrobiozids enthalten, oder Eintauchen des Geflügels oder innerer Organe davon in einem oder mehrere Tanks, die wässrige Lösungen von mikrobiozid wirkenden Mengen des verwendeten Mikrobiozids enthalten.
Vorzugsweise werden zwei oder mehr der vorhergehenden Verfahren zur Aufbringung der erfindungsgemäßen Mikrobiozide verwendet. Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform wird ein Mikrobiozid dieser Ausführungsformen der Erfindung, vorzugsweise eine wässrige mikrobiozide Lösung auf Brombasis, aufgebracht, indem (i) periodisch mindestens Teile, wenn nicht alles der Geflügelverarbeitungsvorrichtung zur Desinfektion oder Entkeimung mit einer mikrobiozid wirkenden Menge einer wässrigen Lösung von mindestens einem Mikrobiozid in diesen Ausführungsformen der Erfindung in Kontakt gebracht werden, und (ii) die freiliegenden Oberflächen des Geflügels mit einer mikrobiozid wirkenden Menge einer wässrigen Lösung von mindestens einem Mikrobiozid in diesen Ausführungsformen der Erfin dung in Kontakt gebracht werden, vorzugsweise einer Lösung eines Mikrobiozids auf Brombasis vor und/oder nach, vorzugsweise nach Töten des Geflügels. Gemäß einer anderen bevorzugten Ausführungsform wird ein Mikrobiozid dieser Ausführungsformen der Erfindung, vorzugsweise eine wässrige mikrobiozide Lösung auf Brombasis, aufgebracht, indem (i) periodisch mindestens Teile, wenn nicht alles der Geflügelverarbeitungsvorrichtung zur Desinfektion oder Entkeimung mit einer mikrobiozid wirkenden Menge einer wässrigen Lösung von mindestens einem Mikrobiozid in diesen Ausführungsformen der Erfindung in Kontakt gebracht werden, und (ii) die essbaren Teile und/oder inneren Organe des getöteten Geflügels mit einer mikrobiozid wirkenden Menge einer wässrigen Lösung von mindestens einem Mikrobiozid in diesen Ausführungsformen der Erfindung in Kontakt gebracht werden, vorzugsweise einer Lösung eines Mikrobiozids auf Brombasis.
Besonders bevorzugte Verfahren dieser Erfindung sind jene, bei denen das Geflügel durch eine Reihe von Stufen verarbeitet wird, zu denen die Folgenden gehören: (a) Aufhängen des Geflügels in sich bewegenden Klemmen oder Ketten, (b) Betäuben, aber nicht Töten des Geflügels, beispielsweise durch Verwendung eines geeigneten Gases oder durch In-Kontakt-Bringen mindestens der Köpfe des Geflügels mit einem zusammen mit Wasser angewendeten Elektroschock, um das Geflügel zu betäuben, z. B. indem die Köpfe in ein Wasserbad getaucht werden, das einen geeigneten Strom führt, um das Betäuben zu bewirken, (c) Durchtrennen der Jugularvenen und/oder Karotisarterien am Nacken des betäubten Geflügels entweder manuell mit einem Messer oder automatisch mit einer mechanischen Schneidevorrichtung, (b) Ablaufen lassen des Blutes aus den Karkassen, (e) Brühen der Vögel mit heißem Wasser, z. B. in einem Brühtank, um die Entfernung der Federn zu erleichtern, (f) Rupfen des Geflügels, (g) Entfernen der Köpfe und Füße des Geflügels, (h) Ausnehmen des Geflügels entweder manuell mit einem Messer oder automatisch mit einer mechanischen Ausnehmevorrichtung, (i) Abtrennen der Eingeweide von den Karkassen, (j) Waschen der Karkassen und (k) Kühlen der Karkassen, z. B. in Wasser, beispielsweise durch Passage der Karkassen durch mindestens einen und oft zwei Kühltanks oder durch Luftkühlung. Die Brühstufe wird typischerweise mit Wassertemperaturen im Bereich von 50 bis 60°C durchgeführt, wobei die niedrigeren Temperaturen bevorzugt sind, um eine normale, gelb gefärbte Haut zu behalten. Die höheren Temperaturen werden üblicherweise im Zusammenhang mit Puten und ausgedienten Legehennen verwendet. Die verwendeten Kühltemperaturen reduzieren typischerweise die Karkassentemperatur auf unter etwa 4°C, wobei die Endtemperaturen der fertigen Karkassen zum Transport so niedrig wie etwa –2°C sind. Es können andere Stufen eingeschlossen werden, und in einigen Fällen können eine oder mehrere der Stufen (a) bis (j) geändert oder überarbeitet werden, oder die Sequenz der Stufen kann in gewissem Maße geändert oder überarbeitet werden, um sich gegebenen Umständen anzupassen. Beispiele für zusätzliche Stufen, die eingeschlossen werden können, sind Inspektionsstufen, z. B. durch Personal der staatlichen Behörden, und Wachstauchen im Fall von Wassergeflügel, um den Rupfungsgrad zu verbessern. Inspektionen werden oft nach der Ausweidestufe durchgeführt, wie vor dem Abtrennen der Eingeweide von den Karkassen. Wachstauchen wird typischerweise bei der Verarbeitung von Wassergeflügel verwendet, deren Federn in der Regel schwieriger zu entfernen sind als sagen wir bei Hühnchen. Das Wachstauchen wird in der Regel direkt nach Gebrauch der Rupfmaschinen durchgeführt, die Kautschuk-"Finger" verwenden, um die Federn abzuschlagen. Die Wachstauchstufe beinhaltet typischerweise das Tauchen der teilweise gerupften Karkasse in geschmolzenes Wachs, das in einem Tank enthalten ist, das Härtenlassen des Wachses auf der Karkasse und anschließendes Entfernen der Wachsbeschichtung, beispielsweise durch Abziehen derselben zusammen mit den Federn, die in das Wachs eingebettet sind. Dieser Vorgang kann nach Wunsch wiederholt werden, bevor zu der nächsten Stufe in dem Verfahren weitergegangen wird, z. B. Entfernung der Köpfe und Füße. Ein illustrierendes Beispiel einer geeigneten Revision der Abfolge der Stufen wäre die Durchführung der Stufe (g) vor Stufe (d) anstatt nach Stufe (f). Nach dem Lesen dieser Offenbarung können sich einem Fachmann andere geeignete Sequenzrevisionen ergeben, und diese brauchen hier daher nicht weiter ausgeführt zu werden.
Bei der obigen Verarbeitung kann die mikrobiozide Wirkung der Mikrobiozide gemäß diesen Ausführungsformen der Erfindung in irgendwelchen von vielen geeigneten Stufen in der Operation angewendet werden. Eine aufbringbare erfindungsgemäße mikrobiozide Lösung kann beispielsweise auf irgendwelche oder alle der verwendeten Verarbeitungsgeräte aufgebracht werden, einschließlich Messern, Beförderungsvorrichtung, den Oberflächen der geleerten Brühtanks, Rupfvorrichtung (z. B. Kautschuk-"Finger"), Messern und mechanischer Vorrichtung, die zum Schneiden oder Ausweiden des Geflügels verwendet wird, aller Oberflächen, die in Kontakt mit dem Blut oder den Eingeweiden des Geflügels kommen, einschließlich Tischen, Förderbändern und allen Oberflächen, die nach Abtrennung der Eingeweide in Kontakt mit den Karkassen kommen. Die aufbringbaren erfindungsgemäßen Entkeimungslösungen können durch Tauchen, Sprühen, Überfluten oder jede andere Weise aufgebracht werden, um zu gewährleisten, dass die mikrobiozid wirkende Lösung mit den Oberflächen in Kontakt gebracht wird, die unerwünschte Mikroorganismen wie Bakterien und/oder Biofilm (Biofouling) enthalten oder diesen ausgesetzt sind.
Eine andere Weise, auf die bei der obigen Verarbeitung die mikrobiozide Wirkung der aufbringbaren erfindungsgemäßen Biozide aufgebracht werden kann, beinhaltet das Zugeben einer mikrobiozid wirkenden Menge des Mikrobiozids zu dem Wasser, das in einer oder mehreren Stufen der Verarbeitung verwendet wird. Das Wasser in dem Brühtank/den Brühtanks und/oder in dem Kühltank/den Kühltanks kann so behandelt werden. Ein weiterer Modus ist das Zufügen einer mikrobiozid wirkenden Menge des Mikrobiozids zu dem Wasser, das zum Waschen der Karkassen und der Eingeweide an verschiedenen Punkten verwendet wird, wo diese Teile gehandhabt, getrennt und/oder verarbeitet werden. Die Dosierniveaus können an diesen verschiedenen Punkten in der Verarbeitung gleich oder verschieden sein, wie es als erforderlich oder wünschenswert angesehen wird.
Die Praxis und Vorteile dieser Erfindung werden durch die folgenden nicht-einschränkenden Beispiele illustriert.
Beispiel 1
Es wurden Vergleichstests durchgeführt, um die Wirkung auf Geflügelkarkassenbakterien (Escherichia coli Feldstamm) während eines 1,5 Stunden langen normalen Eintauchens in einen Kühltank in Wasser, das unterschiedliche Mikrobiozidzusammensetzungen enthielt, zu bestimmen. Der Effekt dieser Behandlung auf das restliche Kühltankwasser wurde ebenfalls untersucht. Die Karkassen wurden zuerst in ein warmes Bad getaucht, das 10⁴ E. Coli pro ml Flüssigkeit enthielt. Die Karkassen wurden danach in Kühltanks getaucht, die normale organische Fluide (Blut, Fett, Haut und Fleischpartikel) enthielten und eine der jeweiligen Mikrobiozidzusammensetzungen enthielten, die getestet wurden. Die Gesamtbakterienzählung des Gesamtvogels (sowohl innen als auch außen) wurde zur Bestim mung der Wirksamkeit verschiedener Mikrobiozidzusammensetzungen verwendet. Die getesteten Mikrobiozidzusammensetzungen waren Aquatize^® Biozid (Bioxy Incorporated, 3733 National Drive, Suite 115, Raleigh, NC 27612-4845, USA), Natriumhypochlorit (Clorox^® Bleiche), Natriumbromid (zugeführt als 40 % Lösung in Wasser), Kombinationen aus Natriumhypochlorit und Natriumbromid, und konzentrierte alkalische wässrige Lösung, die aus Bromchlorid und Sulfamatanion (SSBC) hergestellt worden war, (Stabrom^® 909 Biozid; Albemarle Corporation).
Die Versuchsereignisse und das Experimentdesign, die verwendet wurden, waren wie folgt:

a) Bei allen Behandlungen wurden insgesamt 190 Vögel auf normale Weise verarbeitet. Jede beteiligte Behandlung verwendete 10 Vögel.
b) Ein warmes (100°F, 37°C) Bad wurde hergestellt, das 5 × 10⁴ DelMarVa (Delaware-Maryland Farmbereich) Escherichia coli Feldstammbakterien pro ml enthielt. Für jeden Vogel wurden mindestens 200 ml Gesamtbadfluid bereitgestellt.
c) Alle Vögel (sowohl Kontrollen als auch behandelte) wurden zufällig in das warme Bad eingetaucht. Es wurden sowohl die inneren als auch die äußeren Karkassenbereiche eingetaucht, um vollständige Bedeckung zu gewährleisten.
d) Jede separate Kühltankwasserlösung (normales Leitungswasser, pH-Wert eingestellt auf 8,5, Eis wurde zugefügt, um für Temperaturen < (7°C) 45°F zu sorgen) enthielt 2 × 10³ Bakterien pro ml.
e) Die Kühltankwasserlösungen (mindestens jeweils 750 ml) wurden für jede Desinfektionsbehandlung hergestellt, und die Vögel wurden für eine Zeit von 1,5 Stunden eingetaucht.
f) Während der 1,5-stündigen Kühlperiode wurden alle 10 Minuten die Vögel vollständig aus der Lösung gehoben und danach wieder in die Lösung eingetaucht. Nach der 1,5-stündigen Kühlperiode wurden die Vögel aus dem Kühlwasser genommen und 30 Sekunden lang ablaufen gelassen, danach sofort (innerhalb von 5 Minuten) in einen sterilen Ganzvogel-Stomacher-Beutel gegeben, der 400 ml Verdünnungsmittel-(Butterfield's Phosphate Diluent)-Bakteriensammlung enthielt.
g) Jeder Karkasse, die in einem sterilen Stomacher-Beutel enthalten war, wurde Verdünnungsmittel (400 ml) zugegeben, während sichergestellt wurde, dass das Verdünnungsmittel in das Innere der Bauchhöhle gegossen wurde. Die Karkasse wurde innen und außen mit einer schaukelnden Bewegung eine Minute lang gespült (etwa 35 UpM). Dies ließ sich am besten bewerkstelligen, indem die Broilerkarkasse mit einer Hand und der geschlossene obere Bereich des Beutels mit der anderen Hand gegriffen wurde, danach mit einer Hin- und Herbewegung in einem 18–24 Zoll Bogen geschaukelt wurde, wodurch gewährleistet wurde, dass alle Karkassenoberflächen (innen und außen) gespült wurden.
h) Die Spüllösungen wurden danach aus jedem Stomacher-Beutel in individuelle Probenflaschen überführt, wobei darauf geachtet wurde, dass gewährleistet war, dass die Informationen über das Sammeldatum, die Sammelzeit und die Behandlungsgruppe denjenigen der Probe entsprach. Jede Flasche wurde mit Parafilm versiegelt und im Kühlschrank aufbewahrt.
i) Die Verdünnung der Fluide wurde so durchgeführt, dass auf der MacConkey-Platte eine Zählung von 25 bis 250 vorhanden war. Nachdem die Fluide verdünnt worden waren, wurden 0,1 ml Fluid auf eine MacConkey-Agarplatte gegeben und die Bakterienzählungen bestimmt. In Fällen, wo das Ziel einer Zählung von 25 bis 250 auf der Platte nicht erreicht wurde, wurde eine weitere Verdünnung und erneutes Aufbringen auf die Platte durchgeführt.
j) Nachdem alle Karkassen für jede Behandlung eingetaucht worden waren, wurden Wasserprobenbakterien bestimmt.
k) Es wurden die Gesamtbakterien pro Vogel berechnet.

Das verwendete Kühlwasser war aus 950 ml Leitungswasser, 50 ml Blut, 10 g gemahlenem Bauchfett und 10 g Fleischpartikeln zusammengesetzt. Um die als Testbakterienquelle verwendete Bakterienkultur zu bilden, wurde eine Übernachtkultur in BHI-Bouillon in frische BHI-Bouillon überführt und bei 37°C 1,5 Stunden lang auf eine Populationsdichte von ungefähr 8 × 10⁶ DFU pro ml (optische Dichte bei 600 nm, ~0,1) inkubiert. Diese Bakterienlösung wurde auf die gleiche Weise in 5 × 10⁴ zugefügt, um eine Wasserlösung zu liefern, um alle Vögel vor dem Kühlen vorzutauchen. Vor dem Tauchen der Vögel für den Kühlzeitraum von 1,5 Stunden wurden dem Kühlwasser zusätzlich weitere Bakterien in der Menge von 2 × 10³ Gesamtbakterien pro ml Kühlwasser zugegeben. Die Messung der mikrobiellen Verunreinigung der Geflügelkarkasse wurde erreicht, indem die gesamte Karkassenoberfläche (innen und außen) mit geeigneter steriler Stripplösung abgewaschen wurde, anschließend die Stripplösung gesammelt und auf die Platte gebracht wurde, um die Bakterien zu zählen.
Tabelle 1 zeigt das Experimentdesign dieser Testgruppe. Tabelle 1

¹ Negativkontrolle enthielt verunreinigtes Wasser (Bakterien 2,67 × 10⁵ pro ml).
² Positivkontrolle ist normale Geflügelindustriepraxis der Zugabe von 50 ppm Cl₂-Äquivalent.

Tabellen 2 bis 4 zeigen jeweils die Verfahren zur Bestimmung der Verdünnungsniveaus im Falle der Kühltanklösungen, die aus Clorox^® Bleichlösung und 40 % Wasserlösung von Natriumbromid gebildet wurden, um 50 ppm, 100 ppm und 150 ppm Cl₂-Äquivalente zu erreichen. Tabelle 2 – Verdünnungen für 50 ppm Cl₂-Äquivalent
Tabelle 3 – Verdünnungen für 100 ppm Cl₂-Äquivalent
Tabelle 4 – Verdünnungen für 150 ppm Cl₂-Äquivalent

NaBr = SANIBROM 40 Biozid (enthält 40 % Natriumbromid, Wasserlösung). Clorox^® Bleiche (Bleach) enthält 12,5 % Chlor.

Die Berechnungen für Verdünnungen unter Verwendung der anderen Biozide dieser Gruppe, die getestet wurden, basierten auf dem Folgenden: Aquatize^® Biozid ist eine Lösung, die 3,67 % Natriumchlorit und Stabrom^® 909 Biozidlösung enthält, sie wurde als 1,57-faches Cl₂-Äquivalentniveau berechnet. Die Ergebnisse dieser Gruppe von Tests sind in den Tabellen 5 bis 7 zusammengefasst. Tabelle 5 – Karkassenbakterienreduktion

¹ Der Wert repräsentiert einen Durchschnitt von 10 Vögeln pro Behandlung.
² Die Karkasse 1 der Testgruppe enthielt 2,67 × 10⁵ Gesamtbakterienzählung.

¹ Der Wert steht für Bakterienzählung pro ml Behandlungswasser.

Beispiel 2
Das Verfahren von Beispiel 1 wurde wiederholt, außer dass die auf mikrobiozide Aktivität getesteten Materialien (a) Natriumhypochlorit (Clorox^®-Bleiche), (b) die Kombination aus Natriumbromid und Natriumhypochlorit und (c) 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin (DBDMH) waren, in diesen Testgruppen 100 Vögel verwendet wurden und das Kühlwasser pro Liter aus 950 ml Wasser, 50 ml Blut, 10 g gemahlenem Bauchfett, 10 g Fleischpartikeln und 10 g Haut mit Fett zusammengesetzt war.
Das in dieser Testgruppe verwendete Experimentdesign ist in Tabelle 8 zusammengefasst. Tabelle 8

¹ Negativkontrolle enthielt verunreinigtes Wasser (Bakterien 2,67 × 10⁵ pro ml).
² Positivkontrolle ist normale Geflügelindustriepraxis der Zugabe von 50 ppm Chlor.

Die erfindungsgemäße mikrobiozide Lösung wurde auf die folgende Weise hergestellt:

1. Zur Bildung einer Vorratslösung wurden 100 g 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin (DBDMH) in 10 Liter (10 000 ml) Wasser 20 Minuten lang eingerührt. Die resultierende klare Lösung enthielt nach der Filtration 1300 mg pro Liter als Br₂. Dies entsprach 580 mg pro Liter (oder 580 ppm Cl₂), ausgedrückt als Cl₂.
2. Die Waschlösung von DBDMH mit einem Gehalt von 50 ppm Cl₂-Äquivalentlösung wurde gebildet, indem 875 ml der obigen Vorratslösung mit 10 Litern (10 000 ml) der oben hergestellten Hühnchenkühlwasserlösung gemischt wurden. Die Waschlösungen von DBDMH, die 100 ppm Cl₂-Äquivalent und 150 ppm Cl₂-Äquivalent enthielten, wurden auf die gleiche Weise hergestellt, außer dass 1750 ml beziehungsweise 2625 ml der obigen Vorratslösung mit getrennten 10 Liter Portionen der oben hergestellten Hühnchenkühlwasserlösung gemischt wurden.

Tabelle 9 fasst die in dieser Testgruppe erhaltenen Ergebnisse zusammen. Tabelle 9 – Karkassenbakterienreduktion

¹ Der Wert steht für Bakterienzählung pro ml Behandlungswasser.
² Negativkontrolle enthielt verunreinigtes Wasser (Bakterien 2,67 × 10⁵ pro ml).
³ Positivkontrolle ist normale Geflügelindustriepraxis der Zugabe von 50 ppm Chlor.

Beispiel 3
Diese Gruppe von Tests wurde durchgeführt, um die Wirkung von Clorox^® Bleiche, Aquatize^® Biozid und 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin (DBDMH) auf Karkassenbakterienrückstände (Escherichia coli Feldstamm) nach 1,5 Stunden in einer Kühltank-"Suppe" zu bestimmen. Tests wurden mit Suppen mit pH 7, pH 8 und pH 9 (eingestellt mit Trinatriumphosphat) bei Ganzvogel-Bakterienzählungen durchgeführt. Tests bei pH 8 wurden auf individuelle Bakterienzählungen durchgeführt.
Allgemein beinhalteten die Tests normale Verarbeitung von 56 Tage alten Vögeln und Eintauchen der Karkassen zuerst in ein Warmbad, das 10⁴ pro mL Escherichia coli, 10⁴ pro mL Salmonella enteritidis, 10⁴ pro mL Pseudomonas aeruginosa, 10⁴ pro mL Campylobacter jejuni und 10⁴ pro mL Verderbbakterien von jeweils drei Stämmen {Listeria monocytogenes und Shigella sonnei) enthielt. Die Karkassen wurden danach in eine Kühltank-"Suppe" getaucht, die normale organische Fluids (Blut, Fett, Haut und Fleischpartikel) enthielt und die Mikrobiozide enthielten, die getestet wurden.
Tabellen 10 und 11 fassen das Experimentdesign dieser Testgruppe zusammen.
Tabelle 10 – Ganzvogel-Bakterienzählungen bei pH 7, pH 8 und pH 9
Tabelle 11 – Bakterienzählungen des individuellen Vogels bei pH 8
Die für diese Gruppe von Tests verwendete Bakterienvorratslösung wurde hergestellt, indem jede Bakterienprobe in der entsprechenden in Tabelle 12 gezeigten Bouillon gezüchtet wurde. Jede derartige Bouillon hatte ein Volumen von mindestens 500 ml, und die Bakterien wurden mindestens 6 Stunden lang wachsen gelassen. Die Behälter wurden beobachtet, und es wurde nicht zugelassen, dass sie ein schweres, trübes visuelles Aussehen hatten, was gezeigt hätte, dass das Wachstum über einen zu langen Zeitraum stattgefunden hatte. Die Lösungen hatten somit nur das Aussehen, dass sie nebelig oder irgendwie nicht klar waren. Tabelle 12 – Bouillonbehandlungen

¹ Shigella sonnei, Listeria monocytogenes, Escherichia coli, Salmonella enteritidis, Pseudomonas aeruginosa und Campylobacter jejuni.

1. Zur Bildung einer Vorratslösung wurden 100 g 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin (DBDMH) in 10 Liter (10 000 ml) Wasser 20 Minuten lang eingerührt. Nach der Filtration enthielt die resultierende klare Lösung 1300 mg pro Liter als Br₂. Dies entsprach 580 mg pro Liter (oder 580 ppm Cl₂), ausgedrückt als Cl₂.
2. Die Kühlwasserlösung von DBDMH mit einem Gehalt von 10 ppm Cl₂-Äquivalent wurde gebildet, indem 175 ml der obigen Vorratslösung mit 10 Litern (10 000 ml) der oben hergestellten Hühnchenkühlwasserlösung gemischt wurden. Die Kühlwasserlösung von DBDMH, die 20 ppm Cl₂-Äquivalent und 150 ppm Cl₂-Äquivalent enthielten, wurden auf die gleiche Weise hergestellt, außer dass 350 ml der obigen Vorratslösung mit einer weiteren 10 Liter Portion der oben hergestellten Hühnchenkühlwasserlösung gemischt wurden.

Tabelle 13 zeigt die Zusammensetzung der in diesen Tests verwendeten "Hühnersuppe". Tabelle 13 – Zusammensetzung der "Hühnersuppe"

¹ Das kombinierte Material wurde über Nacht gekühlt.
² Das Material wurde gemahlen und vor der Verwendung aggressiv gerührt.

Das für die Probennahme aus dem Ganzvogelwaschen verwendete Verfahren war wie folgt:

1. Alle Proben wurden auf ≤ 50°F (10°C) gehalten.
2. Die mikrobiologische Analyse der Proben begann mit 24 Stunden Probenahme.
3. Die Informationen über die individuelle Probenbezeichnung, Datum des Sammelns, Zeitpunkt des Sammelns (Phase während der Verschiebung), Behandlungsgruppe und Position des Probepunkts wurden auf jeder Probenflasche vermerkt.
4. Zu jeder definierten Probenzeit wurden die Karkassen individuell aus der Verarbeitungsstraße genommen, wobei Latex- oder Gummihandschuhe getragen wurden. Die Handschuhe wurden zwischen jedem Sammeln mit Alkohol gespült.
5. Jeglicher Fluidüberschuss wurde von der Karkasse ablaufen gelassen. Jede individuelle Karkasse wurde in einen sterilen Stomacher-Beutel überführt.
6. Zu jeder Karkasse, die in dem sterilen Stomacher-Beutel enthalten war, wurden 400 ml Butterfield's Phosphate Diluent (BPD) gegeben, während sichergestellt wurde, dass das BPD in das Innere des Karkassenhohlraums gegossen wurde. Die Karkasse wurde innen und außen mit einer wiegenden Bewegung eine Minute gespült (etwa 35 UpM). Dies ließ sich am besten bewerkstelligen, indem die Broilerkarkasse mit einer Hand und der geschlossene obere Bereich des Beutels mit der anderen Hand gegriffen wurde, danach mit einer Hin- und Herbewegung in einem 18–24 Zoll Bogen geschaukelt wurde, wodurch gewährleistet wurde, dass alle Karkassenoberflächen (innen und außen) gespült wurden.
7. Die Spüllösungen aus jedem Stomacher-Beutel wurden in die Probeflaschen überführt, wobei darauf geachtet wurde, dass gewährleistet war, dass die Informationen über das Datum des Sammelns, den Zeitpunkt des Sammelns (Phase während der Verschiebung), die Behandlungsgruppe und Position des Probenahmepunkts denjenigen der Probe entsprachen.
8. Jede Probe wurde mit Parafilm versiegelt und in einen Styrolbehälter mit zerstoßenem Eis oder Trockeneis oder gefrorene Gefrierpacks gegeben, um über Nacht an ein Testlabor ausgeliefert zu werden.
9. Alle gefüllten Styrolbehälter wurden in den 1 bis 2 Stunden bis zum Abholen durch den Kurier zum Transport in einem gekühlten (nicht unter dem Gefrierpunkt) Bereich gehalten.

Quantitative oder qualitative Bestimmungen der Bakterienorganismen wurden gemäß der folgenden Methodik durchgeführt:
Aerobierplattenzählungen – Zählregeln nach BAM, 8. Auflage, Kapitel 3.
Koliforme und E. coli-Zählungen – AOAC, 991.14, Petrifilm.
Salmonella – AOAC 986.35, ELISA unmodifiziertes Screening.
Salmonella – USDA LC-75, Inzidenz.
Campylobacter – USDA LC-69, Inzidenz.
Listeria – USDA LC-57, Inzidenz.
Die Versuchsereignisse und das Experimentdesign, die in dieser Testgruppe verwendet worden waren, waren genauer gesagt wie folgt:

a) Die verwendeten Testorganismen waren: Escherichia coli ATCC 11229 Pseudomonas aeruginosa ATCC 15442 Salmonella enteritidis ATCC 13076 Shigella sonnei ATCC 9290 Listeria monocytogenes ATCC 7644 Campylobacter jejuni ATCC 29428
b) Testverfahren: Alle Teststämme wurden individuell bei 35°C 24 Stunden lang in den in Tabelle 12 spezifizierten Medien gezüchtet. Die Zellen wurden 10 Minuten lang durch Zentrifugieren mit 10000 × g geerntet und zwei Mal mit Butterfield's Phosphate Buffer (BPB pH 7,2) gewaschen. Die Zellen wurden in BPB erneut suspendiert, um eine Zellsuspension von ungefähr 1,0 × 10⁸ koloniebildenden Einheiten (CFU)/ml für jeden Mikroorganismus zu erhalten. Die ange strebten Inokulierungsniveaus waren ungefähr 10⁶ CFU/ml in den fertigen Testlösungen. Im Falle von S. enteritidis und P. aeruginosa wurden die Spezies gewaschen, indem sie in vorbereitete sterile Zentrifugenröhrchen mit Käsetuchfiltern gegossen wurden. Die Kultur wurde dann pelletiert und mit den obigen Techniken gewaschen und drei Mal wiederholt.
c) Die Vögel (56 Tage alt) wurden unter normalen kommerziellen Bedingungen verarbeitet.
d) Die Bakterien wurden zu einer großen Charge "Hühnersuppe" gegeben, und danach wurden Aliquote der resultierenden Mischung gleichmäßig über die Kühlwässer verteilt, die für jeden Test verwendet wurden. Danach wurde die spezielle zu testende Desinfektionszusammensetzung zu einem der Kühlwässer gegeben. Die Kühlwässer enthielten jeweils 10⁴ pro mL Escherichia coli, 10⁴ pro mL Salmonella enteritidis, 10⁴ pro mL Campylobacter jejuni und 10⁴ pro mL Verderbbakterien aus jeweils drei Stämmen (Listeria monocytogenes, Pseudomonas aeruginosa und Shigella sonnei).
e) Zu jedem der 50 Gallon-Behälter, die diese jeweiligen Behandlungen (oder Kontrollen) enthielten, wurden Vögel gegeben und wurden während des Kühlzeitraums von 1,5 Stunden in den Behältern gehalten.
f) Während des Kühlzeitraums von 1,5 Stunden wurde der Inhalt alle 10 Minuten kräftig gerührt.
g) Nach dem Kühlzeitraum von 1,5 Stunden wurden die ganzen Vögel in individuelle sterile Stomacher-Beutel gegeben und die Ganzvogelspülung (wie oben beschrieben) wurde durchgeführt, und Proben der Spülflüssigkeit wurden auf die entsprechenden Agarplatten gegeben. Die Platten wurden 24 Stunden lang bei 37°C in den Inkubator gegeben. Dann wur den die Platten nach 24 Stunden abgelesen, um die Gesamtzählung jeder Platte zu bestimmen.

Die Ergebnisse dieser Gruppe von Tests sind in den Tabellen 14 und 15 zusammengefasst. Tabelle 14

¹ Jeder Wert steht für 50 Vögel pro Behandlung.

¹ Escherichia coli, Salmonella enteritidis, Pseudomonas aeruginosa, Campylobacter jejuni, Listeria monocytogenes und Shigella sonnei
² Anmerkung: Kreuzverunreinigung ist in einer Verarbeitungsumgebung wahrscheinlicher, in der Vögel verarbeitet und Proben zur individuellen Kulturbestimmung genommen wurden.
³ Jeder Wert steht für 25 Vögel pro Behandlung.

Beispiel 4
Es wurde eine Studie durchgeführt, um den Effekt von Clorox^®-Bleiche und 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin (DBDMH) auf Karkassenbakterienrückstände nach 1,5 Stunden in einer Kühltanklösung und Verderb bei 20-tägiger Langzeitlagerung (verursacht durch bakterielle Verunreinigung) zu bestimmen. Die Tests wurden bei pH 8 durchgeführt (eingestellt mit Trinatriumphosphat). Hautpigmentierung (Minolta Farbmessgerät L-Wert oder Helligkeit, a-Wert oder Röte und b-Wert oder Gelbheit) wurden vor und nach der Verarbeitung bestimmt.
Allgemein beinhaltete die Studie normale Verarbeitung von 56 Tage alten Vögeln durch Eintauchen der Karkassen zuerst in ein Warmbad, das 10⁴ pro mL Escherichia coli, 10⁴ pro mL Salmonella enteritidis, 10⁴ pro mL Pseudomonas aeruginosa, 10⁴ pro mL Campylobacter jejuni und 10⁴ pro mL Verderbbakterien von jeweils drei Stämmen (Listeria monocytogenes und Shigella sonnei) enthielt. Die Karkassen wurden danach in eine Kühltank-"Suppe" getaucht, die normale organische Fluids (Blut, Fett, Haut und Fleischpartikel) und verschiedene Desinfektionsmittel enthielt (als Testmaterialien bezeichnet).
Vier Testgruppen von Vögeln wurden bei pH 8 auf Ganzvogel-Bakterienzählungen getestet. Tabelle 16 beschreibt das Experimentdesign für diese vollständigen Bakterienzähltests.
Tabelle 16
Eine DBDMH-Vorratslösung und Testlösungen, eine Bakterienvorratslösung und eine "Hühnersuppe", wurden wie in Beispiel 3 hergestellt. Die Bakterienbouillonbehandlungen, das Ganzvogel-Wasch-Probenahmeverfahren und die zur quantitativen oder qualitativen Bestimmung der bakteriellen Organismen verwendeten Methoden waren wie in Beispiel 3.
Die Versuchsereignisse und das Experimentdesign, die in dieser Testgruppe verwendet worden waren, waren genauer gesagt wie folgt:

a) Die verwendeten Testorganismen waren: Escherichia coli ATCC 11229 Pseudomonas aeruginosa ATCC 15442 Salmonella enteritidis ATCC 13076 Shigella sonnei ATCC 9290 Listeria monocytogenes ATCC 7644 Campylobacter jejuni ATCC 29428
b) Testverfahren: Alle Teststämme wurden individuell bei 35°C 24 Stunden lang in den in Tabelle 12 spezifizierten Medien gezüchtet. Die Zellen wurden 10 Minuten lang durch Zentrifugieren mit 10000 × g geerntet und zwei Mal mit Butterfield's Phosphate Buffer (BPB pH 7,2) gewaschen. Die Zellen wurden in BPB erneut suspendiert, um eine Zellsuspension von ungefähr 1,0 × 10⁸ koloniebildenden Einheiten (CFU)/ml für jeden Mikroorganismus zu erhalten. Die angestrebten Inokulierungsniveaus waren ungefähr 10⁶ CFU/ml in den fertigen Testlösungen. Im Falle von S. enteritidis und P. aeruginosa wurden die Spezies gewaschen, indem sie in vorbereitete sterile Zentrifugenröhrchen mit Käsetuchfiltern gegossen wurden. Die Kultur wurde dann pelletiert und mit den obigen Techniken gewaschen und drei Mal wiederholt.
c) Die Vögel (56 Tage alt) wurden unter normalen kommerziellen Bedingungen verarbeitet.
d) Die Bakterien wurden zu einer großen Charge "Hühnersuppe" gegeben, und danach wurden Aliquote der resultierenden Mischung gleichmäßig über die Kühlwässer verteilt, die für jeden Test verwendet wurden. Danach wurde die spezielle zu testende Desinfektionszusammensetzung zu einem der Kühlwässer gegeben. Die Kühlwässer enthielten jeweils 10⁴ pro mL Escherichia coli, 10⁴ pro mL Salmonella enteritidis, 10⁴ pro mL Campylobacter jejuni und 10⁴ pro mL Verderbbakterien aus jeweils drei Stämmen (Listeria monocytogenes, Pseudomonas aeruginosa und Shigella sonnei).
e) Zu jedem der 50 Gallon-Behälter, die diese jeweiligen Behandlungen (oder Kontrollen) enthielten, wurden Vögel gegeben und während des Kühlzeitraums von 1,5 Stunden in den Behältern gehalten.
f) Während des Kühlzeitraums von 1,5 Stunden wurde der Inhalt alle 10 Minuten kräftig gerührt.
g) Nach dem Kühlzeitraum von 1,5 Stunden wurden die ganzen Vögel für die 20-tägige Lagerung in einen handelsüblichen Kühlschrank gegeben.
h) Die Hautpigmentierung (unter Verwendung des Minolta Farbmessgeräts, L oder Helligkeit, a oder Röte und b oder Gelbheit) wurde bei allen Vögeln vor und unmittelbar nach dem Kühlen nach der Verarbeitung bestimmt.
i) Am Tag 0 wurden aus jeder Behandlung insgesamt 5 ganze Vögel pro Behandlung statistisch gewählt und in individuelle sterile Stomacher-Beutel gegeben, und die Ganzvogelspülung (wie in Beispiel 3 beschrieben) wurde durchgeführt und Proben der Spülflüssigkeit wurden auf geeignete Agarplatten gegeben.
j) An jedem der nachfolgenden Tage 2, 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 und 20 wurden aus jeder Behandlung insgesamt 5 ganze Vögel pro Behandlung statistisch gewählt und in individuelle sterile Stomacher-Beutel gegeben, und die Ganzvogelspülung (wie in Beispiel 3 beschrieben) wurde durchgeführt und Proben der Spülflüssigkeit wurden auf geeignete Agarplatten gegeben.
k) Alle der behandelten Agarplatten wurden 24 Stunden lang bei 35°C in einen Inkubator gestellt. Die Platten wurden nach 24 Stunden abgelesen, um die Gesamtzählung jeder Platte zu bestimmen.

Die Ergebnisse dieser Tests sind in den Tabellen 17 bis 30 zusammengefasst. Tabelle 17
Tabelle 18

¹ Anmerkung: Mittelwerte innerhalb einer Reihe ohne gemeinsamen hochgestellten Index sind signifikant verschieden (P < 0,05), bestimmt mittels geringstwertiger Differenz.

Tabelle 19

In den Tabellen 19 bis 30 repräsentiert jede Zahl der durchschnittlichen Bakterienzählung pro Vogel den Mittelwert von 5 Vögeln.
Beispiel 5
Das Ziel dieser Studie lag in der Bestimmung der Auswirkung der Bleiche als mikrobiozider Kontrolle (20 ppm Cl₂-Äquivalent) und der mikrobioziden Kontrolle mit 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin (DBDMH) auf die organoleptische Geschmacksbewertung von sowohl Brust- als auch Schenkelfleisch. Es wurde eine formale Bewertung mit einer geübten Geschmacksbewertungsversuchsgruppe durchgeführt. Der Versuch wurde mit 49 Tage alten Vögeln durchgeführt, die ohne Belastung mit äußeren Bakterienquellen und unter sterilen Bedingungen verarbeitet worden waren.
In dieser Studie wurden insgesamt 120 Vögel verwendet. Sechzig der Vögel dienten als Kontrollgruppe. Diese wurden Behandlung in einem Kühltank unterzogen, der Clorox^® Bleiche in einer Konzentration von 20 ppm Cl₂-Äquivalent enthielt.
Die anderen 60 Vögel wurden in einem Kühltank auf die gleiche Weise behandelt, außer dass das Kühlwasser DBDMH in der Konzentration von 20 ppm Cl₂-Äquivalent enthielt. Während der 1,5-stündigen Kühlperiode in dem Kühltank wurde der Inhalt des Tanks alle 10 Minuten kräftig gerührt. Nach dem Kühlzeitraum von 1,5 Stunden wurden die ganzen Vögel für die 20-tägige Lagerung individuell in Beutel gefüllt und in einen handelsüblichen Kühlschrank gegeben. Nach der Alterung wurden individuelle Brust- und Schenkelproben geschnitten und auf eine Innentemperatur von 190°F (88 °C) gegart. Die Geschmacksbewertung erfolgte durch 10 geübte Geschmacksbewertungsexperten. Es wurde ein Bewertungssystem ("1" oder "2") verwendet, wobei "1" die Probe mit dem besseren Geschmack bedeutete. Es wurde ein einfacher Mittelwert der Bewertungen der Subjekte oder Beurteilungen pro Person verwendet. Die statistische Bewertung wurde verwendet, indem jedes Subjekt als Block mit Δ 0,05 verwendet wurde.
Tabellen 31 und 32 beschreiben die Ergebnisse dieser Geschmackbewertungen. Tabelle 31 – Auswirkung der Kühltankwasserbehandlung auf die Geschmackspräferenz (Brustfleischbewertung)

¹ S (Subjekt) = Subjektnummer des geübten Versuchsteilnehmers
² Anmerkung: Mittelwerte innerhalb einer Reihe ohne gemeinsamen hochgestellten Index sind signifikant verschieden (P < 0,05), bestimmt mittels geringstwertiger Differenz.

Beispiel 6
Das Ziel dieser Studie war die Bestimmung des Effekts von Clorox^®-Bleiche und 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin (DBDMH) auf individuelle Karkassenbakterienfeldstämme nach 1,5 Stunden in einer Kühltanklösung und Verderb bei 20-tägiger Langzeitlagerung (verursacht durch bakterielle Verunreinigung) in einem Graded Level Study Model (Studienmodell mit abgestuften Werten). Nach der normalen Verarbeitung von 56 Tage alten Vögeln wurden die Karkassen zuerst in ein Warmbad getaucht, das 10⁴ CFU pro mL Escherichia coli, 10⁴ CFU pro mL Salmonella enteritidis, 10⁴ CFU pro mL Pseudomonas aeruginosa, 10⁴ CFU pro mL Campylobacter jejuni und 10⁴ CFU pro mL Verderbbakterien von jeweils zwei Stämmen (Listeria monocytogenes und Shigella sonnei) enthielt. Die Karkassen wurden danach in eine Kühltank-"Suppe" getaucht, die normale organische Fluids (Blut, Fett, Haut und Fleischpartikel) und verschiedene Desinfektionsmittel enthielt (als Testmaterialien bezeichnet). Die Tests wurden bei pH 8 durchgeführt (eingestellt mit Trinatriumphosphat).
Hautpigmentierung (Minolta Farbmessgerät L-Wert oder Helligkeit, a-Wert oder Röte und b-Wert oder Gelbheit) wurden vor und nach der Verarbeitung bestimmt. Hautbakterien verschiedener Stämme nach dem Kühlen wurden über einen Zeitraum von 20 Tagen bestimmt. Es wurde eine sensorische Bewertung durchgeführt, um Verderbzeiten und Lagerbarkeit zu demonstrieren. Nach einer Salmonelleninfektion in Kühltanks wurde USDA HACCP Salmonellendetektion simuliert und berichtet.
Die getesteten Materialien und das experimentelle Design dieser Tests waren wie in Tabelle 33 zusammengefasst. Tabelle 33
Eine DBDMH-Vorratslösung und DBDMH-Testlösungen mit den in Tabelle 33 spezifizierten Konzentrationen, eine Bakterienvorratslösung und eine "Hühnersuppe", wurden wie in Beispiel 3 hergestellt. Die Bakterienbouillonbehandlungen, das Ganzvogel-Wasch-Probenahmeverfahren und die zur quantitativen oder qualitativen Bestimmung der bakteriellen Organismen verwendeten Methoden waren wie in Beispiel 3.
Die Versuchsereignisse und das Experimentdesign, die in dieser Gruppe von Tests verwendet wurden, waren die gleichen wie in Beispiel 5 mit den folgenden Ausnahmen:

a) die Temperatur während der 20-tägigen Lagerungsperiode im Kühlschrank betrug 4°F (–15°C).
b) Beobachtungen des Grads des "Aufblähens" (definiert als zusätzliches Wasser oder zusätzliche Luft unter dem Hautbereich, die als störend angesehen werden) wurden bei allen verarbeiteten Vögeln durchgeführt.
c) An jedem der Probenahmetage 0, 2, 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 und 20 wurden zehn Karkassen von jeder Behandlung analysiert, indem 23,8 cm² Haut von der Brust bis zum Nacken mit einer Schablone und einem sterilen Skalpell entfernt wurden. Jede Hautprobe wurde mit 15 ml zugesetzter Butterfield's Phosphatpufferlösung (PBPS) in einen Beutel gegeben und 60 Sekunden lang in einem Stomacher-Beutel behandelt. Es wurde in BPBS eine 10-fache Verdünnungsreihe der Mischung angefertigt, und zwei Parallelproben von jeweils 20 ml wurden auf dem geeigneten Plattenzählagar ausgestrichen, um die gesamten lebensfähigen Organismen zu bestimmen. Die Platten wurden 24 Stunden lang bei 35°C inkubiert. Mittelwerte wurden aus den beiden Bestimmungen der drei Proben berechnet, die aus jeder Kombination von Kühlen und Lagerung genommen wurden. Die Bakterienzahlen wurden als gepoolter oder gemittelter log₁₀ der koloniebildenden Einheiten (CFU) pro Quadratzentimeter angegeben.
d) Am Probenahmetag 0 waren insgesamt 102 der restlichen 110 Karkassen aus jeder Behandlung (alle aufgeblähten und ungewöhnlich verarbeiteten Vögel wurden entfernt) "Ganzvögel", die nach dem in Beispiel 3 beschriebenen Probennahmeverfahren gewaschen worden waren. Die Salmonellendetektion wurde notiert und als Anzahl der positiven Salmonellenkolonien auf 51 Vögel und % des gesamten Werts angegeben.

Tabellen 34 bis 37 fassen die Ergebnisse dieser Testgruppe zusammen. Tabelle 34

¹ Zwölf (12) auf 51 oder weniger wird gemäß den USDA HACCP Standards als statistisch akzeptabel angesehen. Es wurden insgesamt 102 Vögel zur Bestimmung der salmonellenpositiven Proben verwendet und ein einfacher Mittelwert bestimmt.

¹ Vier (4) oder mehr pro Behandlung wird als in hohem Maße zu beanstanden angesehen.

¹ Die kontinuierliche Skala für sensorische Geruchsattribute des nicht strukturierten frischen Inneren der Karkasse lag im Bereich von dem Wert 1,0 (niedrigste Intensität) bis zu dem Wert 9,0 (höchste Intensität). Anmerkung: Mittelwerte innerhalb einer Reihe ohne gemeinsamen hochgestellten Index sind signifikant verschieden (P < 0,05), bestimmt mittels geringstwertiger Differenz.
² Fünf (5) oder mehr wird als in hohem Maße zu beanstanden angesehen.

¹ Anmerkung: Mittelwerte innerhalb einer Reihe ohne gemeinsamen hochgestellten Index sind signifikant verschieden (P < 0,05), bestimmt mittels geringstwertiger Differenz.
² Hautpigmentierung (Minolta Farbmessgerät L-Wert oder Helligkeit, a-Wert oder Röte und b-Wert oder Gelbheit)

Die Ergebnisse der obigen Tests auf den Effekt der Kühlwasserbehandlung auf das Wachstum der Pseudomonas-Spezies auf der Hühnchenhaut sind in 1 graphisch dargestellt. 2 zeigt graphisch die Ergebnisse der obigen Tests auf den Effekt der Kühltankbehandlung auf das Wachstum der gesamten Aerobierbakterien auf der Hühnchenhaut.
Beispiel 7
Es wurde eine Studie durchgeführt, um die Wirksamkeit mehrerer erfindungsgemäßer mikrobiozider Verbindungen sowie von Natriumhypochlorit bei der Verwendung als Karkassenspülungen zu bestimmen.
Das in dieser Studie verwendete erfindungsgemäße Mikrobiozid war 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin (DBDMH). N,N'-Bromchlor-5,5-dimethylhydantoin (BCDMH) und Stabrom^® 909 Biozid (Albemarle Corporation), eine konzentrierte alkalische wässrige Lösung, die aus Bromchlorid und Sulfamatanion hergestellt war (SSBD), bilden keinen Teil dieser Erfindung.
Nach normaler Verarbeitung von 56 Tage alten Vögeln wurden die Karkassen zuerst in ein Warmbad getaucht, das 10⁴ pro mL Escherichia coli, 10⁴ pro mL Salmonella enteritidis, 10⁴ pro mL Pseudomonas aeruginosa, 10⁴ pro mL Campylobacter jejuni und 10⁴ pro mL Verderbbakterien von jeweils zwei Stämmen {Listeria monocytogenes und Shigella sonnei) enthielt. Die Karkassen wurden danach in eine Kühltank-"Suppe" getaucht, die normale organische Fluids (Blut, Fett, Haut und Fleischpartikel) und verschiedene Desinfektionsmittel enthielt (als Testmaterialien bezeichnet). Die Ganzvogel-Bakterienzähltests wurden bei pH 8 durchgeführt. Der Effekt der Testverbindungen auf die Hautpigmentierung wurde durch Verwendung des Minolta Farbmessgeräts, L-Wert oder Helligkeit, a-Wert oder Röte und b-Wert oder Gelbheit, bestimmt. Hautbakterien verschiedener Stämme nach dem Kühlen wurden über einen Zeitraum von 20 Tagen bestimmt. Der Verderb unter Verwendung sensorischer Gerüche als Modell wurde als die Zeit bestimmt, die erforderlich war, um einen fauligen ammoniakartigen Geruch zu erzeugen. Nach einer Salmonelleninfektion in Kühltanks wurde USDA HACCP Salmonellendetektion simuliert und berichtet. Tabelle 38 beschreibt die Testmaterialdosierungen und das Gesamtdesign dieser Gruppe von Tests. Tabelle 38

* = kein Teil der Erfindung

DBDMH und BCDMH Vorratslösungen und verdünnte Testlösungen (20 ppm Cl₂-Äquivalent), eine Bakterienvorratslösung und eine "Hühnersuppe" wurden wie in Beispiel 3 hergestellt, außer dass das Stabrom^® 909 Biozidkonzentrat verdünnt wurde, indem 30 ml pro Liter Wasser unmittelbar vor der Aufbringung zugegeben wurden. Diese verdünnte Lösung wurde sowohl innen als auch außen in Mengen von 200 ml pro Vogel auf die Vögel gesprüht. Die Bakterienbouillonbehandlungen, das Ganzvogel-Wasch-Probenahmeverfahren und die zur quantitativen oder qualitativen Bestimmung der bakteriellen Organismen verwendeten Methoden wurden wie in Beispiel 3 durchgeführt.
Die Details in Bezug auf die verwendeten Versuchsereignisse sowie das in diesen Tests verwendete detaillierte Experimentdesign waren wie in Beispiel 6 beschrieben. Die einzigen Ausnahmen waren:

a) Im Fall der Vögel der Testgruppe 5 (siehe Tabelle 38) wurden die 10 Vögel, während die Karkasse noch warm war, jeweils innen und außen mit einer Handvernebelungsdüse mit 200 ml der 3 % Lösung von Stabrom 909 Biozid (SSBC) eingesprüht. Vorhergehende Qualitätskontrollversuche mit Farb stoff hatten sichergestellt, dass mit der Verwendung von 200 ml Flüssigkeitsspray vollständige Bedeckung der Karkasse erreicht wurde. Das Spray wurde 60 Sekunden auf den warmen Karkassen bleiben gelassen.
b) Die Behandlung am Probenahmetag 0 von insgesamt 102 der restlichen 110 Karkassen aus jeder Behandlung, die das "Ganzvogel"-Waschen und die Salmonellendetektion beinhaltete, die alle wie in Beispiel 6 beschrieben waren, wurde nur auf die Vögel der Testgruppen 1 bis 4 angewendet (siehe Tabelle 38).

Tabellen 39 bis 42 fassen die Ergebnisse dieser Testgruppe zusammen. Der Effekt der Kühltankbehandlung dieses Beispiels auf das Wachstum der Pseudomonas-Spezies auf Hühnchenhaut sind in 3 graphisch dargestellt. 4 zeigt graphisch die Ergebnisse der Tests dieses Beispiels auf den Effekt der Kühltankbehandlung auf das Wachstum der gesamten Aerobierbakterien auf der Hühnchenhaut. Tabelle 39

* = kein Teil der Erfindung
¹ Zwölf (12) auf 51 oder weniger wird gemäß den USDA HACCP Standards als statistisch akzeptabel angesehen. Es wurden insgesamt 102 Vögel zur Bestimmung der salmonellenpositi ven Proben verwendet und ein einfacher Mittelwert bestimmt.

* = kein Teil der Erfindung
¹ Vier (4) oder mehr pro Behandlung wird als in hohem Maße zu beanstanden angesehen.

* = kein Teil der Erfindung
¹ Die kontinuierliche Skala für sensorische Geruchsattribute des nicht strukturierten frischen Inneren der Karkasse lag im Bereich von dem Wert 1,0 (niedrigste Intensität) bis zu dem Wert 9,0 (höchste Intensität). Anmerkung: Mittelwerte innerhalb einer Reihe ohne gemeinsamen hochgestellten Index sind signifikant verschieden (P < 0,05), bestimmt mittels geringstwertiger Differenz.
² Fünf (5) oder mehr wird als in hohem Maße zu beanstanden angesehen.

* = kein Teil der Erfindung
¹ Anmerkung: Mittelwerte innerhalb einer Reihe ohne gemeinsamen hochgestellten Index sind signifikant verschieden (P < 0,05), bestimmt mittels geringstwertiger Differenz.
² Hautpigmentierung (Minolta Farbmessgerät L-Wert oder Helligkeit, a-Wert oder Röte und b-Wert oder Gelbheit)
³ Bei allen Behandlungen wurde die Hautpigmentierung bei 120 Vögeln gemessen, außer bei SSBC, wo nur 10 Vögel verwendet wurden.

Es wurde eine Reihe von Tests durchgeführt, die die mikrobiozide Wirksamkeit mehrerer Mikrobiozide zur Auslöschung oder Kontrolle verschiedener Bakterienspezies der Typen zeigt, die in Geflügelverarbeitungssystemen vorhanden sind.
Zu einer derartigen Reihe von Tests gehörten die Bestimmungen der mikrobiologischen Kontrolle gegen Escherichia coli Bakterien. Zu einer weiteren Testreihe gehörte die Bestimmung der mikrobiologischen Kontrolle gegen Enterococcus faecium. In jedem Fall wurden Vergleichstests auf die gleiche Weise unter Verwendung des AOAC-Testverfahrens durchgeführt. Bei diesem Test wurde eine Kultur der Mikroorganismen verschiedenen Konzentrationen einer Testlösung ausgesetzt, die aus einer wässrigen Vorratslösung der zu testenden Verbindung hergestellt worden war. In verschiedenen Zeitintervallen wurde das Halogen in den Testsuspensionen chemisch neutralisiert, und die Menge der verbleibenden lebensfähigen Bakterien wurde durch Aufbringen auf eine Nähragarplatte und Inkubieren für 2 Tage bei 37°C ausgezählt. Die Ergebnisse sind als der log₁₀ der koloniebildenden Einheiten (CFU) angegeben. Der Test bestimmte die erforderliche Konzentration der Verbindung, um vollständiges Abtöten innerhalb von 30 Sekunden zu erreichen (d. h. keine verbleibenden lebensfähigen Bakterien).
Tabelle 43 fasst die in den Tests unter Verwendung von 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin (DBDMH) und N,N'-Bromchlor-5,5-dimethylhydantoin (BCDMH) erhaltenen Daten zusammen, wobei der Mikroorganismus in jedem Fall Escherichia coli war. Es ist ersichtlich, dass das 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin den Test mit 1 mg Brom als Br₂ pro Liter Wasser bestand, wie durch das vollständige Abtöten innerhalb von 30 Sekunden gezeigt wird, während 1,3-Bromchlor-5,5-dimethylhydantoin zwei mg Brom als Br₂ pro Liter Wasser benötigte, um vollständiges Abtöten innerhalb von 30 Sekunden zu erreichen. Tabelle 43 – Wirksamkeit gegen Eschericia coli

* = kein Teil der Erfindung

Tabelle 44 fasst die in den Tests unter Verwendung von 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin (DBDMH) und N,N'-Bromchlor-5,5-dimethylhydantoin (BCDMH) erhaltenen Daten zusammen, wobei der Mikroorganismus in jedem Fall Enterococcus faetum war. Tabelle 44 zeigt, dass das 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin den Test mit 1 mg Brom als Br₂ pro Liter Wasser bestand, wie durch das vollständige Abtöten innerhalb von 30 Sekunden gezeigt wird, während 1,3-Bromchlor-5,5-dimethylhydantoin zwei mg Brom als Br₂ pro Liter Wasser benötigte, um vollständiges Abtöten innerhalb von 30 Sekunden zu erreichen. Tabelle 44 – Wirksamkeit gegen Enterococcus faecium

* = kein Teil der Erfindung

Tabelle 45 fasst Testergebnisse, die bei MBEC Biofilm Technologies, Inc., Calgary, Kanada, durchgeführt worden waren, über die Wirksamkeit verschiedener Biozide bei der Biofilmentfernung zusammen. Das an der Universität von Calgary entwickelte Testverfahren verwendete eine Vorrichtung, die das Wachstum von 96 identischen Biofilmen unter sorgfältig kontrollierten Bedingungen ermöglichte. Die Vorrichtung bestand aus einem zweiteiligen Gefäß, das eine obere Platte, die 96 Stifte enthielt, aufwies, die gegen eine untere Platte abgedichtet war. Die untere Platte konnte entweder aus einer Wanne (zum Biofilmwachstum) oder einer Standard-96-Mulden-Platte (zum Biozidtest) bestehen. Die Biofilme entwickelten sich auf den 96 Stiften. Die Vorrichtung wurde als allgemeines Verfahren zur Bewertung der Wirksamkeit von Antibiotika und Biozide gegen Biofilme verwendet. Siehe in diesem Zusammenhang H. Ceri et al., "The MBEC Test: A New In Vitro Assay Allowing Rapid Screening for Antibiotic Sensitivity of Biofilm", Proceedings of the ASM, 1998, 89, 525; Ceri, et al., "Antifungal and Biocide Susceptibility testing of Candida Biofilms using the MBEC Device", Proceedings of the Interscience Conference on Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 1998, 38, 495, und H. Ceri, et al., "The Calgary Biofilm Device: A New Technology for the Rapid Determination of Antibiotic Susceptibility of Bacterial Biofilms", Journal of Clinical Microbiology, 1999, 37, 1771-1776.
Mit dem obigen Testverfahren und Testgerät wurden sechs Biozidsysteme bewertet. Fünf dieser Systeme waren oxidierende Biozide, nämlich Chlor (aus NaOCl), Halogen (aus NaOCl + NaBr), Halogen (aus BCDMH), Brom (aus DBDMH) und Chlor (aus Trichlorisocyanursäure), alle ausgedrückt als Br₂ in mg/l, so dass alle Testergebnisse die gleiche Basis hatten. Das sechste Biozid war Glutaraldehyd, ein nicht-oxidierendes Biozid.
Diese Biozidsysteme wurden verwendet, um Biofilme aus Pseudomonas aeruginosa (ATCC 15442) zu testen. Dies ist ein Gram-negatives Bakterien, das allgegenwärtig in mikrobiologischen Schleimen vorkommt, die sich in vielen Wassersystemen befinden. Siehe in diesem Zusammenhang J. W. Costerton und H. Anwar, "Pseudomonas aeruginosa: The Microbe and Pathogen", in Pseudomonas aeruginosa Infections and Treatment, A. L. Baltch und R. P. Smith, Herausgeber, Marcel Dekker Publishers, New York, 1994. Auf dem Gebiet der Geflügelverarbeitung berichten S. Notermans, J. Dormans und G. C. Mead, Biofouling, 1991, Band 5, Seiten 21–36, über Beobachtungen von Biofilmen in Geflügelschlachthäusern durch Verwendung von Rasterelektronenmikroskopie.
In Tabelle 45 beziehen sich die angegebenen MBEC (Mindestkonzentration zum Auslöschen von Biofilm) auf die in dem Test verwendete einstündige Biozidkontaktzeit. Die für die Halogen enthaltenden Biozide angegebenen Werte sind in Form von mg/l Brom als Br₂ angegeben. Die Daten für Glutaraldehyd beziehen sich auf mg/L aktiver Bestandteil. Die Daten zeigen, dass das DBDMH mit einem MBEC von 1,4 mg/l Brom als Br₂ wirksamer als jedes andere der unter diesen Bedingungen getesteten Biozide war. In der Tat war nur etwas mehr als halb so viel Brom aus DBDMH zum Entfernen des Biofilms erforderlich, verglichen mit dem Gesamthalogen, ausgedrückt als Br₂, als bei BCDMH erforderlich war.
Tabelle 45 – Wirksamkeit gegen Pseudomonas aeroginosa-Biofilm
In einer anderen Gruppe von Tests, deren Ergebnisse in den 5 bis 10 gezeigt sind, wurden mehrere erfindungsgemäße Mikrobiozide auf Brombasis in Tests verwendet, die ihre Wirksamkeit zum Auslöschen oder Kontrollieren der heterogenen Plattenzählungsbakterien illustrieren, d. h. einer Mischung natürlich vorkommender pathogener Bakterien aus verschiedenen nicht-identifizierten Spezies. Diese Bakterien wurden sowohl in Form von Biofilmen als auch in planktonischer Form getestet.
Die in diesen Tests verwendeten experimentellen Bedingungen beinhalteten die Verwendung einer Vorrichtung, die aus drei parallelen transparenten PVC-Probenahmerohren bestand. Diese Rohre wurden zum Sammeln von Biofilm (d. h. ungestielt oder an der Oberfläche haftenden) Bakterienproben verwendet, eines als Kontrollrohr, eines für eine relativ niedrige Biozidkonzentration und das dritte für eine höhere Biozidkonzentration. Das Biozidtesten wurde in jedem Fall in drei Phasen geteilt. Die erste war eine 14-tägige Inokulation. Die nächste war eine 48-stündige Desinfektionsperiode. Als letztes wurde eine 2-wöchige Erholungsperiode bereitgestellt. Das im Test befindliche Biozid wurde träge dosiert, und während der ersten Einwirkungsstunde wurde die Konzentration eingestellt, um das gewünschte Konzentrationsniveau zu erreichen.
Die Quelle der natürlich gewachsenen heterotrophen Plattenzählungs-(HPC) Bakterien war Sediment und dazugehöriges Wasser, das aus dem Umlauf-Heißwassersystem eines Krankenhauses aufgefangen worden war. In das Krankenhauswassersystem wurden Filterkartuschen eingesetzt, und nach etwa zwei Monaten hatte sich eine geeignete Sedimentmenge auf den Filtern angesammelt. Die aufgefangene Filter/Wasser-Suspension wurde dann zur Kultur geerntet. Das Inokulum der Biozidtestexperimente bestand aus entchlortem Leitungswasser, HPC-kultivierter Vorratslösung und einer Nährstoffzusatzlösung. Das Inokulum wurde 14 Tage lang vor Beginn des Tests bei 37°C kultiviert. Das Inokulum wurde zusammen mit weiterem entchlortem Leitungswasser in die Vorrichtung eingebracht, die aus den drei parallelen transparenten PVC-Probenahmeleitungen zusammengesetzt war. Diese Mischung wurde 14 Tage lang zwischendurch mit einer Geschwindigkeit von 3,2 Gallon pro Minute rezirkuliert, um eine konsistente Biofilm- und planktonische HPC-Bakterienpopulation zu produzieren.
Am Ende der 14-tägigen Inokulierungsperiode wurden vor dem Biozidtesten Proben dieser Bakterien aufgefangen. Bei jedem Test wurden die HPC-Bakterien dann mit einem spezifizierten Niveau eines Biozids auf Brombasis getestet, und in Intervallen von 1, 2, 3, 12 und 48 Stunden wurden Proben genommen. Diese Proben wurden genommen, indem die Innenseite eines vorher abgemessenen Abschnitts (Länge 17/32 Zoll) des transparenten PVC-Probennahmerohrs abgetupft wurde. Die Tupfen wurden 1 Minute lang in 5 ml entionisiertem Wasser mit 0,1 ml Neutralisierungsmittel (um restliches Brom zu entfernen) vortexiert, bevor sie auf die Platte gebracht wurden. Gleichzei tig wurden Wasserproben zur Zählung der planktonischen HPC-Bakterien genommen.
Nach der 48-stündigen Biozidtestperiode beinhaltete das Verfahren die Bereitstellung der zweiwöchigen Erholungsperiode. Der Zweck der Bereitstellung dieser Erholungsperiode lag in der Bestimmung, wie rasch die lebensfähigen HPC-Bakterien, die noch vorhanden waren, sowohl den Biofilm als auch in planktonischer Form das Umlaufwasser wieder bevölkerten. Das Umlaufwasser wurde somit aus der Testvorrichtung ablaufen gelassen, und die Vorrichtung wurde mit hitzesterilisiertem Leitungswasser wieder aufgefüllt, das auch zwischendurch wie zuvor rezirkulieren gelassen wurde. Nach 7 und 14 Tagen wurden wieder Proben aus der Vorrichtung entnommen, und die Biofilm- und planktonischen HPC-Bakterien wurden auf die gleiche Weise wie zuvor gezählt.
Die Ergebnisse dieser Tests sind in den 5 bis 10 in graphischer Form angegeben. In den Tests von 5 wurden die aktiven Bromspezies, die aus Sulfamat-stabilisiertem Bromchlorid (Stabrom^® 909 Biozid, Albemarle Corporation, kein Teil der Erfindung) stammten, in 0,5 ppm beziehungsweise 2 ppm, beide als Brom, zum Testen von mit Biofilm assoziierten HPC-Bakterien verwendet. Außerdem wurde auf die gleiche Weise eine Kontrolle durchgeführt, außer dass kein Biozid verwendet wurde. Es ist zu erkennen, dass bei der höheren Bromkonzentration fast 99 % der Biofilm-assoziierten HPC-Bakterien innerhalb von 3 Stunden ausgelöscht wurde, während bei 0,5 ppm als Brom etwa 95 % der HPC-Bakterien ausgelöscht wurden. Es ist auch zu erkennen, dass bei beiden Niveaus der aktiven Bromkonzentration während der 48-stündigen Biozidtestperiode sehr wenig Erholung der Biofilm-HPC-Bakterien stattfand. Selbst nach der vollständigen Erholung von zwei Wochen hatten die HPC-Biofilmbakterien ihr ursprüngliches Populationsniveau noch nicht wieder erreicht.
In 6 waren die in den Tests verwendeten aktiven Bromspezies und ihre Konzentrationen die gleichen wie in 5, und es wurde eine Kontrolle verwendet. Bei diesen Tests lagen die HPC-Bakterien jedoch in planktonischer Form vor. Es ist zu erkennen, dass bei der höheren Bromkonzentration mehr als 90 % der planktonischen HPC-Bakterien innerhalb von 3 Stunden ausgelöscht wurden, während bei 0,5 ppm als Brom etwa 85 % der planktonischen HPC-Bakterien ausgelöscht wurden. Diese Testergebnisse zeigen auch, dass selbst bei diesen niedrigen Niveaus an aktivem Brom die planktonischen HPC-Bakterien nicht in der Lage waren, während der Erholungsperiode von 2 Wochen ihren ursprünglichen Niveaus entsprechende Populationen wieder herzustellen.
Die in 7 gezeigten Ergebnisse beinhalteten die Verwendung höherer Konzentrationen der aktiven Bromspezies, die von Sulfamat-stabilisiertem Bromchlorid (Stabrom^® 909 Biozid, kein Teil der Erfindung) abgeleitet waren, als in den Tests von 5. Dieses Mikrobiozid wurde speziell in 4 ppm beziehungsweise 10 ppm, beide als Brom, zum Test von Biofilm-assoziierten HPC-Bakterien verwendet. Außerdem wurde auf die gleiche Weise eine Kontrolle durchgeführt, außer dass kein Biozid verwendet wurde. Es ist zu sehen, dass bei der höheren Bromkonzentration innerhalb von drei Stunden fast 99,9 % der Biofilm-assoziierten HPC-Bakterien ausgelöscht wurden. Bei 4 ppm als Brom wurden fast 99 % der HPC-Bakterien innerhalb von drei Stunden ausgelöscht. Es ist auch zu erkennen, dass bei beiden Niveaus der aktiven Bromkonzentration während der 48-stündigen Biozidtestperiode sehr wenig Erholung der Biofilm-HPC-Bakterien stattfand. Selbst nach der vollständigen Erholungsperiode von zwei Wochen hatten die HPC-Biofilmbakterien Populationen in der Nähe ihrer ursprünglichen Niveaus noch nicht wieder erreicht.
In 8 waren die verwendeten aktiven Bromspezies und ihre Konzentrationen die gleichen wie in 7, und es wurde eine Kontrolle verwendet. in diesen Tests lagen die HPC-Bakterien jedoch in planktonischer Form vor. Es ist zu sehen, dass bei beiden Bromkonzentrationen innerhalb von drei Stunden über 99 % der planktonischen HPC-Bakterien ausgelöscht wurden. Es ist auch zu sehen, dass die Erholung der sehr geringen Mengen der lebensfähigen planktonischen HPC-Bakterien, die noch verblieben waren, innerhalb der 48-stündigen Biozidtestperiode in jedem der Tests, in denen das Brom-Biozid verwendet wurde, kaum begonnen hatte. Diese Testergebnisse zeigen auch, dass bei den planktonischen HPC-Bakterien ein Erholungszeitraum von im Wesentlichen mehr als zwei Wochen erforderlich wäre, um Populationen nahe ihren ursprünglichen Niveaus wieder herzustellen.
Die in 9 gezeigten Testergebnisse beinhalteten die Verwendung von 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin (Albrom^® 100 Biozid, Albemarle Corporation) als Quelle für aktive Bromspezies. Dieses Mikrobiozid wurde in diesen Tests in Niveaus von 0,5 ppm und 5 ppm als Brom zum Testen von Biofilm-assoziierten HPC-Bakterien verwendet. Außerdem wurde auf die gleiche Weise eine Kontrolle durchgeführt, außer dass kein Biozid verwendet wurde. Es ist aus 9 ersichtlich, dass bei der höheren Bromkonzentration innerhalb von zwölf Stunden fast 99,9 % der HPC-Bakterien ausgelöscht wurden. Bei 0,5 ppm als Brom wurden über 99 % der HPC-Bakterien innerhalb von drei. Stunden ausgelöscht. Es ist auch zu sehen, dass die sehr geringen Mengen des lebensfähigen HPC-Biofilms, die noch verblieben waren, sich innerhalb der 48-stündigen Biozidtestperiode in beiden Tests, in denen das Brom-Biozid verwendet wurde, zu erholen begannen. Diese Testergebnisse zeigen auch, dass bei den HPC-Bakterien ein Erholungszeitraum von im Wesentlichen mehr als zwei Wochen erforderlich wäre, um Populationen nahe ihren ursprünglichen Niveaus wieder herzustellen.
Bei den Tests von 10 waren die verwendeten aktiven Bromspezies und ihre Konzentrationen die gleichen wie in 9, und es wurde eine Kontrolle verwendet. In diesen Tests lagen die HPC-Bakterien jedoch in planktonischer Form vor. Es ist zu sehen, dass bei der höheren Bromkonzentration innerhalb von zwölf Stunden fast 99,99 % der planktonischen HPC-Bakterien ausgelöscht wurden. Bei 0,5 ppm als Brom wurden fast 99 % der planktonischen HPC-Bakterien innerhalb von drei Stunden ausgelöscht. Es ist auch zu sehen, dass die sehr geringen Mengen der lebensfähigen planktonischen HPC-Bakterien, die noch verblieben waren, sich innerhalb der 48-stündigen Biozidtestperiode in beiden Tests, in denen das Brom-Biozid verwendet wurde, zu erholen begannen. Diese Testergebnisse zeigen auch, dass bei den planktonischen HPC-Bakterien ein Erholungszeitraum von mehr als zwei Wochen erforderlich wäre, um Populationen nahe ihren ursprünglichen Niveaus wieder herzustellen.
Bei der Durchführung dieser Erfindung können sich Kombinationen unterschiedlicher Entkeimungsstufen unter Verwendung unterschiedlicher mikrobiozider Mittel, von denen mindestens eines ein erfindungsgemäßes Mikrobiozid ist, vorzugsweise ein oder mehrere erfindungsgemäße mikrobiozide Mittel auf Brombasis, als brauchbar erweisen. Ein erfindungsgemäßes Mikrobiozid, vorzugsweise ein erfindungsgemäßes Mikrobiozid auf Brombasis, kann beispielsweise auf verschiedene Oberflächen aufgebracht oder mit diesen in Kontakt gebracht werden, die mit der Geflügelverarbeitung assoziiert sind, wie Rohrleitungen, Tanks (z. B. der Brühtank/die Brühtanks, Kühltank(s), Förderbänder oder Förderstraßen sowie die Geflügelkarkassen selbst können mit einem antimikrobiellen Mittel behandelt werden, wie mit Lösungen oder Gelen, die Carbonsäuren (z. B. Essigsäure oder Milchsäure) und/oder Peroxycarbonsäuren, wie Peressigsäure, Peroxyoctansäure, Peroxydecansäure oder dergleichen enthalten. Die Verwendung dieser Carbonsäuren ist beispielsweise in der US-A-6 113 963 beschrieben. Das Ergebnis dieser kombinierten Operationen ist eine sehr effektive Entkeimung. Es wird in der Tat so gesehen, dass diese Kombination von Operationen zu einem höheren Grad an mikrobiologischer Auslöschung führt, als zuvor allgemein erreichbar war, insbesondere wenn das verwendete Biozid auf Brombasis 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin ist und die verwendete Carbonsäure Peressigsäure ist. Die kombinierte Wirkung dieser Mikrobiozide kann in der Tat synergistisch sein.
Ein weiteres Mikrobiozid, das in den erfindungsgemäßen kombinierten Operationen verwendet werden kann, ist Trinatriumphosphat, ein Material, das gemäß Capita et al., Meat Science, 2000, 55 (4), 471–474, von der USDA als Hilfsmittel zur Beseitigung von Salmonellen auf rohen Geflügelkarkassen zugelassen worden ist. Bei den kombinierten Operationen wird Trinatriumphosphat auf die Geflügelkarkassen aufgebracht, und eines oder mehrere der erfindungsgemäßen Mikrobiozide werden zur Entkeimung der Geräte, Instrumente und/oder Vorrichtungen verwendet, die mit der Verarbeitung des Geflügels assoziiert sind. Ebenfalls erfindungsgemäß können die kombinierten Operationen Chlordioxidbehandlungen zusammen mit der Verwendung der erfindungsgemäßen Mikrobiozide verwenden. Smith, Meat Processing, 1996, 35 (10), 47, gibt an, dass Chlordioxid von der FDA in den USA zur Verwendung in Geflügelverarbeitungswasser zugelassen worden ist, und in der Durchführung dieser Erfindung werden ein oder mehrere erfindungsgemäße Mikrobiozide zur Ent keimung verschiedener Gegenstände von Geräten, Instrumenten und/oder Vorrichtungen verwendet, die zur Verarbeitung des Geflügels verwendet werden, und Chlordioxid wird zum Entkeimen von mindestens einem Teil des Geflügelverarbeitungswassers verwendet.
Eine weitere Weise, auf die kombinierte erfindungsgemäße Operationen durchgeführt werden können, beinhaltet die Verabreichung eines geeigneten biologischen Pathogenkontrollmittels an den Verdauungstrakt des Geflügels, wie durch Zugabe dieses biologischen Mittels in das Trinkwasser des Geflügels oder das Futter des Geflügels. Zu beispielhaften biologischen Pathogenkontrollmitteln, die sich auf diese Weise verwenden lassen, gehören bestimmte Stämme von E. coli, die in der US-A-6 083 500 beschrieben sind. In der Praxis dieser Erfindung wird ein solches biologisches Pathogenkontrollmittel dem Geflügel zur Einnahme durch Trinken und/oder Essen bereitgestellt, und eine mikrobiozid wirkende Menge einer wässrigen Lösung von mindestens einem erfindungsgemäßen Biozid wird zum Desinfizieren oder Entkeimen von Geräten, Instrumenten, Vorrichtungen und/oder Wasser, die bzw. das zur Verarbeitung von Geflügel verwendet wird bzw. werden, und/oder von Karkassen und/oder Geflügelteilen verwendet, die aus der Verarbeitung von Geflügel resultieren.
Eine weitere kombinierte Operation beinhaltet (i) Behandeln der Karkassen des Geflügels mit immobilisierten Lactoferrin-antimikrobiellen Mitteln, wie in der US-A-6 172 040 B1 beschrieben, und (ii) Desinfizieren oder Entkeimen von allen oder einem Teil der Geräte, Instrumente, Vorrichtungen und/oder Wasser, die bzw. das bei der Verarbeitung des Geflügels verwendet wird bzw. werden, indem selbige(s) mit einer mikrobiozid wirksamen Menge von wässriger Lösung von minde stens einem erfindungsgemäßen Mikrobiozid in Kontakt gebracht wird bzw. werden.
Automatisierte Abgabegeräte, die zur Verwendung zur Abgabe der erfindungsgemäßen Mikrobiozide geeignet sind, ist in der Literatur beschrieben worden und mindestens in gewissem Umfang auf dem Markt erhältlich. Als Verweis auf derartige Geräte sei beispielsweise die US-A-5 683 724 genannt, in der ein automatisiertes Abgabesystem beschrieben ist.
Vermutlich sollte beschrieben werden, was "wässrig" bedeutet. Das Adjektiv "wässrig" bedeutet, dass die Lösung oder das Medium oder welches Substantiv auch immer von dem Adjektiv modifiziert wird, Wasser sein kann, unabhängig davon, ob es hochgereinigt oder von normaler Reinheit ist, so wie es aus dem Wasserhahn kommt. Da wir uns mit der Verarbeitung von Nahrungsmitteln befassen, steht außer Frage, dass man kein Abwasser oder Wasser, das letale Dosen an Giften wie Cyanid enthält, verwenden würde. Neben natürlicherweise vorkommenden Spurenverunreinigungen, die in sagen wir trinkbarem Wasser allgemein vorhanden sein können, wie normalem Brunnenwasser oder kommunalem Leitungswasser, lässt das Adjektiv "wässrig" auch die Anwesenheit gelöster Salze in dem Wasser zu, die im Verlauf der Bildung eines Mikrobiozids auf Brombasis in dem Wasser gebildet werden, z. B. durch Reaktion zwischen Bromchlorid und Natriumsulfamat in einer überbasischen wässrigen Lösung. "Wässrig" lässt überdies die Anwesenheit geringer Mengen an harmlosen unschädlichen organischen Lösungsmitteln wie Ethylalkohol zu, der als Lösungsmittel für 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin(e) verwendet werden kann. "Wässrig" lässt auch die Anwesenheit der Menge des Mikrobiozids auf Halogenbasis selbst in dem Wasser in dem Maße, in dem es sich in dem Wasser lösen kann, plus jegliche(m/n) gelösten Reaktant(en) zu, der/die nach der Reaktion verbleiben kann bzw. können. Das Wasser kann auch einige wenige Atome enthalten, die sich aus dem Gefäß lösen können, in dem die Reaktion stattfinden kann, sowie in der Luft enthaltende Verunreinigungen, die ihren Weg in das Wasser finden können. Der Begriff "wässrig" beschränkt das Medium oder Lösungsmittel nicht auf absolut reines Wasser – die wässrige Lösung oder das wässrige Medium oder dergleichen kann das enthalten, was normalerweise vorhanden ist und/oder vernünftigerweise unter den beteiligten speziellen Umständen darin erwartet werden kann, wenn der gesunde Menschenverstand eingesetzt wird.
Verbindungen, die irgendwo in diesem Dokument mit chemischem Namen oder Formel genannt sind, werden unabhängig davon, ob sie im Singular oder Plural angegeben werden, so bezeichnet, wie sie vorlagen, bevor sie in Kontakt mit anderer Substanz kamen, die mit chemischem Namen oder chemischem Typ angegeben ist (z. B. andere Komponente oder Lösungsmittel). Es kommt nicht darauf an, welche chemischen Veränderungen, falls vorhanden, in der resultierenden Mischung oder Lösung stattfinden, da diese Veränderungen das natürliche Ergebnis des Zusammenbringens der spezifizierten Substanzen unter den Bedingungen sind, die diese Offenbarung verlangt. Beispielsweise bedeuten die Formulierung "Lösung von mindestens einem 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin" und ähnliche Formulierungen, dass unmittelbar vor dem In-Kontakt-Bringen mit einem wässrigen Medium wie Wasser das mindestens eine 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin das spezifizierte 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin war. Die Formulierung ist somit eine einfache klare Weise zur Bezeichnung der Lösung und soll nicht vorschlagen oder nahe legen, dass die Chemikalie in dem Wasser unverändert vorliegt. Die Transformationen, die sich ereignen können, sind das natürliche Ergebnis des In-Kontakt-Bringens dieser Substanzen und muss daher nicht weiter ausgeführt werden.
Selbst wenn sich die Ansprüche auf Substanzen in der Gegenwartform ("umfasst" oder "ist") beziehen können, erfolgt die Bezugnahme auf die Substanz, wie sie zu der Zeit unmittelbar vor dem ersten In-Kontakt-Bringen, Vermischen oder Mischen mit einer oder mehreren anderen Substanzen gemäß der vorliegenden Offenbarung vorgelegen hat.
Außer wenn ausdrücklich anders angegeben, soll der Artikel "ein" oder "eine", falls und wie hier verwendet, nicht einschränkend sein und soll nicht als die Beschreibung oder einen Anspruch auf ein einziges Element einschränkend angesehen werden soll, das der Artikel nennt. Der Artikel "ein" oder "eine" soll, falls und wie hier verwendet, stattdessen ein oder mehrere Elemente abdecken, wenn der Text nicht ausdrücklich etwas anderes besagt.

Claims

Verfahren zum Desinfizieren von Geräten, Instrumenten, Vorrichtungen und/oder Wasser, die/das bei der Verarbeitung von Geflügel verwendet worden ist/sind, und/oder Karkassen und/oder anderen Geflügelteilen, die aus solcher Verarbeitung resultieren, bei dem auf die Geräte, Instrumente, Vorrichtungen und/oder das Wasser, die/das bei dieser Verarbeitung verwendet worden ist/sind, und/oder Karkassen und/oder andere Geflügelteile, die aus dieser Verarbeitung resultieren, eine wässrige mikrobiozide Lösung von einer oder mehreren aktiven Halogenspezies aufgebracht wird oder diese damit in Kontakt gebracht werden, wobei die Lösung ein Produkt, das sich von mindestens einem 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin ableitet, in dem eine der Alkylgruppen eine Methylgruppe ist und die andere Alkylgruppe im Bereich von 1 bis etwa 4 Kohlenstoffatomen enthält, in einem wässrigen Medium ist.
Verfahren nach Anspruch 1, bei dem die Lösung ein Produkt, das sich von 1,3-Dibrom-5-isobutyl-5-methylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-n-propyl-5-methylhydantoin oder 1,3-Dibrom-5-ethyl-5-methylhydantoin oder irgendwelchen zwei oder allen drei derselben ableitet, in einem wässrigen Medium ist.
Verfahren nach Anspruch 1, bei dem die Lösung ein Produkt, das sich von mindestens zwei der 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoine, von denen eines 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin ist, in einem wässrigen Medium ist.
Verfahren nach Anspruch 1, bei dem die Lösung ein Produkt, das sich von 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin und 1,3-Dibrom-5-ethyl-5-methylhydantoin ableitet, in einem wässrigen Medium ist.
Verfahren nach Anspruch 1, bei dem die Lösung ein Produkt, das sich von 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin ableitet, in einem wässrigen Medium ist.
Verwendung eines wässrigen Mikrobiozids, das aus mindestens einem 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin gebildet worden ist, in dem eine der Alkylgruppen eine Methylgruppe ist und die andere Alkylgruppe im Bereich von 1 bis etwa 4 Kohlenstoffatome enthält, zum Desinfizieren von Geräten, Instrumenten, Vorrichtungen und/oder Wasser, die/das bei einer solchen Verarbeitung verwendet worden ist/sind, und/oder Karkassen und/oder anderen Geflügelteilen, die aus einer solchen Verarbeitung resultieren.
Verwendung nach Anspruch 6, bei der das mindestens eine 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin 1,3-Brom-5-isobutyl-5-methylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-n-propyl-5-methylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-ethyl-5-methylhydantoin oder irgendwelche zwei oder alle drei derselben ist.
Verwendung nach Anspruch 6, bei der das mindestens eine 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin eine Mischung von mindestens zwei der 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoine ist, wobei eines von diesen 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin ist.
Verwendung nach Anspruch 6, bei der das mindestens eine 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin eine Mischung von 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin und 1,3-Dibrom-5-ethyl-5-methylhydantoin ist.
Verwendung nach Anspruch 6, bei der das mindestens eine 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin ist.
Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5 oder Verwendung nach einem der Ansprüche 6 bis 10, bei dem/der die Geräte, Instrumente, Vorrichtungen und/oder Wasser oder Karkassen und/oder andere Geflügelteile, die aus einer solchen Verarbeitung resultieren, welche desinfiziert werden, darin oder darauf mindestens eines von Escherichia coli, Salmonella enteritides, Salmonella typhimurium, Campylobacter jejuni, Campylobacter coli, Campylobacter lari, Listeria monocytogenes, Pseudomonas fluorescens, Pseudomonas aeruginosa, Enterococcus faecium und Staphylococcus aureus aufweisen.
Verfahren nach Anspruch 1 bei einem Prozess des Schlachtens von Geflügel, dadurch gekennzeichnet, dass als Mikrobiozid zur Bildung der wässrigen mikrobioziden Lösung (i) das mindestens eine 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin oder (ii) eine wässrige Lösung von einem oder mehreren aktiven Bromspezies, die aus Wasser und dem mindestens einen 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin gebildet wird, oder (iii) sowohl (i) als auch (ii) verwendet wird/werden.
Verfahren nach Anspruch 12, bei dem das Mikrobiozid (a) mindestens ein 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-ethyl-5-methylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-n-propyl-5-methylhydantoin und 1,3-Dibrom-5-isobutyl-5-methylhydantoin oder (b) eine wässrige mikrobiozide Lösung von einem oder mehreren aktiven Halogenspezies, wobei die Lösung ein Produkt ist, das sich von mindestens einem 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-ethyl-5-methylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-n-propyl-5-methylhydantoin und 1,3-Dibrom-5-isobutyl-5-methylhydantoin ableitet, in einem wässrigen Medium ist oder (c) sowohl (a) als auch (b) umfasst.
Verfahren nach Anspruch 12, bei dem das Mikrobiozid (d) 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin oder (e) wässrige mikrobiozide Lösung von einem oder mehreren aktiven Halogenspezies, wobei die Lösung ein Produkt ist, das sich von 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin ableitet, in einem wässrigen Medium ist, oder sowohl (d) als auch (e) ist.
Verfahren nach Anspruch 1 bei einem Prozess des Schlachtens von Geflügel, bei dem Geflügelkarkassen oder Teile davon mit Wasser gewaschen werden, in das eine wirksame Menge 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin in Form von Feststoffen oder als mikrobiozide Lösung oder Aufschlämmung von 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin eingebracht worden ist, um mikrobiozide Aktivität zu liefern.
Verfahren nach Anspruch 15, bei dem die zu waschenden Karkassen oder Teile davon darin oder darauf mindestens eines von Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella enteritides, Shigella sonnei, Listeria monocytogenes und Campylobacter jenuni aufweisen.
Verfahren nach Anspruch 1 bei einem Prozess des Schlachtens von Geflügel, dadurch gekennzeichnet, dass Geflügelkarkassen oder Teile davon mit Wasser gewaschen werden, in das eine wirksame Menge 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin in Form von Feststoffen oder als mikrobiozide Lösung oder Aufschlämmung von 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin eingebracht worden ist, um mikrobiozide Aktivität zu liefern.
Verfahren nach Anspruch 17, bei dem mindestens ein Teil des 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoins als 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin eingebracht wird und bei dem eine oder mehrere aktive Bromspezies in situ in dem Wasser gebildet werden.
Verfahren nach Anspruch 17, bei dem mindestens 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin und/oder eine damit gebildete wässrige Lösung oder Aufschlämmung in das Wasser eingebracht wird/werden.
Verfahren nach Anspruch 17, bei dem die zu waschenden Karkassen oder Teile davon darin oder darauf mindestens eines von Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella enteritides, Shigella sonnei, Listeria monocytogenes und Campylobacter jenuni aufweisen.
Verfahren nach Anspruch 12, dadurch gekennzeichnet, dass als Mikrobiozid 1,3-Dibrom-5-isobutyl-5-methylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-n-propyl-5-methylhydantoin oder 1,3-Dibrom-5-ethyl-5-methylhydantoin oder irgendwelche zwei oder alle drei derselben verwendet wird/werden.
Verfahren nach Anspruch 12, dadurch gekennzeichnet, dass als Mikrobiozid mindestens zwei der 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoine verwendet werden, wobei eines von ihnen 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin ist.
Verfahren nach Anspruch 12, dadurch gekennzeichnet, dass als Mikrobiozid eine Kombination von 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin und 1,3-Dibrom-5-ethyl-5-methylhydantoin verwendet wird.
Verfahren nach Anspruch 17, bei dem das 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin in Form von Feststoffen oder als damit gebildete mikrobiozide Lösung oder Aufschlämmung, die dem Wasser die mikrobiozide Aktivität liefern/liefert, 1,3-Dibrom-5-isobutyl-5-methylhydantoin, 1,3-Dibrom-5-n-propyl-5-methylhydantoin oder 1,3-Dibrom-5-ethyl-5-methylhydantoin oder irgendwelche zwei oder alle drei derselben ist.
Verfahren nach Anspruch 17, bei dem das 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin in Form von Feststoffen oder als damit gebildete mikrobiozide Lösung oder Aufschlämmung, die dem Wasser die mikrobiozide Aktivität liefern, mindestens zwei der 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoine ist, wobei mindestens eines davon 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin ist.
Verfahren nach Anspruch 17, bei dem das 1,3-Dibrom-5,5-dialkylhydantoin in Form von Feststoffen oder als damit gebildete mikrobiozide Lösung oder Aufschlämmung, die dem Wasser die mikrobiozide Aktivität liefern, eine Kombination von 1,3-Dibrom-5,5-dimethylhydantoin und 1,3-Dibrom-5-ethyl-5-methylhydantoin ist.