WO1994020151A1 - Verfahren zum herstellen eines implantates aus zellkulturen - Google Patents

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WO1994020151A1
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Michael Sittinger
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Definitions

  • the invention relates to a method for producing an implant from cell cultures, in particular an implant with cartilage cells, these cells being applied to a resorbable carrier structure and then being implanted.
  • the required tissue can be removed from corpses, preserved and then implanted. In some cases, immune reactions occur.
  • the patient's own tissue can be used, which is removed from the patient at a different location that is not visible from the outside and implanted at the location of the removed tissue. No immune reactions are to be feared here.
  • a third method has therefore been proposed, namely cells which have been isolated and propagated in a conventional manner on a polymer fiber bundle made of resorbable material apply and implant the bundles; see. CAVacanti et al. , Plastic and Reconstructive Surgery, Vol. 8, No. 5, Nov. 1991, pp. 753-759.
  • the implant By stacking the bundles on top of and next to each other, the implant could be modeled three-dimensionally.
  • the polymer material is resorbed, and at the same time the intercellular matrix, in particular collagen, is to be built up between the individual cells, so that in the final stage, a fully functional tissue structure is integrated into the surrounding tissue.
  • Difficulties with this method should arise when modeling the desired implant, since the shape of the fiber bundles placed one above the other and next to one another is not to be expected during the resorption of the fiber material. In addition, larger implants would have difficulty feeding the individual cells located inside the implant.
  • the invention is based on the object of specifying a method with which cell tissue, in particular cartilage tissue, is made available in a configuration which is favorable for implantation.
  • the implant should have good formability and shape retention in the implanted state and ensure the nutrition of the individual cells in the implant.
  • the basic idea of the invention is accordingly a three-dimensional, stable support structure with the desired implant shape made of a material with a coherent inner surface and a small one Volume, for example a polymer fleece, to introduce cells into the inner cavity of the carrier structure and to flow through the carrier structure receiving the cells with a nutrient solution. As soon as the intercellular matrix has at least partially formed, the entire three-dimensional support structure can be implanted.
  • the three-dimensional support structure ensures that the cells with their intercellular matrix remain dimensionally stable even during absorption and that the desired shape of the implant is maintained even after the implantation.
  • Perfusion ensures that the cells located within the support structure are also adequately supplied with nutrient solution and that this supply is maintained when the intercellular matrix has at least partially built up.
  • the nutrient solution enters the support structure and penetrates it essentially only by diffusion, which also corresponds to the situation in vivo.
  • the nourishment of the cells accommodated in the carrier structure by diffusion can also be ensured by coating the entire carrier structure with a material that essentially only allows diffusion. Such a material is e.g. Agarose.
  • the patient's own cartilage cells are grown in a conventional manner on a culture medium.
  • a carrier structure is produced from a resorbable, dimensionally stable polymer fiber fleece, the shape of which corresponds to the later implant.
  • Suitable nonwoven materials are e.g. Polyglycols or polylactides. From this, nonwovens can be produced that have a large inner coherent surface with a minimal material volume.
  • the continuous inner surface of the support structure is covered with an adhesion factor, e.g. Poly-L-lysine coated or wetted. This wetting takes place e.g. by immersing the support structure in a polylysine solution and subsequent lyophilization, i.e. Freeze drying so that the adhesion factor covers essentially the entire inner surface of the support structure.
  • a resorbable, viscosity-increasing substance for example the agarose mentioned, can be added.
  • the carrier structure receiving the cell is then coated with agarose, e.g. the support structure is immersed in a 2% agarose solution.
  • the support structure is then subjected to a cold shock, e.g. by immersion in a cold water bath at about 4 ° C., whereby the agarose of the jacket and also the agarose, if any, added to the suspension solidify.
  • a cold shock e.g. by immersion in a cold water bath at about 4 ° C.
  • This carrier structure prepared in this way is designated 1 in the figure and is inserted into a perfusion apparatus 2.
  • This apparatus 2 consists of a housing 3, in which a perfusion chamber 4 is provided, into which the carrier structure is inserted.
  • a feed line 5 for a nutrient solution opens into the housing 3 and initially enters a mixing chamber 6, in which the flow is evened out before it enters the perfusion chamber 4.
  • An outflow chamber 7 then adjoins the perfusion chamber 4, from which an outflow line 8 leads to a collecting container 9.
  • the housing 3 of the perfusion chamber 4 is covered with a cover 10 and is kept at a constant temperature corresponding to the mean body temperature of 37 ° C. by a heater 11.
  • the actual perfusion chamber 4 can still be at least partially filled with agarose.
  • a nutrient solution for example the solution commercially available under the name Hams F12, is slowly passed through the perfusion chamber 4.
  • This nutrient solution is transported by a pump 12, for example a peristaltic pump, which is arranged in the feed line 5 and nutrient solution from one Sucks reservoir 13.
  • This reservoir 13 is located, for example, in a water bath 14 at a temperature of 4 ° C.
  • the amount of time that the peristaltic pump 12 is transported is very small and, in the present case, is set at approximately one milliliter per hour for the production of cartilage tissue.
  • Some support structures - three such support structures 1 in the perfusion chamber 4 are shown in the drawing - can thus be sufficiently nourished, these support structures having a cross-section of at most one thumb nail size.
  • the peristaltic pump 12 is controlled at intervals by a timer 15, the intervals being adjustable depending on the size of the support structures and the perfusion chamber: in practice, the pumping and pausing intervals will be in the minute or hour range. Good results were achieved at pump and break intervals of approx. 30 minutes each.
  • Perfusion devices are known per se. They are otherwise used to grow cell cultures that are attached to a membrane with continuous conditions, thus replacing the conventional petri dishes. The membranes with the applied cell cultures can be inserted through slots into the perfusion chamber.
  • the nutrient solution passed through the perfusion apparatus 2 diffuses through the agarose jacket into the carrier structure 1, so that the cells taken up therein are fed.
  • the flow of the nutrient solution and the interval control are set so that the cell products necessary for the construction of the intercellular matrix are not washed away, but remain in place. Over time, the intercellular matrix with its collagen fibers forms between the cells, so that the cells are bound together.
  • the support structure and the agarose can at least partially dissolve during this long process. Due to the formation of the intercellular matrix, however, the predetermined shape and thus also the desired shape of the later implant is retained.
  • the support structure is removed from the perfusion chamber and implanted. Over time, the matrix continues to develop as the support structure is reabsorbed.
  • tissue orphogenic factors to the fleece of the support structure.
  • Such morphogenic factors stimulate cell formation and the formation of the intercellular matrix and thus cartilage formation.
  • Such factors can either be introduced into the support structure during the formation of the intercellular matrix in the perfusion chamber or after the implantation into the support structure.
  • An elegant solution is to couple the tissue-morphogenic factor directly to the nonwoven material or to an antibody and to provide the nonwoven material of the carrier structure with haptens to which the antibodies attach. As a result, these factors only act locally in the area of the support structure.

Abstract

Mit dem Verfahren wird angestrebt, insbesondere Knorpelzellen in vitro herzustellen. Die Zellen werden hierbei in einer dreidimensionalen Trägerstruktur, vorzugsweise aus einem Polymervlies eingelagert, wobei die Form der Trägerstruktur der Form des späteren Implantates entspricht. Die Trägerstruktur wird anschließend mit einer Nährlösung über eine lange Zeit perfundiert, wodurch sich innerhalb der Trägerstruktur die interzelluläre Matrix, die die Zellen aneinanderbindet, zumindest teilweise ausbilden kann. Die Trägerstruktur mit der zumindest teilweise ausgebildeten interzellulären Matrix wird dann implantiert. Bei der anschließenden Resorption der Trägerstruktur bleibt die Form des Implantates durch die dann ausgebildete interzelluläre Matrix erhalten.

Description

i
Verfahren zum Herstellen eines Implantates aus Zellkulturen
Die Erfindung' bezieht sich auf ein Verfahren zum Herstellen eines Implantates aus Zellkulturen, insbesondere eines Implantates mit Knorpelzellen, wobei diese Zellen auf eine resorbierbare Trägerstruktur aufgebracht und anschließend implantiert werden.
Soll entferntes körpereigenes Gewebe, z.B. Knorpelgewebe ersetzt werden, so ist man bisher auf im wesentlichen zwei Möglichkeiten angewiesen:
1. Das benötigte Gewebe kann Leichen entnommen, konserviert und dann implantiert werden. Hierbei treten in einigen Fällen Immunreaktionen auf.
2. Zum Ersatz des entfernten Gewebes kann Eigengewebe verwendet werden, das dem Patienten an anderer, nach außen nicht sichtbarer Stelle entnommen und an dem Ort des entfernten Gewebes implantiert wird. Hier sind keine Immunreaktionen zu befürchten.
Ein entscheidender Nachteil dieser beiden Verfahren liegt jedoch darin, daß wegen der immer größeren Anzahl von Implantationen insgesamt zu wenig Material vorhanden ist, so daß der gewünschte Ersatz des Gewebes häufig nur unvollständig erfolgt.
Man hat daher ein drittes Verfahren vorgeschlagen, nämlich auf einem Polymerfaserbündel aus resorbierbarem Material in herkömmlicher Weise isolierte und vermehrte Zellen aufzubringen und die Bündel zu implantieren; vgl. C.A.Vacanti et al. , Plastic and Reconstructive Surgery, Vol. 8, No. 5, Nov. 1991, S. 753-759. Durch Übereinander- und Nebeneinanderschichtung der Bündel könnte das Implantat quasi dreidimensional modelliert werden. Nach der Implantation wird das Polymermaterial resorbiert, wobei gleichzeitig zwischen den einzelnen Zellen die interzelluläre Matrix aus insbesondere Kollagen aufgebaut werden soll, so daß sich im Endstadium eine in das umliegende Gewebe integrierte und voll funktionsfähige Gewebestruktur ergibt.
Dieses Verfahren ist noch im Versuchsstadium, an Tieren erprobt, jedoch in der Humanmedizin noch nicht angewendet.
Schwierigkeiten dürften sich bei diesem Verfahren bei der Modellierung des gewünschten Implantates ergeben, da eine Formstabilität der übereinander und nebeneinander gelegten Faserbündel während der Resorption des Fasermaterials nicht zu erwarten ist. Außerdem würden sich bei größeren Implantaten Schwierigkeiten mit der Ernährung der einzelnen Zellen ergeben, die im Inneren des Implantates gelegen sind.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, ein Verfahren anzugeben, mit der Zellgewebe, insbesondere Knorpelgewebe, in einer für die Implantation günstigen Konfiguration zur Verfügung gestellt wird. Insbesondere soll das Implantat eine gute Formbarkeit und Formerhaltung im implantierten Zustand aufweisen und die Ernährung der einzelnen Zellen im Implantat sicher gewährleisten.
Diese Aufgabe ist gemäß der Erfindung durch die im Patentanspruch 1 angegebenen kennzeichnenden Merkmale gelöst.
Die grundlegende Idee der Erfindung besteht demnach darin, eine dreidimensionale formstabile Trägerstruktur mit der gewünschten Implantationsform aus einem Material mit einer zusammenhängenden inneren Oberfläche und einem geringen Volumen, z.B. einem Polymervlies, vorzufor en, in den inneren Hohlraum der Trägerstruktur Zellen einzubringen und die die Zellen aufnehmende Trägerstruktur mit einer Nährlösung zu durchströmen. Sobald sich dann die interzelluläre Matrix zumindest teilweise ausgebildet hat, kann die gesamte dreidimensionale Trägerstruktur implantiert werden.
Durch die dreidimensionale Trägerstruktur wird sichergestellt, daß auch während der Resorption die Zellen mit ihrer interzellulären Matrix formstabil bleiben und die gewünschte Form des Implantats auch nach der Implantation beibehalten wird.
Durch die Perfusion wird sichergestellt, daß auch die innerhalb der Trägerstruktur gelegenen Zellen ausreichend mit Nährlösung versorgt werden und daß diese Versorgung aufrechterhalten bleibt, wenn sich die interzelluläre Matrix zumindest teilweise aufgebaut hat. Durch den Aufbau der Trägerstruktur und gegebenenfalls eine entsprechende Präparation erfolgt der Eintritt der Nährlösung in die Trägerstruktur und deren Durchdringung im wesentlichen nur durch Diffusion, was im übrigen auch der Situation in vivo entspricht. Die Ernährung der in der Trägerstruktur aufgenommenen Zellen durch Diffusion kann im übrigen noch dadurch sichergestellt werden, daß die gesamte Trägerstruktur mit einem Material ummantelt wird, das im wesentlichen nur eine Diffusion zuläßt. Ein solches Material ist z.B. Agarose.
Durch die Ernährung der Zellen in der Trägerstruktur über die Diffusion wird verhindert, daß die Zellenprodukte, insbesondere die für den Aufbau der interzellulären Matrix notwendigen Kollagene und Proteoglycane aus dem Zellverband ausgeschwemmt werden. Das Zurückhalten dieser notwendigen Faktoren, d.h. deren Retention kann noch dadurch verbessert und unterstützt werden, wenn die Perfusion der Trägerstrukturen mit der Nährlösung intervallartig erfolgt. In den Perfusionspausen werden dann die Zellprodukte am Ort gehalten und bilden die Verbindungen mit den Zellen, wohingegen in den Perfusionsphasen auch unerwünschte Zellprodukte aus der Trägerstruktur und der Matrix ausgeschwemmt werden können.
Weitere Ausgestaltungen der Erfindung gehen aus den Unteransprüchen hervor.
Die Erfindung ist in einem Ausführungsbeispiel anhand der Figur näher erläutert, in der das Verfahren hinsichtlich der verwendeten Geräte schematisch dargestellt ist.
In der Beschreibung wird nur auf die Herstellung von Knorpelgewebe in vitro Bezug genommen; es ist jedoch selbstverständlich, daß hier auch andere Zellgewebe entsprechend behandelt werden können.
Für eine Implantation werden patienteneigene Knorpelzellen in herkömmlicher Weise auf einem Kulturmedium vermehrt.
Aus einem resorbierbaren formstabilen Polymerfaservlies wird eine Trägerstruktur hergestellt, deren Form dem späteren Implantat entspricht. Geeignet Vliesmaterialien sind z.B. Polyglykole oder Polylactide. Hieraus lassen sich Vliese herstellen, die eine große innere zusammenhängende Oberfläche bei gleichzeitig minimalem Materialvolumen aufweisen. Die zusammenhängende innere Oberfläche der Trägerstruktur wird mit einem Adhäsionsfaktor, z.B. Poly-L-Lysin beschichtet bzw. benetzt. Diese Benetzung erfolgt z.B. durch Eintauchen der Trägersturktur in eine Polylysinlösung und anschließende Lyophilisation, d.h. Gefriertrocknung, so daß der Adhäsionsfaktor im wesentlichen die gesamte innere Oberfläche der Trägerstruktur bedeckt.
Wenn in der oben erwähnten Zellkultur eine ausreichende Anzahl von Zellen vorliegt, werden diese in der Suspension mit dem Kulturmedium in die dreidimensionale entsprechend präparierte Trägerstruktur gefüllt. Zur Erhöhung der Viskosität der Suspension kann dieser noch ein resorbierbarer, die Viskosität erhöhender Stoff, z.B. die erwähnte Agarose zugesetzt werden.
Die die Zelle aufnehmende Trägerstruktur wird anschließend mit Agarose ummantelt, indem z.B. die Trägerstruktur in eine 2%ige Agaroselösung eingetaucht wird. Anschließend wird die Trägerstruktur einem Kälteschock unterworfen, z.B. durch Eintauchen in ein kaltes Wasserbad von etwa 4°C, wobei sich die Agarose des Mantels und ebenso die gegebenenfalls die der Suspension zugefügte Agarose verfestigt. Eine derartige Maßnahme erleichtert die folgende Handhabung.
Diese derart präparierte Trägerstruktur ist in der Figur mit 1 bezeichnet und wird in eine Perfusionsapparatur 2 eingesetzt. Diese Apparatur 2 besteht aus einem Gehäuse 3, in dem eine Perfusionskammer 4 vorgesehen ist, in die die Trägerstruktur eingesetzt wird. In das Gehäuse 3 mündet eine Zuführleitung 5 für eine Nährlösung, die zunächst in eine Mischkammer 6 eintritt, in- der die Strömung vergleichmäßigt wird, bevor sie in die Perfusionska mer 4 eintritt. An die Perfusionskammer 4 schließt sich dann eine Abflußkammer 7 an, aus der eine Abflußleitung 8 zu einem Auffangbehälter 9 führt. Das Gehäuse 3 der Perfusionskammer 4 ist mit einer Abdeckung 10 überdacht und wird durch eine Heizung 11 auf gleichbleibender Temperatur entsprechend der mittleren Körpertemperatur von 37°C gehalten.
Die eigentliche Perfusionskammer 4 kann noch mit Agarose zumindest teilweise aufgefüllt sein.
Durch die Perfusionskammer 4 wird langsam eine Nährlösung, z.B. die im Handel unter der Bezeichnung Hams F12 erhältliche Lösung geführt. Diese Nährlösung wird durch eine Pumpe 12, z.B. eine peristaltische Pumpe transportiert, die in der Zuleitung 5 angeordnet ist und Nährlösung aus einem Vorratsbehälter 13 ansaugt. Dieser Vorratsbehälter 13 befindet sich z.B. in einem Wasserbad 14 bei einer Temperatur von 4°C. Die zeitliche Transportmenge der peristaltischen Pumpe 12 ist sehr gering und in dem hier vorliegenden Fall für die Herstellung von Knorpelgewebe auf etwa ein Milliliter pro Stunde eingestellt. Damit lassen sich einige Trägerstrukturen - in der Zeichnung sind drei derartige Trägerstrukturen 1 in der Perfusionskammer 4 dargestellt - ausreichend ernähren, wobei diese Trägerstrukturen einen Querschnitt von maximal einer Daumennagelgröße aufweisen.
Die peristaltische Pumpe 12 wird durch einen Zeitgeber 15 intervallartig gesteuert, wobei die Intervalle je nach Größe der Trägerstrukturen und der Perfusionskammer einstellbar sind: In der Praxis werden die Pump- und Pausenintervalle sich im Minuten- bzw. Stundenbereich befinden. Gute Ergebnisse wurden bei Pump- und Pausenintervallen von jeweils ca. 30 Minuten erreicht.
Perfusionsapparaturen sind an sich bekannt. Sie dienen ansonsten dazu, Zellkulturen, die auf einer Membran angeheftet werden, mit kontinuierlichen Bedingungen zu züchten, und ersetzen damit die herkömmlichen Petri-Schalen. Die Membranen mit den aufgebrachten Zellkulturen können hierbei durch Schlitze in die Perfusionskammer eingesetzt werden.
Die durch die Perfusionsapparatur 2 geführte Nährlösung diffundiert durch den Mantel aus Agarose in die Trägerstruktur 1, so daß die darin aufgenommenen Zellen ernährt werden. Die Strömung der Nährlösung und die Intervallsteuerung sind so eingestellt, daß die für den Aufbau der interzellulären Matrix notwendigen Zellprodukte nicht weggeschwemmt werden, sondern an ihrem Platz verbleiben. Im Laufe der Zeit bildet sich die interzelluläre Matrix mit ihren Kollagenfasern zwischen den Zellen aus, so daß die Zellen aneinander gebunden werden. Die Trägerstruktur und die Agarose können sich während dieses langdauernden Prozesses zumindest teilweise auflösen. Durch die Ausbildung der interzellulären Matrix bleibt jedoch die vorgegebene Form und damit auch die gewünschte Form des späteren Implantates erhalten.
Ist die interzelluläre Matrix ausreichend ausgebildet, was etwa ab 10 Tagen bis in einigen Wochen der Fall ist, wird die Trägerstruktur aus der Perfusionskammer herausgenommen und implantiert. Im Laufe der Zeit wird die Matrix weitergebildet, während die Trägerstruktur resorbiert wird.
Es konnte gezeigt werden, daß mit einem derartigen Verfahren tatsächlich die interzelluläre Matrix in vitro aufgebaut wird, was bis dato soweit bekannt noch nicht beobachtet wurde.
Es ist des weiteren möglich, sogenannte gewebs orphogene Faktoren an das Vlies der Trägerstruktur anzulagern. Derartige morphogene Faktoren regen die Zellbildung und die Bildung der interzellulären Matrix und damit die Knorpelbildung an. Derartige Faktoren können entweder bereits in die Trägerstruktur während der Bildung der interzellulären Matrix in der Perfusionskammer oder nach der Implantation in die Trägerstruktur eingebracht werden. Eine elegante Lösung besteht darin, den gewebsmorphogenen Faktor direkt an das Vliesmaterial zu koppen oder an einen Antikörper zu koppeln und das Vliesmaterial der Trägerstruktur mit Haptenen zu versehen, an die sich die Antikörper anlagern. Dadurch wirken diese Faktoren nur lokal im Bereich der Trägerstruktur.

Claims

Patentansprüche
1. Verfahren zum Herstellen eines Implantates aus Zellkulturen, insbesondere Knorpelzellen, wobei die Zellen auf einer resorbierbaren Trägerstruktur aufgebracht und anschließend gemeinsam mit dieser implantiert werden, gekennzeichnet durch folgende Merkmale:
es wird eine dreidimensionale, im wesentlichen formstabile entsprechend der gewünschten Form des Implantats vorgeformte Trägerstruktur mit einer zusammenhängenden inneren Oberfläche und einem geringen Volumen verwendet;
in den inneren Hohlraum der Trägerstruktur werden die Zellen eingebracht;
die die Zellen aufnehmende Trägerstruktur wird mit einer Nährlösung zumindest so lange perfundiert, d.h. durchströmt, bis sich zumindest teilweise eine die Zellen aneinander bindende interzelluläre Matrix ausgebildet hat, wonach die Trägerstruktur implantiert werden kann.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Trägerstruktur ein Vlies aus Polymerfasern, insbesondere Polyglykolen oder Polylactiden ist.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß die Trägerstruktur, bevor die Zellen in diese eingebracht werden, mit Adhäsionsfaktoren, insbesondere Poly-L-Lysin, versehen wird.
4. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß die Adhäsionsfaktoren durch Lyophilisation auf die iϊinere Oberfläche der Trägerstruktur aufgebracht werden.
5. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß der innere Hohlraum der Trägerstruktur so gestaltet und dimensioniert ist, daß die Nährlösung durch die Trägerstruktur diffundiert.
6. Verfahren nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß die die Zellen aufnehmende Trägerstruktur mit einem Material, insbesondere Agarose, ummantelt wird, durch das die Nährlösung hindurchdiffundieren kann.
7. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die- Trägerstruktur mit den darin aufgenommenen Zellen intervallartig durchströmt wird, so daß sich an eine Perfusionsphase jeweils eine Pause anschließt.
8. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die Trägerstruktur mit den darin aufgenommenen Zellen zur Perfusion in eine Perfusionskammer eingesetzt wird.
9. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die Zellen in der Suspension mit dem Kulturmedium in die Trägerstruktur eingebracht werden, wobei zusätzlich die Suspension mit einem die Viskosität erhöhenden Stoff, vorzugsweise Agarose, versetzt wird.
10. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß an die Trägerstruktur ein gewebsmorphogener Faktor angelagert wird, der die Zellbildung und die Bildung einer interzellulären Matrix unterstützt.
11. Verfahren nach Anspruch 10, dadurch gekennzeichnet, daß der gewebsmorphogene Faktor an einen Antikörper gekoppelt wird, der sich an dem Material der TrägerStruktur, vorzugsweise an dort aufgebrachten Haptenen anlagert.
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