WO2001004262A2 - Bioreaktor - Google Patents

Bioreaktor Download PDF

Info

Publication number
WO2001004262A2
WO2001004262A2 PCT/EP2000/006355 EP0006355W WO0104262A2 WO 2001004262 A2 WO2001004262 A2 WO 2001004262A2 EP 0006355 W EP0006355 W EP 0006355W WO 0104262 A2 WO0104262 A2 WO 0104262A2
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
organic material
nutrient medium
bioreactor
receiving device
bioreactor according
Prior art date
Application number
PCT/EP2000/006355
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
WO2001004262A3 (de
Inventor
Thomas Wechsler
Ulrich Bär
Christian Oehr
Thomas Graeve
Original Assignee
Sefar Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Sefar Ag filed Critical Sefar Ag
Priority to DE50004509T priority Critical patent/DE50004509D1/de
Priority to EP00947935A priority patent/EP1194524B1/de
Priority to AU61554/00A priority patent/AU6155400A/en
Priority to US10/030,697 priority patent/US6844187B1/en
Priority to AT00947935T priority patent/ATE254658T1/de
Publication of WO2001004262A2 publication Critical patent/WO2001004262A2/de
Publication of WO2001004262A3 publication Critical patent/WO2001004262A3/de

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M25/00Means for supporting, enclosing or fixing the microorganisms, e.g. immunocoatings
    • C12M25/06Plates; Walls; Drawers; Multilayer plates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M29/00Means for introduction, extraction or recirculation of materials, e.g. pumps
    • C12M29/04Filters; Permeable or porous membranes or plates, e.g. dialysis

Definitions

  • the invention relates to a bioreactor and a method for cultivating organic material according to the preamble of claims 1 and 15 respectively.
  • hematopoietic stem cells are taken from a patient before radiation or chemotherapy and are to be retransplanted to the patient in as large a number as possible after completing radiation and chemotherapy.
  • This method uses, among other things, cryopreservation, in which blood stem cells taken are frozen during the duration of the radiation or chemotherapy.
  • cryopreservation does not allow cell enrichment. Rather, the number of living cells and their vitality are significantly reduced.
  • cells are cultivated in containers or petri dishes in which there is a nutrient medium suitable for the cultivation of the respective cell type.
  • a number of treatment steps are generally necessary, such as, for example, the exchange of the nutrient medium and the transfer of cultivated cells into other containers.
  • the necessary multiple interventions in the cultivation process increase the risk of contamination of the cell material, for example by laboratory equipment or ambient air, which renders the material to be cultivated unusable for further use.
  • Cultivation of cells in hollow fibers was also attempted.
  • the cells in the hollow fibers are diffusively supplied with nutrients from the outside of the fibers.
  • relatively good growth rates can be achieved, with a further increase becoming problematic with an increasing number of cells in the spatially limited hollow fibers.
  • a porous, monolithic ceramic block which is crisscrossed with a large number of fine, parallel channels, is inoculated with cells.
  • the cells attach themselves to the porous inside of the channels, through which a nutrient fluid flows.
  • the invention is based on the object of providing a device and a method for cultivating organic material which on the one hand permit intensive cultivation of an organic material and on the other hand are particularly simple and reliable to handle.
  • a flow generating device is provided, by means of which the nutrient medium can be put into a flow, that a flow measuring device is arranged in the flow, which is designed to receive and / or hold the organic material, and that the receiving device for passing the flowing nutrient medium is designed to be permeable.
  • a basic idea of the invention lies in the convective supply of the organic material with nutrient medium. This supply can take place continuously or quasi-continuously. In this way, an almost optimal provision of the necessary nutrients over the entire period of cultivation can be ensured, while at the same time, metabolic products which are detrimental to cell growth are quickly removed by the flow of the nutrient medium. Trials with hemopoietic stem cells have shown excellent growth and vitality rates.
  • the bioreactor comprises a closed housing with at least one inlet and outlet and at least one flow channel, it being possible to use a slope or common pump devices, such as peristaltic pumps, to generate the flow.
  • a slope or common pump devices such as peristaltic pumps
  • other devices are also suitable which can set the nutrient medium in flow.
  • the flow rate and the flow rate are set so that the organic material remains largely immobilized in the receiving device.
  • the nutrient medium flows across the receiving device from one partition element to the other, the organic material being arranged essentially transversely to the flow.
  • the reactor according to the invention is particularly suitable for clinical use to a large extent.
  • the bioreactor according to the invention is suitable for cultivating a wide variety of organic materials.
  • These are preferably simple structures, such as bacteria, viruses, fungi or body cells.
  • these include micro- and macrovascular endothelial cells from the spleen, adrenal gland and aorta, different cell types from the cornea, eye lens and retina cells, skin, bone and bone marrow cells.
  • the cultivation of complex structures, such as whole organs or parts thereof, is also conceivable.
  • the bioreactor according to the invention is characterized in that the receiving device has at least two partition wall elements by which a receiving space is enclosed, that the organic material is arranged in the receiving space and that the partition wall elements are permeable to the nutrient medium on the one hand and essentially impermeable to the organic material on the other hand are trained.
  • the impermeability of the partition elements to the organic material on the one hand achieves a defined immobilization of the organic material in the receiving device. Flushing away of the organic material is prevented since it is enclosed in the flow in a defined space.
  • the organic material can also move to a certain extent in this defined space, which preferably extends over the entire flow cross-section and is designed to be relatively narrow, which results in uniformly good colonization with cells.
  • due to the permeability of the dividing wall elements to the nutrient medium due to the permeability of the dividing wall elements to the nutrient medium, a good convective supply of the organic material and thus an intensive cultivation of the same is further guaranteed.
  • the partition elements which have the required Have permeability to a medium to be supplied.
  • they can consist of woven, knitted or felted fabrics or of other permeable materials.
  • Tissues have proven to be particularly useful for bioreactors for the cultivation of liver cells. Tissues with their relatively coarse mesh create an excellent diffuser effect in the flowing nutrient medium.
  • the partition elements have a membrane. Since membranes with different properties with regard to their permeability and their selective behavior can be produced, the supply of certain substances to the cells to be cultivated in the bioreactor can be influenced in a targeted manner by using a suitable membrane.
  • the mechanical stability of the partition elements can be specifically adjusted through the selection of differently reinforced membranes and adapted to the respective requirements of the organic material, e.g. with adherent cells, adaptable.
  • textile reinforcements such as woven or knitted fabrics can serve to reinforce the membrane. It is possible to use organic or inorganic membranes, for example made of a polymer, metal or ceramic or a combination of these materials.
  • the receiving device has a carrier element which is designed to attach the organic material and is permeable to the nutrient medium.
  • An attachment of the organic material to the essentially flat support element can be achieved by a special structure of the support element and / or by the flow pressure. be enough.
  • the carrier element can form the receiving device alone or preferably in combination with the partition elements. This version is suitable, inter alia, for the cultivation of implants, for example skin areas grown in vitro, for which a large-area arrangement of the immobilized cells is required.
  • the carrier element comprises a textile carrier material.
  • the appropriate choice e.g. The type and material of the fabric, the thickness of the filament, the mesh size and the number of threads can be set in a simple manner for almost every application, an almost ideal ratio between surface and reactor volume and good flow properties for the nutrient supply to the cells. This allows the cultivation of the organic material to be influenced and promoted in a targeted manner.
  • monofilaments or wires are suitable as textile carrier materials.
  • the monofilaments or wires can consist, for example, of metal, ceramic, synthetic and / or natural materials, such as cellulose, with and without surface coatings.
  • multifilament fabrics are also expedient, in which the threads defining the fabric structure in turn consist of a large number of smaller threads.
  • a targeted storage of cells in the carrier element can be achieved by a three-dimensional structure.
  • the carrier element can be, for example, a porous plastic or ceramic material or a so-called three-dimensional technical fabric. Such fabrics have two or more superimposed and partially connected or woven tissue matrices, which offer a secure hold for stored cell material.
  • a three-dimensional structure can be created by folding, pleating or rolling an approximately two-dimensional element.
  • a framework structure of the carrier element or a structure made of structural elements, such as tubular bodies or honeycombs can be provided.
  • so-called non-woven materials and nonwovens can also be used.
  • the technical fabric is surface-treated and a biocompatible surface is formed with a structure for an adhesion of the organic material.
  • a stable fabric such as polyester, polyamide, a trifluoroethylene / ethylene copolymer, metal or ceramic
  • Cell growth can be positively influenced by producing a hydrophilic tissue surface or by increasing the concentration of nitrogen-containing functional groups.
  • a particularly effective surface treatment here are low-temperature plasma processes with which, for example, textile materials made of polymer, metal or ceramic and membrane can be specifically coated with an inert surface and thus functionalized without the tissue to be treated having to be exposed to aggressive solutions or high temperatures.
  • Different material properties such as a high mechanical stability of a carrier base material, can be systematically combined with desired surface properties, such as hydrophilicity and cell adhesion.
  • the bioreactor according to the invention is constructed as a flat cell in which the receiving device is preferably circular. With a circular cavity in the flat cell, a particularly good flow and thus a uniform supply of the cells to be cultivated with nutrient medium is ensured.
  • the flat cell can be built up in layers, for example from glued plastic elements, resulting in a compact and at the same time easy to manufacture bioreactor. The ease of manufacture even allows the bioreactor to be used as a disposable item, which can be advantageous for medical applications.
  • the flat cell is so robust that it can be sterilized by autoclaving or by ⁇ -sterilization.
  • the bioreactor can be assembled or disassembled for seeding and harvesting larger organic material, such as implants.
  • An alternative embodiment of the invention consists in that the bioreactor is constructed as a tubular cell in which the partition elements are tubular. Such a tubular arrangement of the partition elements leads to a particularly compact configuration.
  • tubular partition elements are arranged axially parallel, preferably coaxially to one another.
  • the support element also being cylindrical and between - lü ⁇
  • a flow of the nutrient medium is established radially from outside to inside or radially from inside to outside. Reliable positioning of the individual elements with respect to one another is ensured by radially extending webs or support bodies which are fastened to the surrounding housing.
  • a particularly uniform inflow and outflow of the nutrient medium is achieved in that a plurality of inner, tubular dividing wall elements are arranged within the outer tubular dividing wall element and run axially parallel to one another.
  • a plurality of flat cells or tubular cells are arranged as modules in a flow direction in parallel and / or in series.
  • the medium flowing out of a first flat cell can be fed directly to further flat cells, so that particularly effective use of the nutrient medium and possible utilization of metabolic products of a preceding cell is possible.
  • a parallel arrangement is usually advisable to prevent possible poisoning from metabolic products.
  • a control device is provided, by means of which the flow generation device, a temperature setting unit, a gassing unit and / or further supply units can be controlled and / or regulated.
  • the cultivation process of the organic material can be influenced in a targeted manner via various parameters, such as flow rate, flow rate, temperature and pressure of the nutrient medium, and the supply and discharge of further media and substances.
  • a sensor device is arranged in a flow direction after the receiving device, by means of which physical and chemical status values of the nutrient medium can be determined and the sensor device is connected to the control device.
  • the sensor device can e.g. the concentration of nutrients or metabolic products in the nutrient medium can be determined.
  • the bioreactor is characterized in that a closed housing is provided, in which the receiving device is arranged and at least one inflow and outflow for the nutrient medium and an access for introducing and discharging the organic material are provided.
  • the closed housing ensures that the inside, especially the receiving device of the bioreactor, after its manufacture and sterilization, remains sterile even after storage and transportation.
  • contamination-free cultivation of the organic material is made possible, since the individual treatment steps, for example the introduction and removal of the organic material and the supply and removal of the nutrient medium or other substances, can be carried out with the housing closed, and thus the risk of contamination of the organic Material can be greatly reduced.
  • the simple structure of the bioreactor makes it inexpensive to manufacture and particularly suitable for use as a single-use article in the clinical field.
  • One aspect of the method according to the invention is to pass the nutrient medium which is brought into flow through the receiving device holding the organic material. This enables easy cultivation and reliable cultivation of the organic material. In particular, by passing the nutrient medium through the receiving device, a good supply of nutrients to the organic material held thereon or therein is ensured, since constant rinsing or, if appropriate, penetration with nutrient solution is achieved.
  • the flow can be constant or pulsed.
  • the organic material is sterilized before inoculation or introduction into the receiving device.
  • the sterilization of the receiving device can, for example, be carried out by the manufacturer immediately after the manufacture. tion of the bioreactor. Suitable measures for closing the bioreactor can then be used to maintain the sterility of the receiving device up to the point of use.
  • sterilization of the entire bioreactor is also conceivable if, for example, particularly high demands are made on ensuring sterility.
  • a medium in particular a physiological solution with an enzyme, for example a trypsin solution, is introduced to dissolve and rinse out the accumulated organic material before the cultivated organic material is removed.
  • an enzyme for example a trypsin solution
  • this non-invasive detachment of the material greatly reduces the risk of both contamination and mechanical damage to the tissue.
  • the rinsing solution can take place through the same access as the inoculation with organic material. When inoculating and rinsing, also called harvesting, the nutrient medium flow is expediently interrupted.
  • An advantageous embodiment of the method provides that the flow direction of the nutrient medium passed through the receiving device is changed during the cultivation of the organic material. This can A good supply of the cells can be achieved especially with organic material with a large lateral extent and thickness. Any nutrient gradients that may occur in the material can be significantly reduced in this way.
  • the method according to the invention provides that the material composition, stoichiometric composition, state or flow rate of the nutrient medium change during the cultivation become.
  • FIG. 1 shows a cross section of a preferred embodiment of the bioreactor according to the invention as a flat cell
  • FIG. 2 shows a view of an assembly of individual components of a bioreactor according to the invention
  • FIG. 3 shows an assembled bioreactor as a flat cell
  • FIG. 4 shows a diagram of a plant with a bioreactor
  • FIG. 5 shows a schematic view of a further preferred embodiment of the bioreactor according to the invention as a tubular cell
  • Fig. 6 is a schematic cross-sectional view of the bioreactor of Fig. 5;
  • FIG. 7 shows a cross-sectional view of a further embodiment of the bioreactor according to the invention.
  • Fig. 8 is a schematic cross-sectional view of a
  • FIG. 9 shows a longitudinal section through the bioreactor of FIG. 8.
  • FIG. 1 of a preferred embodiment of a bioreactor 10 according to the invention for cultivating stem cells has a carrier element 12, spaced-apart, two-part partition elements 11 and a cover 14 on both sides.
  • the covers 14 and the spacers 16 are made of polycarbonate.
  • the carrier element 12 is designed as a technical fabric.
  • a monofilament made of polyamide 6.6 (PA 6.6) or polyethylene terephthalate (PET) is preferably used as the fiber material.
  • the mesh size of the fabric is on average 20 microns and a thickness of about 55 to 60 microns.
  • the weight of the fabric is around 35 to 40 g / m.
  • a receiving device for the organic material is formed by the carrier element 12 and the partition wall elements 11, which laterally delimit a receiving space 13 of the receiving device.
  • the partition elements 12 each have a membrane which is applied to an underlying support fabric.
  • the membrane material comprises polyamide 66 (PA 66).
  • Monofilament fabrics made of polyethylene terephthalate (PET) with a mesh size of about 265 ⁇ m, a thickness of about 200 ⁇ m and a weight of typically 85 g / m are used as the support fabric.
  • Typical membrane thicknesses are between 0.45 ⁇ m and 0.8 ⁇ m.
  • the spacers 16 have a height of about 3 mm for spacing the individual elements of the bioreactor.
  • FIG. 2 shows a view of a compilation of individual components of the bioreactor 10 according to the invention.
  • the carrier element 12 or the partition wall elements 11 are attached, which consist of a membrane 11a and a supporting fabric 11b consist.
  • the circular shapes of the fabrics or membranes used are cut out to a precise fit, for example by means of a laser, the support element 12, which is designed as a technical fabric, and the partition wall elements 11 are fastened or welded to the support plates 24 by means of adhesive which can be hardened under UV light.
  • the annular support plates 24 form with the covers 14 a housing with a cavity, in which lines for supplying and / or discharging fluids open.
  • the nutrient medium is fed into the bioreactor 10 via the feed line 19, while the discharge line 22 is provided for discharging the nutrient medium.
  • the inoculation of the organic material and the feeding of an enzyme-containing medium to dissolve the attached organic material takes place via two lines 21, which open into the receiving device of the bioreactor 10.
  • a vent line 20 is arranged on the carrier plate 24 with the feed line 19.
  • the essentially identical support plates 24 perform the function of the spacers 16 shown in FIG. 1.
  • the distance between the individual components of the bioreactor 10 can be adapted to that for the Cultivation of certain organic materials required conditions can be adapted excellently.
  • the ratio of the reactor surface to the reactor volume plays an important role here, which can be adjusted by the choice of the appropriate tissue.
  • the distance between the individual components can also be easily changed, for example, by inserting different seals or intermediate plates, with detachable fastening means also allowing disassembly.
  • Tempering chambers can also be attached to the covers 14, which serve to maintain a uniform process temperature during the cultivation of the organic material.
  • temperature chambers typically have electrical heating and / or cooling or are connected to a heating or cooling bath via supply and discharge lines.
  • the bioreactor can also be stored in a temperature-controlled heating cabinet.
  • the bioreactor 10 described with its individual components in FIG. 2 is shown in FIG. 3 as a assembled, finished flat cell with feed and discharge lines. provides.
  • the bioreactor 10 according to the invention has a compact format, which particularly facilitates its handling in the laboratory area as well as in the clinical area.
  • the bioreactor 10 To inoculate the bioreactor 10, it is first filled via a feed line 19 from a container 30 with nutrient medium which flows into the reactor cavity in the radial direction.
  • the corresponding feed line 19 is initially closed via a check valve 31, while a discharge line 22 remains open.
  • the supply lines 21 provided for the inoculation are opened via their supply shut-off valves 32 and the stem cells, which were removed from a patient prior to radiation or chemotherapy, can be flushed into the reactor module 10 with them, for example with a syringe.
  • the feed lines 21 and the discharge line 22 provided for the inoculation are closed.
  • the stem cells are located in the reception facility and can colonize them.
  • the supply line 19 and a discharge line 22 are opened to promote cell growth. Temperature-controlled nutrient solution is then fed through the feed line 19. In the course of the cultivation process, the amount of per Unit of nutrient solution added can be increased gradually, since the longer the cultivation process, the more cells there are and the nutrient requirement increases.
  • the supply and discharge of the nutrient medium takes place in such a way that the hollow space of the bioreactor 10, which is circular in cross section, and thus the receiving device, is flowed through as evenly as possible. This ensures an equal and constant nutrient gradient over the entire area of the cell carrier. At the same time, harmful metabolic products are quickly and reliably removed from the bioreactor 10 by the flow of nutrients.
  • the nutrient medium After the nutrient medium has escaped via the discharge line 22, the nutrient medium passes through a first measuring device 33, with which the content of nutrients and pollutants and further physical and chemical status values are recorded. The determined values are used to control and monitor the cultivation process by means of an appropriate control device. This can also be connected to a second measuring device 34 in the feed line 19. After a cleaning and reprocessing has been carried out, the nutrient medium can be recirculated in a processing unit 35 into the container 30, a pump 36 being provided as the flow generating device.
  • the discharge line 22 is closed via a check valve 37 and a physiological solution is supplied.
  • the stem cells can now be aspirated by means of a syringe through the line 21 provided for inoculation.
  • the stem cells obtained in this way can now be washed and, if necessary, subjected to further treatment steps before being used for a further purpose, for example as a blood substitute or implant.
  • a vent valve 38 is arranged on the module housing of the bioreactor 10 for venting.
  • FIG. 5 shows a further bioreactor 10a according to the invention with a tubular structure as a tubular cell 7 in perspective.
  • the bioreactor 10a has a cylindrical outer wall 8a, within which concentrically arranged partition elements 11 or pipes are positioned.
  • a tubular support element 12a is arranged coaxially between the two partition elements 11a.
  • the nutrient liquid can flow axially along the tube, wherein, due to a pressure difference, nutrient liquid can flow radially from the outside in or from the inside out and thus crosswise through the partition elements 11a and the carrier element 12a.
  • FIG. 6 shows the coaxial arrangement of the individual tubular elements of the bioreactor 10a even more clearly, an opening 17a being additionally formed in the outer wall 8a.
  • This opening 17a can be used to feed or discharge or to insert a measuring probe. It can also be used to inoculate culture.
  • FIG. 7 Another bioreactor 10b according to the invention can be seen from FIG. 7, two tube cells being provided in a tubular outer wall 8b.
  • a single tube cell comprises two tubular partition elements 10b arranged coaxially to one another, between which a tubular support element 12b is inserted in the center.
  • FIGS. 8 and 9 Another bioreactor 10c according to the invention can be seen from FIGS. 8 and 9.
  • a partition wall element 11c, a carrier element 12c and an internal partition wall element 11c are provided within a cylindrical outer wall 8c.
  • the outer partition element 11c is attached to an annular support body 15c, a plurality of annular support bodies being axially connected to one another via embedded spacers 19c.
  • radial webs 23 project inward at an angular distance of 90 from one another, which end on the tubular support element 12c.
  • a cross-shaped support element 21c with a central opening, in which the inner cylindrical partition wall element 11c is arranged coaxially.
  • Bioreactor 10d is shown in FIG. 10. However, in the bioreactor 10d a total of three inner partition elements 11d are provided, which are arranged at an angular distance of 120 from one another within the cylindrical support element 12d.
  • the carrier element 12e is pleated, i.e. undulating between the two coaxially arranged partition elements lle. In this way, a particularly large surface area of the carrier element 12e is achieved.
  • the support element 12f is arranged like a net or scaffold between the two partition elements 11f, which are held by a support body 15f.
  • Another bioreactor 10g which is comparable to the bioreactor 10d of FIG. 10, is shown in FIG.
  • the carrier element 10g is arranged like a net or scaffold in the space between the two partition wall elements 10g.
  • FIG. 14 Another bioreactor 10h according to the invention is shown in FIG. 14.
  • a cylindrical outer wall 8h comprises a support structure consisting of an annular support body 15h and an approximately cloverleaf-shaped inner support body 21h held therein by four radial webs 23h.
  • the outer partition element 11h is attached to the outside of the annular support body 15h, while a total of nine tubular partition elements 11h are arranged in the inner support body 21h. To enlarge the surface of the support element 12h, it is pleated, i.e. formed with a certain waveform.

Abstract

Die Erfindung betrifft einen Bioreaktor sowie ein Verfahren zur Kultivierung organischen Materials, insbesondere von Zellen, mittels eines Nährmediums. Zur intensiven Kultivierung des organischen Materials bei einfacher und zuverlässiger Handhabung ist bei dem erfindungsgemässen Bioreaktor eine Strömungserzeugungs-Einrichtung vorgesehen, durch welche das Nährmedium in eine Strömung versetzbar ist, wobei in der Strömung eine Aufnahmeeinrichtung angeordnet ist, welche zum Aufnehmen und/oder Halten des organischen Materials ausgebildet ist, und wobei die Aufnahmeeinrichtung zum Durchleiten des strömenden Nährmediums durchlässig ausgebildet ist. Das erfindungsgemässe Verfahren zeichnet sich dadurch aus, dass das Nährmedium zumindest zeitweise in eine Strömung versetzt wird, dass das organische Material, insbesondere Zellen, in oder an einer Aufnahmeeinrichtung gehalten wird, welche für das Nährmedium durchlässig ausgebildet ist, und dass das Nährmedium durch die Aufnahmeeinrichtung hindurchgeleitet wird.

Description

Bioreaktor
Die Erfindung betrifft einen Bioreaktor sowie ein Verfahren zur Kultivierung organischen Materials gemäß dem Oberbegriff der Ansprüche 1 bzw. 15.
Die Kultivierung organischen Materials, vor allem menschlicher oder tierischer Zellen gewinnt in der medizinischen Diagnostik, Therapie und Pharmakologie zunehmend an Bedeutung.
Von besonderem Interesse ist hierbei die Vermehrung von hämatopoetisehen Stammzellen. Diese werden einem Patienten vor einer Strahlen- oder Chemotherapie entnommen und sollen in möglichst großer Anzahl dem Patienten nach Abschluß der Strahlen- und Chemotherapie retransplantiert werden.
Bei diesem Verfahren ist unter anderem die Kryokonservie- rung gebräuchlich, bei welcher entnommene BlutStammzellen während der Dauer der Strahlen- oder Chemotherapie eingefroren werden. Allerdings ist hierdurch keine Anreicherung der Zellen möglich. Vielmehr wird die Anzahl lebender Zellen sowie deren Vitalität deutlich reduziert.
Es wurden bereits Methoden zur Kultivierung und Anreicherung verschiedener Zellen menschlichen Ursprungs entwickelt und etabliert. Typischerweise werden Zellen in Behältern oder Petrischalen kultiviert, in welchen sich ein für die Kultivierung des jeweiligen Zelltyps geeignetes Nährmedium befindet. Während der Kultivierung sind im allgemeinen mehrere Behandlungsschritte notwendig, wie beispielsweise der Austausch des Nährmediums sowie ein Umsetzen kultivierter Zellen in andere Behältnisse.
Durch das erforderliche mehrfache Eingreifen in den Kulti- vierungsprozess wächst die Gefahr der Kontamination des Zellmaterials, beispielsweise durch Laborgeräte oder Umgebungsluft, wodurch das zu kultivierende Material für die weitere Verwendung unbrauchbar wird.
Die Handhabung des gesamten Kultivierungsprozesses gestaltet sich insgesamt relativ aufwendig, so daß ein klinischer Einsatz im großen Maßstab kaum durchführbar ist.
Weiter wurde eine Kultivierung von Zellen in Hohlfasern versucht. Die Zellen in den Hohlfasern werden dabei von der Faseraußenseite diffusiv mit Nährstoffen versorgt. Zu Beginn der Zellkultivierung können dabei relativ gute Wachstumsraten erreicht werden, wobei mit zunehmender Anzahl von Zellen in den räumlich begrenzten Hohlfasern eine weitere Vermehrung problematisch wird.
Eine ähnliche Problematik besteht bei dem gattungsbildenden Bioreaktor und dem gattungsbildenden Verfahren gemäß der EP 0 121 981 AI. Ein poröser, monolithischer Keramikblock, welcher mit einer Vielzahl von feinen, parallel verlaufenden Kanälen durchzogen ist, wird mit Zellen beimpft. Die Zellen lagern sich an der porösen Innenseite der Kanäle an, welche von einer Nährflüssigkeit durchströmt werden. Der Erfindung liegt die A u f g a b e zugrunde, eine Vorrichtung und ein Verfahren zur Kultivierung organischen Materials zu schaffen, welche einerseits eine intensive Kultivierung eines organischen Materials erlauben und andererseits besonders einfach und zuverlässig handhabbar sind.
Die Aufgabe wird erfindungsgemäß durch den Bioreaktor mit den Merkmalen des Anspruchs 1 sowie mit dem Verfahren gemäß Anspruch 15 gelöst.
Bei dem Bioreaktor ist vorgesehen, daß eine Strömungserzeu- gungs-Einrichtung vorhanden ist, durch welche das Nährmedium in eine Strömung versetzbar ist, daß in der Strömung eine Auf ahmeeinrichtung angeordnet ist, welche zum Aufnehmen und/oder Halten des organischen Materials ausgebildet ist, und daß die Aufnahmeeinrichtung zum Durchleiten des strömenden Nährmediums durchlässig ausgebildet ist.
Ein Grundgedanke der Erfindung liegt in der konvektiven Versorgung des organischen Materials mit Nährmedium. Diese Versorgung kann kontinuierlich oder quasi-kontinuierlich erfolgen. Hierdurch kann eine nahezu optimale Bereitstellung der notwendigen Nährstoffe über die gesamte Zeitspanne der Kultivierung gewährleistet werden, wobei gleichzeitig durch die Strömung des Nährmediums für das Zellwachstum abträgliche Stoff echselprodukte rasch entfernt werden. Versuche mit hämopoetischen Stammzellen haben hervorragende Wachstums- und Vitalitätsraten erbracht.
Der Bioreaktor umfaßt ein geschlossenes Gehäuse mit mindestens einem Zu- und Ablauf und mindestens einem Strömungskanal, wobei zur Erzeugung der Strömung ein Gefälle oder gängige Pumpeneinrichtungen, etwa Schlauchpumpen, eingesetzt werden können. Prinzipiell sind aber auch andere Vorrichtungen geeignet, die das Nährmedium in Strömung versetzen können. Die Strömungsgeschwindigkeit und der Durchfluß werden so eingestellt, daß das organische Material in der Aufnahmeeinrich- tung weitgehend immobilisiert bleibt. Das Nährmedium strömt quer durch die Aufnahmeeinrichtung von einem Trennwandelement zum anderen, wobei das organische Material im wesentlichen quer zur Strömung angeordnet ist.
Mit dem erfindungsgemäßen Bioreaktor wird eine ununterbrochene Versorgung des organischen Materials mit den erforderlichen Nährmedien und Stoffen durch Zuleitung während des gesamten Kultivierungsprozesses ermöglicht, wodurch sich die Handhabung und Durchführung des Kultivierungsprozesses stark vereinfacht. Durch das Wegfallen eines mehrfachen externen Eingreifens in den Kultivierungsprozess sowie der damit verbundenen höheren Kontaminationsgefahr ist der erfindungsgemäße Reaktor insbesondere auch für den klinischen Einsatz in großem Umfang geeignet.
Die gleichmäßig gute Versorgung des organischen Materials mit Nährstoffen erlaubt eine intensive Kultivierung des Materials, wobei Anreicherungswerte der Zellen den Faktor 10 und größer erzielen können. Zum Vergleich werden bei der Kultivierung von Zellen in Kulturbehältern oder Petrischalen trotz eines wesentlich größeren Aufwandes typischerweise Anreicherungsfaktoren lediglich zwischen 2 und 4 erreicht.
Ganz allgemein ist der erfindungsgemäße Bioreaktor zur Kultivierung von verschiedenartigstem organischen Material geeignet. Vorzugsweise handelt es sich hierbei um einfache Strukturen, wie Bakterien, Viren, Pilze oder Körperzellen. Hierzu zählen neben den Stammzellen unter anderem mikro- und makrovaskuläre Endothelzellen aus Milz, Nebenniere und Aorta, unterschiedliche Zelltypen aus der Cornea, Augenlinsen- und Retinazellen, Haut-, Knochen- sowie Knochenmarkzellen. Prinzipiell ist aber auch die Kultivierung komplexer Strukturen, etwa von ganzen Organen oder Teilen davon denkbar .
Der erfindungsgemäße Bioreaktor zeichnet sich dadurch aus, daß die Aufnahmeeinrichtung zumindest zwei Trennwandelemente aufweist, durch welche ein Aufnahmeraum umschlossen ist, daß in dem Aufnahmeraum das organische Material angeordnet ist und daß die Trennwandelemente einerseits durchlässig für das Nährmedium und andererseits im wesentlichen undurchlässig für das organische Material ausgebildet sind. Durch die Undurchlässigkeit der Trennwandelemente für das organische Material wird zum einen eine definierte Immobilisierung des organischen Materials in der Aufnahmeeinrichtung erreicht. Es wird ein Wegspülen des organischen Materials verhindert, da dieses in einem definierten Raum in der Strömung eingeschlossen ist. In diesem definierten Raum, der sich vorzugsweise über den gesamten Strömungs- querschnitt erstreckt und relativ schmal ausgebildet ist, kann sich das organische Material auch in gewissem Umfang bewegen, wodurch sich eine gleichmäßig gute Besiedelung mit Zellen ergibt. Zum anderen ist aufgrund der Durchlässigkeit der Trennwandelemente für das Nährmedium weiter eine gute konvektive Versorgung des organischen Materials und damit eine intensive Kultivierung desselben gewährleistet.
Prinzipiell sind zur Verwendung in den Trennwandelementen verschiedenste Materialien denkbar, die die erforderliche Durchlässigkeit für ein zuzuführendes Medium aufweisen. Sie können z.B. aus Gewebe, Gewirke oder Filzen oder aus anderen permeablen Werkstoffen bestehen. Gewebe haben sich als besonders zweckmäßig für Bioreaktoren zur Kultivierung von Leberzellen erwiesen. Gewebe mit ihren relativ groben Maschen erzeugen eine hervorragende Diffusorwirkung bei dem strömenden Nährmedium.
Besonders bevorzugt ist jedoch, wenn die Trennwandelemente eine Membran aufweisen. Da sich Membranen mit unterschiedlichen Eigenschaften hinsichtlich ihrer Durchlässigkeit sowie ihres selektiven Verhaltens herstellen lassen, kann die Versorgung der im Bioreaktor zu kultivierenden Zellen mit bestimmten Stoffen durch den Einsatz einer entsprechend geeigneten Membran gezielt beeinflußt werden. Darüber hinaus ist auch die mechanische Stabilität der Trennwandelemente durch die Wahl von unterschiedlich verstärkten Membranen gezielt einstellbar und an die jeweiligen Erfordernisse des organischen Materials, z.B. bei adhärenten Zellen, anpaßbar. Zur Verstärkung der Membran können beispielsweise textile Verstärkungen, wie Gewebe oder Gewirke, dienen. Es ist ein Einsatz organischer oder anorganischer Membranen, beispielsweise aus einem Polymer, Metall oder Keramik oder einer Kombination aus diesen Materialien möglich.
Für eine besonders gute Immobilisierung des organischen Materials ist bei dem erfindungsgemäßen Bioreaktor vorgesehen, daß die Aufnahmeeinrichtung ein Trägerelement aufweist, welches zum Anlagern des organischen Materials ausgebildet ist und für das Nährmedium durchlässig ist. Ein Anlagern des organischen Materials an das im wesentlichen flächige Trägerelement kann durch eine spezielle Struktur des Trägerelementes und/oder durch den Strömungsdruck er- reicht werden. Das Trägerelement kann alleine oder bevorzugt in Kombination mit den Trennwandelementen die Aufnahmeeinrichtung bilden. Diese Ausführung eignet sich unter anderem für die Kultivierung von Implantaten, etwa von in vitro-gezüchteten Hautflächen, für welche eine großflächige Anordnung der immobilisierten Zellen erforderlich ist.
Hierbei ist es vorteilhaft, wenn das Trägerelement ein tex- tiles Trägermaterial umfaßt. Durch die entsprechende Wahl, z.B. von Gewebeart und -material, Filamentstärke, Maschenweite und Fadenzahl lassen sich in einfacher Weise für jeden Anwendungsfall ein nahezu ideales Verhältnis zwischen Oberfläche und Reaktorvolumen sowie gute Durchflußeigenschaften für die NährstoffVersorgung der Zellen einstellen. Dies erlaubt eine gezielte Beeinflussung und Förderung der Kultivierung des organischen Materials.
Als textile Trägermaterialien eignen sich hierbei technische Gewebe, Gewirke und Gelege, bei welchen die Struktur aus Monofilamenten oder Drähten exakt definiert wird. Die Monofilamente oder Drähte können beispielsweise aus Metall, Keramik, synthetischen und/oder natürlichen Materialien, wie Zellulose, mit und ohne Oberflächenbeschichtungen bestehen. In bestimmten Fällen sind auch Multifilamentgewebe zweckmäßig, bei welchen die die Gewebestruktur definierenden Fäden ihrerseits aus einer Vielzahl kleinerer Fäden bestehen.
Eine gezielte Einlagerung von Zellen in das Trägerelement kann durch eine dreidimensionale Struktur erreicht werden. Das Trägerelement kann beispielsweise ein poräses Kunststoff- oder Keramikmaterial oder ein sogenanntes dreidimensionales technisches Gewebe sein. Derartige Gewebe weisen zwei oder mehrere übereinanderliegende und zum Teil verbundene oder verwobene Gewebematrizen auf, welche einen sicheren Halt für eingelagertes Zellmaterial bieten. Weiterhin kann eine dreidimensionale Struktur durch Falten, Plissieren oder Rollen eines etwa zweidimensionalen Elements erfolgen. Überdies kann eine Gerüststruktur des Trägerelements oder ein Aufbau aus Strukturelementen, wie zum Beispiel Rohrkörper oder Waben, vorgesehen sein. Schließlich können auch sogenannte non-woven-Materialien und Vliesstoffe zur Anwendung kommen.
Bei der Verwendung von technischen Geweben als Trägerelement ist es von Vorteil, wenn das technische Gewebe ober- fläσhenbehandelt ist und eine bioverträgliche Oberfläche mit einer Struktur für eine Adhäsion des organischen Materials ausgebildet ist. Auf diese Weise läßt sich die Oberfläche eines stabilen Gewebes, etwa aus Polyester, Polyamid, einem Trifluorethylen/Ethylen-Copolymer, Metall oder Keramik, für verschiedene Zwecke gezielt funktionalisieren. So kann das Zellwachstum durch die Erzeugung einer hydrophilen Gewebeoberfläche oder durch die Erhöhung der Konzentration an stickstoffhaltigen funktioneilen Gruppen positiv beeinflußt werden. Andere Substanzen, wie z.B. Immunglobu- lin G (IgG), dagegen werden bevorzugt an hydrophoben Oberflächen adsorbiert.
Eine besonders effektive Oberflächenbehandlung stellen hierbei Niedertemperatur-Plasmaverfahren dar, mit welchen beispielsweise Textilmaterialien aus Polymer, Metall oder Keramik und Membrane gezielt mit einer inerten Oberfläche beschichtet und damit funktionalisiert werden können, ohne daß das zu behandelnde Gewebe aggressiven Lösungen oder hohen Temperaturen ausgesetzt werden muß. Auf diese Weise lassen sich unterschiedliche Materialeigenschaften, wie z.B. eine hohe mechanische Stabilität eines Trägergrundmaterials systematisch mit gewünschten Oberflächeneigenschaf- ten, wie z.B. Hydrophilie und Zelladhäsion, kombinieren.
Es ist vorgesehen, daß der erfindungsgemäße Bioreaktor als eine Flachzelle aufgebaut ist, bei welcher die Aufnahme- einrichtung vorzugsweise kreisrund ausgebildet ist. Bei einem kreisrund ausgebildeten Hohlraum in der Flachzelle wird eine besonders gute Strömung und damit eine gleichmäßige Versorgung der zu kultivierenden Zellen mit Nährmedium gewährleistet. Die Flachzelle kann schichtweise, etwa aus verklebten Kunststoffelementen aufgebaut sein, wodurch sich ein kompakter und zugleich einfach herzustellender Bioreaktor ergibt. Die einfache Herstellbarkeit erlaubt sogar den Einsatz des Bioreaktors als Einmalartikel, was für medizinische Anwendungen vorteilhaft sein kann. Gleichzeitig ist die Flachzelle auch so robust, daß eine Sterilisation durch Autoklavieren oder durch γ-Sterilisieren möglich ist. Für das Beimpfen und Ernten größeren organischen Materials, etwa von Implantaten, ist der Bioreaktor montierbar bzw. demontierbar .
Eine alternative Ausführungsform der Erfindung besteht darin, dass der Bioreaktor als Rohrzelle aufgebaut ist, bei der die Trennwandelemente rohrförmig ausgebildet sind. Eine derartige rohrartige Anordnung der Trennwandelemente führt zu einer besonders kompakten Ausgestaltung.
Eine besonders gute Strömung des Nährmediums wird erfindungsgemäß dadurch erreicht, dass die rohrförmigen Trennwandelemente achsparallel, vorzugsweise koaxial zueinander angeordnet sind. Bei der koaxialen Anordnung, wobei auch das Trägerelement zylinderförmig ausgebildet und zwischen - lü ¬
den beiden rohrförmigen Trennwandelementen angeordnet sein kann, stellt sich eine Strömung des Nährmediums radial von außen nach innen oder radial von innen nach außen ein. Eine zuverlässige Positionierung der einzelnen Elemente zueinander ist durch radial verlaufende Stege oder Stutzkörpers gewährleistet, die an dem umgebenden Gehäuse befestigt sind. Ein besonders gleichmäßiger Zu- und Abfluss des Nährmediums wird dadurch erzielt, dass innerhalb des äußeren rohrförmigen Trennwandelementes mehrere innere, rohrförmige Trennwandelemente angeordnet sind, die zueinander achsparallel verlaufen.
Bei einer weiteren Ausgestaltung der Erfindung ist es vorteilhaft, wenn mehrere Flachzellen oder Rohrzellen als Module in einer Strömungsrichtung parallel und/oder seriell angeordnet sind. Hierbei kann das aus einer ersten Flachzelle ausströmende Medium unmittelbar weiteren Flachzellen zugeführt werden, so daß eine besonders effektive Nutzung des Nährmediums sowie eine eventuelle Verwertung von Stoffwechselprodukten einer vorausgehenden Zelle möglich ist. Zweckmäßig ist in der Regel jedoch eine parallele Anordnung, um eventuelle Vergiftungen durch StoffWechselprodukte auszuschließen.
In einer bevorzugten Ausführungsform des Bioreaktors ist eine Steuereinrichtung vorgesehen, durch welche die Strö- mungserzeugungs-Einrichtung, eine Temperatureinstelleinheit, eine Begasungseinheit und/oder weitere Versorgungseinheiten steuerbar und/oder regelbar sind. Hierdurch läßt sich der Kultivierungsprozeß des organischen Materials über verschiedene Parameter, wie Durchflußgeschwindigkeit, Durchflußmenge, Temperatur und Druck des Nährmediums sowie die Zu- und Abführung weiterer Medien und Stoffe gezielt beeinflussen. Insbesondere ist durch eine Steuerung bzw. Regelung der unterschiedlichen Einheiten von der Steuereinrichtung durch eine zentrale Vorgabe bestimmter Steuer- bzw. Regelprogramme möglich, die, je nach Anforderung, auf einzelne organische Materialien oder Kultivierungsprozesse abgestimmt sind. Auf diese Weise wird eine bedarfsgerechte Einstellung und Steuerung unterschiedlicher Prozeßparameter ermöglicht.
Hierbei ist es besonders vorteilhaft, wenn in einer Strömungsrichtung nach der Aufnahmeeinrichtung eine Sensoreinrichtung angeordnet ist, durch welche physikalische und chemische Zustandswerte des Nährmediums ermittelbar sind und die Sensoreinrichtung mit der Steuereinrichtung verbunden ist. Durch die Sensoreinrichtung können z.B. die Konzentration der Nährstoffe oder Stoffwechselprodukte in dem Nährmedium bestimmt werden. Durch die Kopplung der Sensoreinrichtung mit der Steuereinrichtung kann schließlich eine gegebenenfalls erforderliche Änderung der chemischen und physikalischen Zustandswerte des Nährmediums vorgenommen werden. Diese Änderung kann aufgrund der beschriebenen Kopplung nahezu in "Echtzeit" erfolgen, d.h. in unmittelbarer Folge auf die Ermittlung der entsprechenden Zustandswerte.
Schließlich ist der Bioreaktor in einer bevorzugten Ausgestaltung dadurch gekennzeichnet, daß ein geschlossenes Gehäuse vorgesehen ist, in welchem die Aufnahmeeinrichtung angeordnet ist und zumindest ein Zufluß und ein Abfluß für das Nährmedium sowie ein Zugang zum Einbringen und Abführen des organischen Materials vorgesehen sind. Durch das geschlossene Gehäuse ist gewährleistet, daß das Innere, ins- besondere die Aufnahmeeinrichtung des Bioreaktors, nach dessen Herstellung und Sterilisierung auch nach Lagerung und Transport noch steril bleibt. Darüber hinaus wird eine kontaminationsfreie Kultivierung des organischen Materials ermöglicht, da die einzelnen Behandlungsschritte, z.B. das Einbringen und Abführen des organischen Materials sowie das Zu- und Abführen des Nährmediums oder anderer Substanzen, bei geschlossenem Gehäuse vorgenommen werden können und so die Gefahr einer Kontamination des organischen Materials stark vermindert werden kann. Durch den einfachen Aufbau des Bioreaktors ist dieser kostengünstig herstellbar und für einen Einsatz als Einmal-Artikel im klinischen Bereich besonders geeignet.
Ein Aspekt des erfindungsgemäßen Verfahrens gemäß Anspruch 15 liegt darin, das in Strömung versetzte Nährmedium durch die das organische Material haltende Aufnahmeeinrichtung hindurchzuleiten. Dadurch ist eine einfach handhabbare und zuverlässige Kultivierung des organischen Materials möglich. Insbesondere ist durch das Durchleiten des Nährmediums durch die Aufnahmeeinrichtung hindurch eine gute Versorgung des daran bzw. darin gehaltenen organischen Materials mit Nährstoffen gewährleistet, da ein beständiges Umspülen oder gegebenenfalls Durchsetzen mit Nährlösung erzielt wird. Die Strömung kann gleichbleibend oder gepulst sein.
Um die Kontaminationsgefahr für das zu kultivierende organische Material besonders gering zu halten, ist es vorteilhaft, wenn vor einem Beimpfen oder Einbringen des organischen Materials in die Aufnahmeeinrichtung diese sterilisiert wird. Die Sterilisation der Aufnahmeeinrichtung kann hierbei z.B. herstellerseitig unmittelbar nach der Herstel- lung des Bioreaktors vorgenommen werden. Durch geeignete Maßnahmen zum Verschließen des Bioreaktors kann die Sterilität der Aufnahmeeinrichtung dann bis zum Zeitpunkt des Einsatzes bewahrt werden. Es ist aber auch möglich, die Sterilisation der Aufnahmeeinrichtung erst unmittelbar vor dessen Einsatz vorzunehmen. Prinzipiell können aber zur Sicherung einer besonders hohen Kontaminationsfreiheit beide Maßnahmen kombiniert werden. Außerdem ist auch eine Sterilisation des gesamten Bioreaktors denkbar, wenn beispielsweise besonders hohe Anforderung an die Sicherung der Keimfreiheit gestellt werden.
Zur weiteren Vereinfachung des Kultivierungsprozesses ist vorgesehen, daß vor dem Abführen des kultivierten organischen Materials ein Medium, insbesondere eine physiologische Lösung mit einem Enzym, etwa eine Trypsinlösung zum Lösen und Ausspülen des angelagerten organischen Materials eingebracht wird. Hierdurch erübrigt sich ein Eingreifen in den geschlossenen Bioreaktor, wie es beispielsweise bei einem mechanischen Ablösen des angelagerten organischen Materials mit geeigneten Instrumenten erforderlich ist. Neben dieser Vereinfachung der Handhabung läßt sich durch dieses nicht- invasive Ablösen des Materials die Gefahr sowohl einer Kontamination als auch einer mechanischen Beschädigung des Gewebes stark vermindern. Die Spüllösung kann dabei durch denselben Zugang erfolgen, wie die Beimpfung mit organischem Material. Beim Beimpfen und Ausspülen, auch Ernten genannt, wird zweckmäßigerweise die Nährmediumströmung unterbrochen.
Eine vorteilhafte Ausgestaltung des Verfahrens sieht vor, daß die Strömungsrichtung des durch die Aufnahmeeinrichtung geleiteten Nährmediums während der Kultivierung des organischen Materials geändert wird. Hierdurch kann ins- besondere bei organischem Material mit großer lateraler Ausdehnung und Dicke eine gute Versorgung der Zellen erreicht werden. Gegebenenfalls auftretende Nährstoffgra- dienten im Material können auf diese Weise deutlich reduziert werden.
Um eine an den jeweiligen zeitlichen Verlauf des Kultivierungsprozesses angepaßte Versorgung des organischen Materials mit Nährstoffen zu gewährleisten und damit eine intensive Kultivierung desselben zu erzielen, ist bei dem erfindungsgemäßen Verfahren vorgesehen, daß stoffliche Zusammensetzung, stöchiometrische Zusammensetzung, Zustand oder Durchflußgeschwindigkeit des Nährmediums während der Kultivierung geändert werden.
Hierbei ist außerdem von Vorteil, wenn während des Durch- leitens des Nährmediums durch die Aufnahmeeinrichtung chemische und/oder physikalische Zustandswerte des Nährmediums gemessen werden, daß die gemessenen Zustandswerte ausgewertet werden und die chemischen und/oder physikalischen Zustandswerte des Nährmediums in Abhängigkeit von den gemessenen Zustandswerten geändert werden. Auf diese Weise lassen sich besonders gut chemische und/oder physikalische Parameter des Nährmediums oder zusätzlicher Nährstoffe an den sich ändernden Bedarf der Zellen im Verlauf des Kultivierungsprozesses anpassen. Es lassen sich auch insbesondere Stoffwechselprodukte des organischen Materials über einen Lactat- oder CO -Wert im Nährmedium fest-
2„ stellen und zur Steuerung, Überwachung und Dokumentation des Kultivierungsprozesses sehr gut einsetzen. Es kann so etwa der beste Zeitpunkt zum Ernten ermittelt werden, beispielsweise unmittelbar vor einer unerwünschten Differenzierung bei der Kultivierung von Stammzellen. Im folgenden wird die Erfindung anhand von Zeichnungen bevorzugter Ausführungsbeispiele näher beschrieben. Es zeigen in einer stark schematisierten Darstellung
Fig. 1 einen Querschnitt einer bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Bioreaktors als Flachzelle;
Fig. 2 eine Ansicht auf eine Zusammenstellung einzelner Komponenten eines erfindungsgemäßen Bioreaktors;
Fig. 3 einen zusammengebauten Bioreaktor als Flachzelle;
Fig. 4 ein Diagramm einer Anlage mit einem Bioreaktor;
Fig. 5 eine schematische Ansicht einer weiteren bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäs- sen Bioreaktors als Rohrzelle;
Fig. 6 eine schematische Querschnittsansicht des Bioreaktors von Fig. 5;
Fig. 7 eine Querschnittsansicht einer weiteren Ausführungsform des erfindungsgemäßen Bioreaktors;
Fig. 8 eine schematische Querschnittsansicht einer
Ausführungsform des erfindungsgemäßen Bioreaktors mit Stützgerüst; Fig. 9 ein Längsschnitt durch den Bioreaktor von Fig. 8; und
Fig. 10 bis 14 weitere Querschnittsansichten alternativer
Ausführungsformen des erfindungsgemäßen Bioreaktors .
Der in Fig. 1 dargestellte Querschnitt einer bevorzugten Ausführungsform eines erfindungsgemäßen Bioreaktors 10 zur Kultivierung von Stammzellen weist ein Trägerelement 12, davon beabstandete, jeweils zweiteilige Trennwandelemente 11 sowie eine beidseitige Abdeckung 14 auf. Durch die zwischen den einzelnen Elementen vorgesehenen Abstandhalter 16, welche separate Ringelemente oder Teil des Gehäuses sein können, ist eine Einstellung eines gewünschten Abstan- des zwischen dem Trägerelement 12 und dem Trennwandelement 11 bzw. zwischen dem Trennwandelement 11 und der Abdeckung 14 möglich.
Die Abdeckungen 14 und die Abstandhalter 16 sind aus Poly- carbonat hergestellt. Das Trägerelement 12 ist als technisches Gewebe ausgebildet. Als Fasermaterial wird vorzugsweise ein Monofilament aus Polyamid 6.6 (PA 6.6) oder Poly- ethylenterephtalat ( PET ) eingesetzt . Die Maschenweite des Gewebes beträgt durchschnittlich 20 μm und eine Dicke von etwa 55 bis 60 μm auf. Das Gewicht des Gewebes liegt bei etwa 35 bis 40 g/m .
Eine Aufnahmeeinrichtung für das organische Material ist durch das Trägerelement 12 und die Trennwandelemente 11 gebildet, welche einen Aufnahmeraum 13 der Aufnahmeeinrich- tung seitlich begrenzen. In dem gezeigten Beispiel weisen die Trennwandelemente 12 jeweils eine Membran auf, welche auf einem darunterliegenden Stützgewebe aufgebracht ist. Das Membranmaterial umfaßt Polyamid 66 (PA 66). Als Stützgewebe dienen beispielsweise Monofilamentgewebe aus Polye- thylenterephtalat (PET) mit einer Maschenweite von etwa 265 μm, einer Dicke von etwa 200 μm sowie einem Gewicht von typischerweise 85 g/m . Typische Membrandicken liegen zwischen 0,45 μm und 0,8 μm. Die Abstandhalter 16 weisen zur Beabstandung der einzelnen Elemente des Bioreaktors eine Höhe von etwa 3 mm auf.
Fig. 2 zeigt eine Ansicht auf eine Zusammenstellung einzelner Komponenten des erfindungsgemäßen Bioreaktors 10. Zwischen den beiden Abdeckungen 14 befinden sich mehrere ringförmige Trägerplatten 24, an welchen das Trägerelement 12 bzw. die Trennwandelemente 11 angebracht sind, welche aus einer Membran 11a und einem Stützgewebe 11b bestehen. Die kreisrunden Formen der verwendeten Gewebe bzw. Membranen sind paßgenau ausgeschnitten, beispielsweise mittels eines Lasers, wobei das als technische Gewebe ausgebildete Trägerelement 12 und die Trennwandelemente 11 auf den Trägerplatten 24 mittels unter UV-Licht aushärtbarem Klebstoff befestigt oder angeschweißt sind.
Die ringförmigen Trägerplatten 24 bilden mit den Abdeckungen 14 ein Gehäuse mit Hohlraum, in welchen Leitungen zum Zu- und/oder Abführen von Fluiden münden. Bei dem vorliegenden Ausführungsbeispiel erfolgt die Zuführung des Nährmediums in den Bioreaktor 10 über die Zuführleitung 19, während zum Abführen des Nährmediums die Abfuhrleitung 22 vorgesehen ist. Das Beimpfen des organischen Materials sowie das Zuführen eines enzymhaltigen Mediums zum Lösen des angelagerten organischen Materials erfolgt über zwei Leitungen 21, die in die Aufnahmeeinrichtung des Bioreaktors 10 münden. Zur Entlüftung des Bioreaktors 10 ist an der Trägerplatte 24 mit der Zuführleitung 19 eine Entlüftungsleitung 20 angeordnet.
Wie dieses Ausführungsbeispiel zeigt, übernehmen hier die im wesentlichen gleich aufgebauten Trägerplatten 24 die Funktion der in Fig. 1 dargestellten Abstandhalter 16. Durch Variation der Dicke der einzelnen Trägerplatten bzw. der Abstandshalter 16 kann der Abstand der einzelnen Bestandteile des Bioreaktors 10 an die für die Kultivierung bestimmter organischer Materialien erforderlichen Bedingungen hervorragend angepaßt werden. Eine wesentliche Rolle spielt hierbei das Verhältnis der Reaktoroberfläche zum Reaktorvolumen, welches durch die Wahl der entsprechenden Gewebe einstellbar ist. Im übrigen läßt sich der Abstand zwischen den einzelnen Bestandteilen auch beispielsweise durch das Einlegen unterschiedlicher Dichtungen oder Zwischenplatten leicht verändern, wobei durch lösbare Befestigungsmittel auch eine Demontage möglich ist.
An die Abdeckungen 14 können sich außerdem Temperierkammern (nicht dargestellt) anschließen, welche zur Aufrechterhaltung einer gleichmäßigen Prozeßtemperatur bei der Kultivierung des organischen Materials dienen. Typischerweise verfügen solche Temperierkammern über eine elektrische Heizung und/oder Kühlung oder sind über Zu- und Ableitungen an einem Wärme- oder Kühlbad angeschlossen. Prinzipiell ist aber auch die Lagerung des Bioreaktors in einem temperierten Wärmeschrank möglich.
Der in Fig. 2 mit seinen einzelnen Bestandteilen beschriebene Bioreaktor 10 ist in der Fig. 3 als zusammengesetzte, fertige Flachzelle mit Zuführ- und Abführleitungen darge- stellt. Der erfindungsgemäße Bioreaktor 10 besitzt ein kompaktes Format, welches dessen Handhabung im Laborbereich ebenso wie im klinischen Bereich besonders erleichtert.
Im Zusammenhang mit dem Schaubild gemäß Fig. 4 werden kurz die wichtigsten Schritte beim Betrieb des Bioreaktors 10 erläutert, welcher zur Kultivierung von peripheren, hämato- poetischen Stammzellen eingesetzt wird. Diese Stammzellen werden zur Blutstammzellentransplantation nach einer Hochdosischemotherapie benötigt.
Zum Beimpfen des Bioreaktors 10 wird dieser zunächst über eine Zuführleitung 19 aus einem Behälter 30 mit Nährmedium gefüllt, welches in radialer Richtung in den Reaktorhohl- räum einströmt. Die entsprechende Zuführleitung 19 wird zunächst über ein Sperrventil 31 geschlossen, während eine Abführleitung 22 offen bleibt. Die für die Beimpfung vorgesehenen Zuführleitungen 21 werden über ihre Zuleitungs- Sperrventile 32 geöffnet und die Stammzellen, welche einem Patienten vor der Strahlen- oder Chemotherapie entnommen wurden, können durch diese beispielsweise mit einer Spritze in das Reaktormodul 10 eingespült werden. Nach diesem Vorgang werden die für die Beimpfung vorgesehenen Zuführlei- tungen 21 sowie die Abführleitung 22 geschlossen. Die Stammzellen befinden sich in der Aufnahmeeinrichtung und können diese besiedeln.
Nach einer gewissen Zeit, welche für eine gleichmäßige Verteilung und Besiedelung der Stammzellen vorteilhaft ist, werden zum Fördern des Zellwachstums die Zuführleitung 19 sowie eine Abführleitung 22 geöffnet. Durch die Zuführleitung 19 wird dann temperierte Nährlösung zugeführt. Im Verlauf des Kultivierungsprozesses kann die Menge der pro Zeiteinheit zugeführten Nährlösung allmählich erhöht werden, da mit zunehmender Dauer des Kultivierungsprozesses mehr Zellen vorhanden sind und somit der Nährstoffbedarf anwächst.
Die Zu- und Ableitung des Nährmediums erfolgt so, daß der im Querschnitt kreisförmige Hohlraum des Bioreaktors 10 und damit die Aufnahmeeinrichtung möglichst gleichmäßig durchströmt wird. Hierdurch wird über die gesamte Fläche des Zellträgers ein gleicher und gleichbleibender Nährstoffgradient sichergestellt. Gleichzeitig werden schädliche Stoff- Wechselprodukte durch die Nährstoffströmung schnell und zuverlässig aus dem Bioreaktor 10 abgeführt.
Nach Austritt des Nährmediums über die Abführleitung 22 durchläuft das Nährmedium eine erste Meßeinrichtung 33, mit welcher der Gehalt an Nährstoffen und Schadstoffen sowie weitere physikalische und chemische Zustandswerte erfaßt werden. Die ermittelten Werte dienen zur Steuerung und Überwachung des Kultivierungsprozesses mittels einer entsprechenden Steuereinrichtung. Diese kann weiter mit einer zweiten Meßeinrichtung 34 in der Zuführleitung 19 verbunden sein. Das Nährmedium kann nach einer durchgeführten Reinigung und Wiederaufbereitung in einer Aufbereitungseinheit 35 im Kreislauf in den Behälter 30 rückgeführt werden, wobei eine Pumpe 36 als Strömungserzeugungseinrichtung vorgesehen ist.
Zur Entnahme kultivierter Zellen werden schließlich über die Leitung 21 Enzyme zugeführt, welche eine Ablösung der Stammzellen vom Trägerelement 12 bewirken. Die Abführleitung 22 wird dabei über ein Sperrventil 37 geschlossen und eine physiologische Lösung wird zugeführt. Die Stammzellen können nun mittels einer Spritze durch die für die Beimpfung vorgesehene Leitung 21 abgesaugt werden. Die hierdurch gewonnenen Stammzellen können nun gewaschen und gegebenenfalls weiteren Behandlungsschritten unterzogen werden, bevor sie einer weiteren Verwendung, z.B. als Blutersatzstoff oder Implantat, zugeführt werden. Zur Entlüftung ist an dem Modulgehäuse des Bioreaktors 10 ein Entlüftungsventil 38 angeordnet.
In Fig. 5 ist ein weiterer erfindungsgemäßer Bioreaktor 10a mit einer rohrförmigen Struktur als Rohrzelle 7 perspektivisch dargestellt. Der Bioreaktor 10a hat eine zylindrische Außenwand 8a, innerhalb welcher konzentrisch angeordnete Trennwandelemente 11 oder Rohre positioniert sind. Zwischen den beiden Trennwandelementen 11a ist koaxial ein rohrförmiges Trägerelement 12a angeordnet. Bei diesem erfindungsgemäßen Bioreaktor 10a kann die Nährflüssigkeit axial entlang des Rohres fließen, wobei aufgrund eines Druckunterschiedes dabei Nährflüssigkeit radial von außen nach innen bzw. von innen nach außen und somit quer durch die Trennwandelemente 11a und das Trägerelement 12a strömen kann.
In Fig. 6 ist die koaxiale Anordnung der einzelnen rohrförmigen Elemente des Bioreaktors 10a noch deutlicher dargestellt, wobei zusätzlich eine Öffnung 17a in der Außenwand 8a ausgebildet ist. Diese Öffnung 17a kann zur Zu- oder Abführung oder zum Einbringen einer Messsonde genutzt werden. Ebenfalls kann sie zur Beimpfung der Kultur dienen.
Ein anderer erfindungsgemäßer Bioreaktor 10b ist aus Fig. 7 ersichtlich, wobei in einer rohrförmigen Außenwand 8b zwei Rohrzellen vorgesehen sind. Eine einzelne Rohrzelle umfasst dabei zwei koaxial zueinander angeordnete rohrförmige Trennwandelemente 10b, zwischen denen mittig ein rohrförmiges Trägerelement 12b eingebracht ist. Aus den Fig. 8 und 9 ist ein weiterer erfindungsgemäßer Bioreaktor 10c zu entnehmen. Innerhalb einer zylindrischen Außenwand 8c ist wie bei den vorbeschriebenen Ausführungsformen koaxial zueinander ein Trennwandelement 11c, ein Trägerelement 12c sowie ein innenliegendes Trennwandelement 11c vorgesehen. Zur Formstabilisierung ist das äußere Trennwandelement 11c an einem ringförmigen Stützkörper 15c angebracht, wobei mehrere ringförmige Stützkörper axial über eingebettete Distanzhalter 19c miteinander verbunden sind. An der radialen Innenseite des ringförmigen Stütz- o körpers 15c ragen in einem Winkelabstand von 90 zueinander Radialstege 23 nach innen, welche an dem rohrförmigen Trägerelement 12c enden. Innerhalb des rohrförmigen Trägerelementes 12c ist wiederum ein kreuzförmiges Stützelement 21c mit einer Mittenöffnung vorgesehen, in welchem koaxial das Innere zylindrische Trennwandelement 11c angeordnet ist.
Ein mit dem vorbeschriebenen Bioreaktor 10c vergleichbarer
Bioreaktor lOd ist in Fig. 10 gezeigt. Allerdings sind bei dem Bioreaktor lOd insgesamt drei innere Trennwandelemente o lld vorgesehen, welche in einem Winkelabstand von 120 zueinander innerhalb des zylindrischen Trägerelementes 12d angeordnet sind.
Bei dem rohrartig aufgebauten Bioreaktor lle gemäß Fig. 11 ist das Trägerelement 12e plissiert, d.h. wellenförmig zwischen den beiden koaxial zueinander angeordneten Trennwandelemente lle ausgebildet. Hierdurch wird eine besonders große Oberfläche des Trägerelementes 12e erreicht.
Bei einem anderen Bioreaktor lOf gemäß Fig. 12, welcher ähnlich dem Bioreaktor 10c gemäß Fig. 8 und 9 ausgebildet ist, ist das Trägerelement 12f netz- oder gerüstartig zwischen den zwei Trennwandelementen llf angeordnet, welche durch einen Stützkörper 15f gehalten werden. Ein vergleichbar zu dem Bioreaktor lOd von Fig. 10 ausgebildeter anderer Bioreaktor 10g geht aus Fig. 13 hervor. Hier ist ebenfalls das Trägerelement 10g netz- oder gerüstartig in dem Raum zwischen den zwei Trennwandelementen 10g angeordnet.
Ein weiterer erfindungsgemäßer Bioreaktor 10h ist in Fig. 14 dargestellt. Eine zylindrische Außenwand 8h umfasst ein Stützgerüst bestehend aus einem ringförmigen Stützkörper 15h und einem darin über vier Radialstege 23h gehaltenen, etwa kleeblattförmigen inneren Stützkörper 21h. An der Außenseite des ringförmigen Stützkörpers 15h ist das äußere Trennwandelement 11h angebracht, während in dem inneren Stützkörper 21h insgesamt neun rohrförmige Trennwandelemente 11h angeordnet sind. Zur Vergrößerung der Oberfläche des Trägerelementes 12h ist dieses plissiert, d.h. mit einer gewissen Wellenform ausgebildet.

Claims

PATENTANSPRÜCHE
1. Bioreaktor zur Kultivierung organischen Materials, mit einer Aufnahmeeinrichtung zum Aufnehmen und/oder Halten des organischen Materials, wobei die Aufnah- meeinrichtung zum Durchleiten eines Nährmediums durchlässig ausgebildet ist, und mit einer Strömungserzeugungs-Einrichtung, durch welche das Nährmedium in eine Strömung durch die Aufnahmeeinrichtung versetzbar ist, dadurch g e k e n n z e i c h n e t,
- daß die Aufnahmeeinrichtung zumindest zwei Trennwandelemente (11) aufweist, durch welche ein Aufnahmeraum ( 13 ) zum Aufnehmen des organischen Materials umschlossen ist, und
- daß die Trennwandelemente (11) einerseits durchlässig für das Nährmedium und andererseits im wesentlichen undurchlässig für das organische Material ausgebildet sind.
2. Bioreaktor nach Anspruch 1, dadurch g e k e n n z e i c h n e t, daß die Trennwandelemente (11) eine Membran aufweisen.
3. Bioreaktor nach Anspruch 1, dadurch g e k e n n z e i c h n e t, daß die Trennwandelemente (11) ein Gewebe aufweisen.
4. Bioreaktor nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch g e k e n n z e i c h n e t,
- daß die Aufnahmeeinrichtung ein Trägerelement ( 12 ) aufweist, welches zum Anlagern des organischen Materials ausgebildet ist, und
- daß das Trägerelement ( 12 ) für das Nährmedium durchlässig ist.
5. Bioreaktor nach Anspruch 4, dadurch g e k e n n z e i c h n e t, daß das Trägerelement (12) eine dreidimensionale Struktur aufweist, insbesondere als dreidimensionales Gewebe oder als ein poröses Material ausgebildet ist.
6. Bioreaktor nach Anspruch 4 oder 5, dadurch g e k e n n z e i c h n e t, daß das Trägerelement ( 12 ) ein textiles Trägermaterial umfaßt.
7. Bioreaktor nach Anspruch 6, dadurch g e k e n n z e i c h n e t,
- daß das textile Trägermaterial oberflächenbehandelt ist und
- daß eine bioverträgliche Oberfläche mit einer Struktur für eine Adhäsion des organischen Materials ausgebildet ist.
8. Bioreaktor nach einem der Ansprüche 1 bis 7, dadurch g e k e n n z e i c h n e t, daß dieser als eine Flachzelle (9) aufgebaut ist, bei welcher die Aufnahmeeinrichtung vorzugsweise kreisrund ausgebildet ist.
9. Bioreaktor nach einem der Ansprüche 1 bis 7, dadurch g e k e n n z e i c h n e t, daß dieser als Rohrzelle (7) aufgebaut ist, bei der die Trennwandelemente (11) rohrförmig ausgebildet sind.
10. Bioreaktor nach Anspruch 9, dadurch g e k e n n z e i c h n e t, daß die rohrförmigen Trennwandelemente (11) achsparallel, vorzugsweise koaxial zueinander angeordnet sind.
11. Bioreaktor nach einem der Ansprüche 8 bis 10, dadurch g e k e n n z e i c h n e t, daß mehrere Flachzellen ( 9 ) oder Rohrzellen ( 7 ) als Module in einer Strömungsrichtung parallel und/oder seriell angeordnet sind.
12. Bioreaktor nach einem der Ansprüche 1 bis 11, dadurch g e k e n n z e i c h n e t, daß eine Steuereinrichtung vorgesehen ist, durch welche die Strömungserzeugungs-Einrichtung, eine Temperatureinstelleinheit, eine Begasungseinheit, eine Entgasungseinheit und/oder weitere Versorgungseinheiten steuerbar und/oder regelbar sind.
13. Bioreaktor nach Anspruch 12, dadurch g e k e n n z e i c h n e t,
- daß in einer Strömungsrichtung nach dem Aufnahmeraum (13) eine Sensoreinrichtung angeordnet ist, durch welche physikalische und chemische Zustandswerte des Nährmediums ermittelbar sind und
- daß die Sensoreinrichtung mit der Steuereinrichtung verbunden ist.
14. Bioreaktor nach einem der Ansprüche 1 bis 13, dadurch g e k e n n z e i c h n e t,
- daß ein geschlossenes, insbesondere demontierbares Gehäuse vorgesehen ist, in welchem die Aufnahmeeinrichtung angeordnet ist, und
- daß zumindest ein Zufluß und ein Abfluß für das Nährmedium sowie ein Zugang zum Einbringen und Abführen des organischen Materials vorgesehen sind.
15. Verfahren zur Kultivierung organischen Materials, bei dem
- ein Nährmedium zumindest zeitweise in eine Strömung versetzt wird,
- das organische Material in oder an einer Aufnahmeeinrichtung gehalten wird und
- das Nährmedium durch die Aufnahmeeinrichtung hindurchgeleitet wird, dadurch g e k e n n z e i c h n e t,
- daß das organische Material in einem Aufnahmeraum (13) angeordnet wird, welcher von zwei für das Nährmedium durchlässigen, jedoch für das organische Material weitgehend undurchlässigen Trennwandelementen (11) umschlossen ist.
16. Verfahren nach Anspruch 15, dadurch g e k e n n z e i c h n e t, daß vor einem Beimpfen oder einem Einbringen des organischen Materials in die Aufnahmeeinrichtung diese sterilisiert wird.
17. Verfahren nach Anspruch 15 oder 16, dadurch g e k e n n z e i c h n e t, daß vor einem Abführen des kultivierten organischen Materials aus der Aufnahmeeinrichtung ein Medium, insbesondere ein Enzym, zum Lösen von angelagertem organischen Material eingebracht wird.
18. Verfahren nach einem der Ansprüche 15 bis 17, dadurch g e k e n n z e i c h n e t, daß die Strömungsrichtung des durch die Aufnahmeeinrichtung geleiteten Nährmediums während der Kultivierung des organischen Materials geändert wird.
19. Verfahren nach einem der Ansprüche 15 bis 18, dadurch g e k e n n z e i c h n e t, daß ein chemischer und/oder physikalischer Zustand des Nährmediums, insbesondere eine stoffliche Zusammensetzung, eine stöchiometrische Zusammensetzung, Temperatur, Druck oder Durchflußgeschwindigkeit, im zeitlichen Verlauf der Kultivierung gezielt verändert werden.
20. Verfahren nach einem der Ansprüche 15 bis 18, dadurch g e k e n n z e i c h n e t,
- daß zumindest nach dem Durchleiten des Nährmediums durch die Aufnahmeeinrichtung chemische und/oder physikalische Zustandswerte des Nährmediums gemessen werden,
- daß die gemessenen Zustandswerte in einer Steuereinrichtung erfaßt und ausgewertet werden, und
- daß die gemessenen Zustandswerte zur Steuerung und/oder Regelung des Verlaufes der Kultivierung des organischen Materials eingesetzt werden.
21. Verfahren nach einem der Ansprüche 15 bis 20, dadurch g e k e n n z e i c h n e t,
- daß das Nährmedium durch mehrere Aufnahmeeinrichtungen geleitet wird, welche parallel und/oder seriell zueinander angeordnet sind.
PCT/EP2000/006355 1999-07-12 2000-07-05 Bioreaktor WO2001004262A2 (de)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE50004509T DE50004509D1 (de) 1999-07-12 2000-07-05 Bioreaktor
EP00947935A EP1194524B1 (de) 1999-07-12 2000-07-05 Bioreaktor
AU61554/00A AU6155400A (en) 1999-07-12 2000-07-05 Bioreactor
US10/030,697 US6844187B1 (en) 1999-07-12 2000-07-05 Bioreactor
AT00947935T ATE254658T1 (de) 1999-07-12 2000-07-05 Bioreaktor

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19932439.5 1999-07-12
DE19932439A DE19932439C2 (de) 1999-07-12 1999-07-12 Bioreaktor

Publications (2)

Publication Number Publication Date
WO2001004262A2 true WO2001004262A2 (de) 2001-01-18
WO2001004262A3 WO2001004262A3 (de) 2001-05-10

Family

ID=7914435

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/EP2000/006355 WO2001004262A2 (de) 1999-07-12 2000-07-05 Bioreaktor

Country Status (6)

Country Link
US (1) US6844187B1 (de)
EP (1) EP1194524B1 (de)
AT (1) ATE254658T1 (de)
AU (1) AU6155400A (de)
DE (2) DE19932439C2 (de)
WO (1) WO2001004262A2 (de)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1132460A2 (de) * 2000-03-06 2001-09-12 Sefar AG Bioreaktor und Verfahren zum Züchten dendritischer Zellen
DE10335068A1 (de) * 2003-07-31 2005-03-03 Dahlbeck, Rolf, Dr.-Ing. Mikroreaktormodul
DE102011106914A1 (de) * 2011-07-08 2013-01-10 Zellwerk Gmbh Mäander- Bioreaktor und Verfahren zu dynamischen Expansion, Differenzierung und Ernte von hämatopoetischen Zellen
CN110577894A (zh) * 2018-06-08 2019-12-17 株式会社岛津制作所 细胞培养装置

Families Citing this family (39)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE10242078A1 (de) * 2002-09-09 2004-03-18 Saxonia Bio Tec Gmbh Faserkassette und modular aufgebautes Kassettensystem
WO2007021919A1 (en) 2005-08-12 2007-02-22 Clemson University Co-culture bioreactor system
US8951784B2 (en) * 2005-12-14 2015-02-10 Sepragen Corporation Cell culture bioreactor
WO2007115123A2 (en) * 2006-03-30 2007-10-11 Mark Clarke Mineralized three-dimensional bone constructs
US9057044B2 (en) 2006-08-30 2015-06-16 Meir Israelowitz Laminar flow reactor
CA2678893C (en) * 2007-03-05 2015-12-29 Caridianbct, Inc. Methods to control cell movement in hollow fiber bioreactors
US8309347B2 (en) 2007-03-05 2012-11-13 Terumo Bct, Inc. Cell expansion system and methods of use
EP2118263A2 (de) * 2007-03-14 2009-11-18 CaridianBCT, Inc. Zellexpansionsgerät mit plattenbioreaktor
WO2008124229A2 (en) * 2007-04-06 2008-10-16 Caridianbct, Inc. Improved bioreactor surfaces
WO2008128165A2 (en) * 2007-04-13 2008-10-23 Caridianbct, Inc. Cell expansion system and methods of use
US9309491B2 (en) 2007-05-29 2016-04-12 Corning Incorporated Cell culture apparatus for co-culture of cells
US8329456B2 (en) * 2008-02-22 2012-12-11 Coskata, Inc. Syngas conversion system using asymmetric membrane and anaerobic microorganism
US7923227B2 (en) * 2007-06-08 2011-04-12 Coskata, Inc. Method of conversion of syngas using microorganism on hydrophilic membrane
US20080305540A1 (en) * 2007-06-08 2008-12-11 Robert Hickey Membrane supported bioreactor for conversion of syngas components to liquid products
US8198055B2 (en) * 2007-06-08 2012-06-12 Coskata, Inc. Process for converting syngas to liquid products with microorganisms on two-layer membrane
US20080305539A1 (en) * 2007-06-08 2008-12-11 Robert Hickey Membrane supported bioreactor for conversion of syngas components to liquid products
US20090005868A1 (en) * 2007-06-27 2009-01-01 Depuy Products, Inc. Osteogenic prosthesis, associated instrument, and associated method
WO2009108654A2 (en) * 2008-02-25 2009-09-03 Clemson University Differential pressure pump system
WO2010069320A2 (en) * 2008-12-19 2010-06-24 Stobbe Tech A/S Biopharmaceutical plant in a column
US20110004304A1 (en) * 2009-03-20 2011-01-06 Tao Sarah L Culturing retinal cells and tissues
FR2950802B1 (fr) * 2009-10-02 2012-02-03 Sartorius Stedim Biotech Sa Elaboration et/ou conservation d'un produit biopharmaceutique.
EP2488629B1 (de) * 2009-10-12 2020-03-11 Terumo BCT, Inc. Verfahren zur montage eines hohlfaserbioreaktors
US9057045B2 (en) * 2009-12-29 2015-06-16 Terumo Bct, Inc. Method of loading and distributing cells in a bioreactor of a cell expansion system
CN105154394B (zh) 2010-05-05 2019-06-18 泰尔茂比司特公司 重新接种中空纤维生物反应器系统中生长的贴壁细胞的方法
EP2585189A2 (de) * 2010-06-23 2013-05-01 Stobbe Tech A/s Biopharmazeutisches verfahren und zu einer säule montierte vorrichtungen
US9725689B2 (en) 2010-10-08 2017-08-08 Terumo Bct, Inc. Configurable methods and systems of growing and harvesting cells in a hollow fiber bioreactor system
WO2013096488A2 (en) * 2011-12-19 2013-06-27 Battelle Memorial Institute Stacked membrane bioreactor
US8685241B1 (en) 2011-12-21 2014-04-01 Sepragen Corporation Axial and radial flow columns with inflatable seals to facilitate packing and unpacking
EP2885393A1 (de) 2012-08-20 2015-06-24 Terumo BCT, Inc. Verfahren zum laden und verteilen von zellen in einem bioreaktor eines zellexpansionssystems
JP6633522B2 (ja) 2013-11-16 2020-01-22 テルモ ビーシーティー、インコーポレーテッド バイオリアクターにおける細胞増殖
JP6783143B2 (ja) 2014-03-25 2020-11-11 テルモ ビーシーティー、インコーポレーテッド 培地の受動的補充
WO2015164808A1 (en) 2014-04-24 2015-10-29 Terumo Bct, Inc. Measuring flow rate
CN106715676A (zh) 2014-09-26 2017-05-24 泰尔茂比司特公司 按计划供养
WO2017004592A1 (en) 2015-07-02 2017-01-05 Terumo Bct, Inc. Cell growth with mechanical stimuli
US11685883B2 (en) 2016-06-07 2023-06-27 Terumo Bct, Inc. Methods and systems for coating a cell growth surface
US11104874B2 (en) 2016-06-07 2021-08-31 Terumo Bct, Inc. Coating a bioreactor
US20180057784A1 (en) 2016-08-27 2018-03-01 3D Biotek, Llc Bioreactor
US11624046B2 (en) 2017-03-31 2023-04-11 Terumo Bct, Inc. Cell expansion
EP3656841A1 (de) 2017-03-31 2020-05-27 Terumo BCT, Inc. Zellexpansion

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0113328A2 (de) * 1982-12-08 1984-07-11 Monsanto Company Statisches Zellkultur-Aufrechterhaltungssystem
US4833083A (en) * 1987-05-26 1989-05-23 Sepragen Corporation Packed bed bioreactor
US5605835A (en) * 1988-05-23 1997-02-25 Regents Of The University Of Minnesota Bioreactor device with application as a bioartificial liver
EP0909811A2 (de) * 1997-10-16 1999-04-21 B. BRAUN CAREX S.p.A. Bioreaktor zum Kultivieren von humanen oder tierischen Zellen, insbesondre von Hepatocyten

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4201845A (en) * 1976-04-12 1980-05-06 Monsanto Company Cell culture reactor
DE2726313C3 (de) * 1977-06-10 1980-02-07 Battelle-Institut E.V., 6000 Frankfurt Verfahren zur in-vitro-Biosynthese von Hormonen, insbesondere von Insulin
JPS57166985A (en) * 1981-04-03 1982-10-14 Kawasaki Heavy Ind Ltd Method and apparatus for reacting microorganism
US4734372A (en) * 1983-02-04 1988-03-29 Brown University Research Foundation Cell culturing methods and apparatus
DE3409501A1 (de) * 1984-03-15 1985-10-24 Sandoz-Patent-GmbH, 7850 Lörrach Verfahren zur kultivierung von zellen
DE3923279A1 (de) * 1989-07-14 1990-01-18 Will W Prof Dr Minuth Minusheets ist ein neues produkt, um zellen in beliebigen behaeltnissen in hochdifferenzierter form auf einer moeglichst natuerlichen unterlage zu kultivieren
US4937196A (en) * 1989-08-18 1990-06-26 Brunswick Corporation Membrane bioreactor system
DE4116727C2 (de) * 1991-05-17 1995-09-07 Uwe Dr Marx Verfahren und Vorrichtung zur gleichzeitigen Kultivierung unterschiedlicher Säugerzellen
BE1009306A5 (fr) * 1995-04-28 1997-02-04 Baxter Int Bioreacteur.
US5688687A (en) * 1995-06-07 1997-11-18 Aastrom Biosciences, Inc. Bioreactor for mammalian cell growth and maintenance
US5827729A (en) * 1996-04-23 1998-10-27 Advanced Tissue Sciences Diffusion gradient bioreactor and extracorporeal liver device using a three-dimensional liver tissue

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0113328A2 (de) * 1982-12-08 1984-07-11 Monsanto Company Statisches Zellkultur-Aufrechterhaltungssystem
US4833083A (en) * 1987-05-26 1989-05-23 Sepragen Corporation Packed bed bioreactor
US5605835A (en) * 1988-05-23 1997-02-25 Regents Of The University Of Minnesota Bioreactor device with application as a bioartificial liver
EP0909811A2 (de) * 1997-10-16 1999-04-21 B. BRAUN CAREX S.p.A. Bioreaktor zum Kultivieren von humanen oder tierischen Zellen, insbesondre von Hepatocyten

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1132460A2 (de) * 2000-03-06 2001-09-12 Sefar AG Bioreaktor und Verfahren zum Züchten dendritischer Zellen
EP1132460A3 (de) * 2000-03-06 2003-12-03 Sefar AG Bioreaktor und Verfahren zum Züchten dendritischer Zellen
DE10335068A1 (de) * 2003-07-31 2005-03-03 Dahlbeck, Rolf, Dr.-Ing. Mikroreaktormodul
DE102011106914A1 (de) * 2011-07-08 2013-01-10 Zellwerk Gmbh Mäander- Bioreaktor und Verfahren zu dynamischen Expansion, Differenzierung und Ernte von hämatopoetischen Zellen
DE102011106914B4 (de) * 2011-07-08 2015-08-27 Zellwerk Gmbh Mäander- Bioreaktor und Verfahren zu dynamischen Expansion, Differenzierung und Ernte von hämatopoetischen Zellen
CN110577894A (zh) * 2018-06-08 2019-12-17 株式会社岛津制作所 细胞培养装置

Also Published As

Publication number Publication date
US6844187B1 (en) 2005-01-18
EP1194524A2 (de) 2002-04-10
AU6155400A (en) 2001-01-30
DE19932439C2 (de) 2002-06-13
ATE254658T1 (de) 2003-12-15
EP1194524B1 (de) 2003-11-19
WO2001004262A3 (de) 2001-05-10
DE50004509D1 (de) 2003-12-24
DE19932439A1 (de) 2001-01-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP1194524B1 (de) Bioreaktor
EP1152053B1 (de) Verfahren und Vorrichtung zur Herstellung eines vaskularisierten bioartifiziellen Gewebes
DE2128744C3 (de) Verfahren zur Massenkultivation von Zellen und Geweben
DE2715821C2 (de) Verfahren zur in vitro-Zellkultur und Zellkultur-Reaktionsgefäß zur Durchführung dieses Verfahrens
EP1083984B1 (de) Verfahren zur mehrschichtigen besiedlung von substraten mit biologischen zellen und dafur verwendbare besiedlungsvorrichtungen
DE10322054B4 (de) Vorrichtung und Verfahren zur Kultivierung von Zellen
EP2288688A2 (de) Perfundierbarer bioreaktor zur herstellung von menschlichen oder tierischen geweben
DE102006007412A1 (de) Verfahren zur Herstellung eines langgestreckten Cellulosehohlkörpers
EP2283109A2 (de) Bioreaktor und verfahren zum kultivieren von zellen und geweben
WO2004033617A1 (de) Zellkulturkammer für ein zellkultursystem
DE10326747B4 (de) Perfusionseinheit und Perfusionsstation zur Hautwundbehandlung sowie dessen Verwendung
EP0263371A2 (de) Verfahren und Vorrichtung zum Kultivieren von tierischen Zellen
WO2006069737A1 (de) Reaktor und reaktoreinheit mit hohlfasern
EP2661486B1 (de) Perfusionsbioreaktor zum kultivieren von zellen auf gerüstmaterialien
EP1159444B1 (de) Membranmodul zum testen von wirkstoffen an zellen
DE102004062828B4 (de) Reaktor mit einer rotierbar angeordneten Reaktoreinheit
DE102005021305A1 (de) Reaktoreinheit und Reaktor mit einer derartigen Reaktoreinheit
DE10208311B4 (de) Vorrichtung und Verfahren zur Kultivierung von Gewebezellen
DE102008015634B4 (de) Perfundierbarer Bioreaktor zur Herstellung von menschlichen oder tierischen Geweben
DE202007004118U1 (de) Reaktoranlage zur Kultivierung phototropher Mikroorganismen
EP1173272B1 (de) Gewebekultursystem zur epithelialisierung bzw. endothelialisierung und zur funktionellen untersuchung und anlieferung natürlicher oder künstlicher hohlorgane bzw. gefässe unter kontrollierbaren sterilbedingungen für chirurgische implantationszwecke
DE102009008923B4 (de) Zellbesiedelungskammer
DE202015106971U1 (de) Sterile Umverpackung zur Beimpfung, Besiedelung und Durchtränkung von Bauteilen, insbesondere mit Zellen
WO2003063590A2 (de) Kryokonservierung an textilen geweben

Legal Events

Date Code Title Description
AK Designated states

Kind code of ref document: A2

Designated state(s): AE AL AM AT AU AZ BA BB BG BR BY CA CH CN CR CU CZ DE DK DM EE ES FI GB GD GE GH GM HR HU ID IL IN IS JP KE KG KP KR KZ LC LK LR LS LT LU LV MA MD MG MK MN MW MX NO NZ PL PT RO RU SD SE SG SI SK SL TJ TM TR TT TZ UA UG US UZ VN YU ZA ZW

AL Designated countries for regional patents

Kind code of ref document: A2

Designated state(s): GH GM KE LS MW MZ SD SL SZ TZ UG ZW AM AZ BY KG KZ MD RU TJ TM AT BE CH CY DE DK ES FI FR GB GR IE IT LU MC NL PT SE BF BJ CF CG CI CM GA GN GW ML MR NE SN TD TG

121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application
AK Designated states

Kind code of ref document: A3

Designated state(s): AE AL AM AT AU AZ BA BB BG BR BY CA CH CN CR CU CZ DE DK DM EE ES FI GB GD GE GH GM HR HU ID IL IN IS JP KE KG KP KR KZ LC LK LR LS LT LU LV MA MD MG MK MN MW MX NO NZ PL PT RO RU SD SE SG SI SK SL TJ TM TR TT TZ UA UG US UZ VN YU ZA ZW

AL Designated countries for regional patents

Kind code of ref document: A3

Designated state(s): GH GM KE LS MW MZ SD SL SZ TZ UG ZW AM AZ BY KG KZ MD RU TJ TM AT BE CH CY DE DK ES FI FR GB GR IE IT LU MC NL PT SE BF BJ CF CG CI CM GA GN GW ML MR NE SN TD TG

DFPE Request for preliminary examination filed prior to expiration of 19th month from priority date (pct application filed before 20040101)
WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2000947935

Country of ref document: EP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 10030697

Country of ref document: US

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 2000947935

Country of ref document: EP

REG Reference to national code

Ref country code: DE

Ref legal event code: 8642

WWG Wipo information: grant in national office

Ref document number: 2000947935

Country of ref document: EP

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: JP